INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS UNIDAD SANTO TOMÁS QUÍMICO BACTERIÓLOGO PARASITÓLOGO INTEGRANTES: EQUIPO 2 SILVA VILLANUEVA MARTHA CELIA TAPIA VEGA JOSE ALBINO EQUIPO 6 JUÁREZ HERMENEGILDO VALERIA MAYAWY MENDIETA PÉREZ CITLALI CAROLINA
MATERIA:
PROFESORES:
LABORATORIO DE ECOLOGÍA MICROBIANA
EN TAO WANG HU IRMA GONZÁLEZ MORENO IRMA GABRIELA MARTÍNEZ GÓMEZ SONIA GUTIÉRREZ PAREDES
PRÁCTICA 6: “ENRIQUECIMIENTO Y ESTRATIFICACIÓN DE POBLACIONES MICROBIANAS DE SISTEMAS NATURALES”
GRUPO: 4QM1 SECCIÓN 2
FECHA DE ENTREGA: 26-10-2017
Objetivos
Observar la distribución de microorganismos en una columna de agua-sedimento o suelo Relacionar la presencia de esos microorganismos con las características del microhábitat. Resultados
Durante aproximadamente semana y media se expusieron las columnas de Winogradsky a la luz y obscuridad respectivamente. C ronog rama 1.- Observaciones de las columnas de Winogradsky a diferentes días de
incubación. Columna de Winogradsky
Día 1
Día 2
Día 3
Dia 4
Tratamiento(1) (testigo)
Tratamiento(2) obscuridad
Tratamiento(3) detergente
Tratamiento(4) sacarosa
Se empiezan a separar las zonas, óxicas (parte superior) y anóxicas (parte inferior) de la columna, sin cambios en el sedimento, en la zona intermedia de la columna hay turbidez en el agua, hay crecimiento en papel filtro. Zonas óxica y anóxica, de la columna, no hay cambio en el sedimento, mayor turbidez en agua, en la zona intermedia, ha y aumento del crecimiento microbiano en papel filtro.
La columna mantiene las condiciones óxicas. Sin ningún cambio en el sedimento ni tira de papel filtro, el agua se observa ligeramente turbia.
No se realizaron observaciones
La columna mantiene las condiciones óxicas, no hay cambio en el sedimento, sin turbidez en el agua y sin crecimiento en papel filtro.
La columna sigue manteniendo las condiciones óxicas. Sin cambio en el sedimento, poca turbidez en el agua, empieza el crecimiento microbiano en papel filtro.
No se realizaron
Se mantienen las condiciones óxicas, no hay cambios en el sedimento, no hay turbidez en el agua y sin crecimiento en papel filtro.
Se observa una zona anóxica en la parte inferior de la columna, no hay cambio en el sedimento, poca turbidez en el agua, aumenta el crecimiento en papel filtro.
No se realizaron
Zona anóxica en la parte inferior de la columna, no hay cambio en el sedimento, poca turbidez en el agua, sigue aumentando el crecimiento en papel filtro.
No se realizaron
observaciones
observaciones.
observaciones.
Pequeños cambios en el color del indicador en la parte inferior de la columna, ell sedimento se mantiene igual, no hay turbidez en el agua y no hay crecimiento en papel filtro.
Empieza a perderse la zona óxica, abunda la presencia de microorganismos en la parte intermedia de la columna, aumenta el crecimiento en papel filtro.
Siguen los cambios del color del indicador en la parte inferior de la columna, no hay cambio en el sedimento, agua sin turbidez y no hay crecimiento en papel filtro.
El color del indicador se atenúa, mayor presencia de microorganismos en la parte intermedia de la columna, crecimiento en el papel filtro.
Semana 1
Semana 2
Semana 3
Semana 4
Aumenta la zona anóxica en la parte inferior de la columna, no hay cambio en el sedimento, aumenta la turbidez del agua y también el crecimiento en papel filtro.
Aumentan los cambios del color del indicador en la parte inferior de la columna, sedimento intacto, no hay turbidez en el agua y sin crecimiento en papel filtro.
Desapareció el color del indicador, aumento la turbidez del agua, aparecen manchas en la pared de la columna, mayor crecimiento en el papel filtro
La columna se perdió
La columna se perdió La columna se perdió
La columna se
La columna se
perdió
perdió
La columna se
La columna se
La columna se
Perdió
perdió
Perdió.
La columna se
La columna se perdió
La columna se perdió
La columna se perdió
La columna se perdió.
La columna se perdió
La columna se perdió.
perdió Semana 5
No se observo.
La columna se perdió.
Imágenes obtenidas .Descripción gráfica
Imagen 1.- DIA 1.Trat. Detergente (1),
Trat. Sacarosa (2), Trat. Testigo (3).
Imagen 2.- DIA 2. Trat. Testigo (1), Trat. Sacarosa (2), Trat. Detergente (3).
Imagen 3.- DIA 3.Trat. Testigo (1), Trat. Sacarosa (2), Trat.
Detergente (3).
Imagen 4.- DIA 4.Trat. Detergente (1).
Imagen 5.-SEMANA 1. Trat. Testigo (1),
Trat. Sacarosa (2), Trat. Testigo (3).
Trat. Sacarosa (2), Trat. Detergente (3).
C ronog rama 2.- Observaciones de las columnas de Winogradsky a diferentes días de
incubación.
Imágenes obtenidas .Descripción gráfica
Imagen 7 Imagen 6. Primer día 6 de Septiembre
Imagen 2. Segundo día 7 de Septiembre
Imagen 3. Sexto día 11 de Septiembre
Imagen 4. Séptimo día 12 de Septiembre
Imagen 5. Octavo día 13 de Septiembre
Imagen 6. Noveno día 14 de Septiembre
Imagen 8. Décimo día 15 de Septiembre, columnas de Obscuridad
Imagen 9. Décimo día 15 de Septiembre
Imagen 10. Del lado izquierdo se observa la columna de obscuridad y del lado derecho las que se expusieron a la luz
* A partir del 19 de Septiembre no se pudieron realizar las lecturas de las columnas ya que a causa del sismo ocurrido, éstas sufrieron daños (se rompieron) y no nos permitieron seguir observando el desarrollo y cambios del microhábitat.
Observaciones microscopicas de las diferentes zonas de la columna de Winogradsky
Zona superficial Tratamiento con detergente
Imagen 15 y 16 .Presencia de algas verdes.
Imagen 18.Conidio de Alternaria.
Imagen 17. Navicula.
columna testigo.
Zona intermedia Imagen 19.- Arcella (Amoeba testada) en abundancia.
Portaobjetos (sedimento) Imagen 20.- Arcella (Amoeba testada) y algas.
Zona superficial Imagen . Filodina.
Tratamiento de sacarosa
zona intermedia
Zona superficial.
Imagen 27.- Arcella.
Imagen .- algas doradas.
columna en obscuridad
Zona agua-sedimento Zona intermedia Imagen .- Stylonichia.
Imagen 17.- Onychodromos (protozoario).
Imagen .- Nematodo y Arcella (Amoeba testada).
Discusión
Generalmente la estratificación se daba en base a un potencial de óxido reducción, donde en la superficie teníamos un área oxidada que se mantenía gracias a la actividad de los fotolito autótrofos oxigénicos, con forme descendíamos empezaba a disminuir el potencial oxidado y se tornaba reducido, esto permitía el desarrollo de microorganismos anaerobios, ya sean facultativos o estrictos, en la columna de testigo se observó un cierto equilibrio, ya que no se apreció el desarrollo incontrolado de alguna población en particular, la presencia de protozoarios como predadores de cierta manera mantenía controladas a las poblaciones de procariontes, en la parte inferior los microorganismos anaerobios al no poder usar como aceptor final de electrones al oxígeno, usaban al azufre elemental o a los sulfatos transformándolos en sulfuro de hidrogeno, creándonos también un gradiente de sulfuro de hidrogeno a lo largo de la columna, este se manifestaba contrario al de óxido reducción, ya que en la parte inferior es donde teníamos mayores concentraciones de sulfuros, y conforme subíamos en la columna, la concentración
Conclusión
Los factores ambientales bióticos y abióticos que enfrentan, determinan su presencia y su función en un ecosistema dado-En el tratamiento de oscuridad los microorganimos fotosintetizadores no pudieron desarrollarse al no tener una fuente de energía para realizar sus procesos metabólicos.El tratamiento con sacarosa favoreció el desarrollo de microorganimos fementadores de estos azúcares que al
agotar este disacárido generaron un ambiente reducido en el que ya no había oxígeno y generaron condiciones de anaerobiosis para prácticamente toda la columna. En el tratamiento de detergente la comunidad microbiana de la zona aerobia se vio afectada al no haber desarrollo de microorganismos . en la superficie y beneficiada para los que se encontraban de la zona microaerofílica a la anaeróbica. El testigo mostró todas las zonas en la columna pudiendo encontrar una variedad de microorganismos en cada zona.Las bacterias verdes del azufre toleran concentraciones más altas de H2S que las bacterias púrpuras del azufre.
Cuestionario 1.- Describir qué es un indicador de óxido-reducción, dé dos ejemplos mencionando los cambios que se observarán en los distintos grados de oxidación.
R: Un indicador redox es una sustancia cuyo color es intenso, bien definido, y distinto en sus estados oxidado y reducido. Ejemplos:
Amarillo pH 6, verde pH neutro, azul pH 7.5
Amarillo pH6.4, Rojo pH 8.2
2.-De acuerdo a las características de óxido-reducción (zona óxica, zona anóxica e interfase), pH, materia orgánica disponible, presencia de luz, obscuridad, temperatura, etc. Indique que tipo de microorganismos tendrá en las siguientes zonas de su columna:
a) En la superficie de cada columna: puede contener abundantes poblaciones de bacterias de diferentes tipos. Son organismos aerobios que se encuentran habitualmente en los hábitats acuáticos ricos en materia orgánica. Puede desarrollarse también microorganismos fototróficos variados procedentes directamente del agua originalmente en el montaje de la columna. Esta es la parte de la columna más rica en oxígeno y más pobre en azufre.
b) En la zona de interfaseóxica y anóxica: Hay dos tipos de organismos que pueden crecer en condiciones anaerobias: los que fermentan la materia orgánica o los que realizan la respiración anaerobia. c) Zona inmediata arriba del sedimento: Por encima de esta zona pueden desarrollarse las bacterias púrpura que no utilizan el azufre. d) Sedimento: En la zona inferior de lodos se desarrollan organismos que desarrollan procesos fermentativos que producen alcohol y ácidos grasos como subproductos de su metabolismo. Estos productos de "desecho" son a su vez el sustrato para el desarrollo de bacterias reductoras de sulfato. Como resultado se liberan sulfuros que difunden a la zona superior oxigenada creando un gradiente en el que se desarrollan bacterias fotosintéticas que utilizan el azufre.
Bibliografía
Alfaro Martinez Veronica Patricia. (2010). Recopilación de mecanismos de reac ción de los indicadores químicos y su aplicación en los diferentes métodos clásicos de análisis. El Salvador: Universidad de El Salvador.
