GUÍA PARA LA TOMA, MANEJO,

SECRETARIA DE SALUD LABORATORIO ESTATAL DE SALUD PUBLICA “DR. GALO SOBERON Y PARRA” ACAPULCO, GRO.

GUÍA PARA LA TOMA, MANEJO, CONSERVACIÓN, TRANSPORTE Y ENVÍO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS

DR. SAUL LÓPEZ SILVA DIRECTOR ACAPULCO, GRO., MARZO DEL 2009

SECRETARIA DE SALUD LABORATORIO ESTATAL DE SALUD PUBLICA “DR. GALO SOBERON Y PARRA“ ACAPULCO, GRO. Elaborado por: QBP. MARIO A. ALARCÓN ROMERO

Revisado por: QBP. LAURA T. ÁNGEL PABLO

Autorizado por: DR. SAÚL LÓPEZ SILVA

JEFE DEL DEPARTAMENTO DE CONTROL CLÍNICO Y AMBIENTAL

JEFA DEL DEPARTAMENTO DE CONTROL MICROBIOLÓGICO Fecha de Prox. Rev.

DIRECTOR

20-MARZO-2011

PAG.: 2 DE: 50

Sustituye a clave:

Vigente a partir de:

Revisión 1

20-MARZO-2009

Rev. No. 2 Clave: CC-P-001



DR. SAÚL LÓPEZ SILVA DIRECTOR ACAPULCO, GRO., MARZO DEL 2009

SECRETARIA DE SALUD LABORATORIO ESTATAL DE SALUD PUBLICA “DR. GALO SOBERON Y PARRA“ ACAPULCO, GRO. Elaborado por: QBP. MARIO A. ALARCÓN ROMERO

Revisado por: QBP. LAURA T. ÁNGEL PABLO

Autorizado por: DR. SAÚL LÓPEZ SILVA

JEFE DEL DEPARTAMENTO DE CONTROL CLÍNICO Y AMBIENTAL

JEFA DEL DEPARTAMENTO DE CONTROL MICROBIOLÓGICO Fecha de Prox. Rev.

DIRECTOR

20-MARZO-2011

PAG.: 2 DE: 50

Sustituye a clave:

Vigente a partir de:

Revisión 1

20-MARZO-2009

Rev. No. 2 Clave: CC-P-001



DR. SAÚL LÓPEZ SILVA DIRECTOR ACAPULCO, GRO., MARZO DEL 2009

SECRETARIA DE SALUD LABORATORIO ESTATAL DE SALUD PUBLICA “DR. GALO SOBERON Y PARRA“ DEPARTAMENTO DE CONTROL CLÍNICO Y AMBIENTAL

GUÍA PARA LA TOMA, MANEJO, CONSERVACIÓN, TRANSPORTE Y ENVÍO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS. CLAVE CC-P-001 REVISI N: 2 Vigente a partir de: 20-MARZO-2009 PAG.: 3 DE: 50

1. OBJETIVO. Establecer los lineamientos para la toma, manejo, conservación, transporte y envío de muestras de productos biológicos que permitan asegurar sus condiciones de calidad para los análisis correspondientes.

2. ALCANCE. Este procedimiento es de aplicación obligatoria para todo el personal involucrado en la toma de muestras del área de vigilancia epidemiológica, de la Coordinación Coordinación de recepción de muestras y atención al público del LESP y de los laboratorios laboratorios que conforman la Red Estatal de Laboratorios de Salud Pública.

3. DEFINICIONES. Lista CC-L-001

4. DOCUMENTOS APLICABLES. Ley General de Salud, DOF 1984, última reforma publicada 19/06/2007. Manual de Organización (DI-M001) y Manual de Calidad del LESP (GC-M-002). Manual de Operación General de la Red de Laboratorios Clínicos de la Secretaría de Salud, Feb. 2007. Norma Oficial Mexicana NOM-017-SSA2-1994, Para la vigilancia epidemiológica. NOM-166-SSA1-1997, Para la organización y funcionamiento de los laboratorios clínicos. NMX-EC-15189-INMC-2006, Laboratorios clínicos requisitos particulares para la calidad y competencia. • • •

• •

•

5. RESPONSABILIDADES 5.1. JEFE DEL DEPARTAMENTO DEP ARTAMENTO DE CONTROL CLINICO Y AMBIENTAL. 5.1.1. Mantener actualizado este procedimiento. 5.2. DE LOS USUARIOS. 5.2.1. Aplicar el procedimiento en todas sus partes. 5.2.2. Avisar al emisor cuando aplique actualizar y/o modificar lo correspondiente a su departamento o laboratorio. “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



6. DESCRIPCIÓN DE LAS ACTIVIDADES. 6.1 TOMA DE MUESTRAS DE PRODUCTOS BIOLÓGICOS. 6.1.1 Vigilancia Epidemiológica. 

Personal operativo del área epidemiológica toma muestras de productos biológicos de acuerdo al anexo No.7.1 del procedimiento.



Entrega las muestras y solicitud en el área de recepción de muestras del Laboratorio Estatal.



Personal de recepción recepción de muestras verifica que cumplan con las características establecidas en el anexo No. 7.2 de este procedimiento.



Si las muestras no cumplen con los criterios de aceptación para su proceso y análisis, se elabora el formato de rechazo temporal o definitivo según corresponda, entregándole una copia del mismo al personal que entregó las muestras para su seguimiento y control.



Registra en el sistema informático, y asigna la clave que le corresponde al laboratorio que efectuará el análisis clínico correspondiente.



Personal de recepción transporta las muestras a los laboratorios clínicos que realizarán los análisis correspondientes, conservando las mismas en condiciones óptimas.

6.1.2 Recepción de muestras y atención al público. 

Personal de atención al público recibe solicitud de exámenes, o algún otro documento oficial de una institución pública que solicite servicio de diagnóstico clínico o epidemiológico.



Indica de acuerdo a su solicitud de análisis que pase a caja para cubrir el costo por los servicios requeridos.



Efectuado el pago, el usuario pasa al área de atención al público para recibir las recomendaciones necesarias para la toma de muestra.

“El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/


GUÍA PARA LA TOMA, MANEJO, CONSERVACIÓN, TRANSPORTE Y ENVÍO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS. CLAVE CC-P-001 REVISI N: 2 Vigente a partir de: 20-MARZO-2009 PAG.: 5 DE: 50 

Personal técnico o químico químico designado procede a colectar las muestras biológicas de acuerdo al anexo 7.1 del procedimiento.



Registra en el sistema informático y asigna la clave que le corresponde al laboratorio que efectuará el análisis clínico correspondiente.



Personal de recepción transporta las muestras a los laboratorios clínicos que realizarán los análisis correspondientes, conservando las mismas en condiciones óptimas.

7. ANEXOS 7.1 Técnicas de colección de muestras biológicas para estudios clínicos. 7.2 Características que deben cumplir las muestras para su análisis.




7.1 TÉCNICAS DE COLECCIÓN DE MUESTRAS BIOLÓGICAS PARA ESTUDIOS CLÍNICOS 7.1.1 Colección de sangre. Toda colección de sangre representa un peligro potencial para el flebotomista, por lo tanto, los especímenes de TODOS los pacientes deben ser considerados potencialmente infecciosos. Las técnicas apropiadas de colección de sangre deberán ser seguidas de manera cuidadosa para minimizar el riesgo para el personal del laboratorio. Una de las fuentes principales de información al respecto son las instrucciones de los proveedores de materiales para toma de muestras. 7.1.2 Punción venosa utilizando tubos al vacío A. Equipo. •

Silla para venopunción : esta debe permitir que el paciente se siente

confortablemente. El brazo del paciente deberá estar recargado de tal forma que el codo se mantenga derecho. Se deberán tomar precauciones para asegurar que el paciente no caiga de la silla. También se puede utilizar una mesa de inspección o un sillón reclinable para aquellas personas que prefieren estar recostadas para la toma. •

Agujas para colectar sangre : Existen disponibles en contenedores con código de

color para los grosores más comunes, del 19 al 23. Las agujas deben ser estériles y desechables. Las agujas con tapón de hule, para muestras múltiples, son necesarias cuando se va a colectar más de una muestra de un mismo paciente. •

Adaptador para tubos de vacío : Estos aceptan agujas estériles que son

enroscadas en el adaptador. Los tubos al vacío son insertados dentro del adaptador. •

Tubos al vacío : Diseñados para contener un volumen predeterminado de sangre.

Los tubos para toma de sangre son estériles. Están disponibles en tamaños de 2 a 20 mL. Algunos de los tamaños más comunes son: “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



Tamaño (mm)

Cantidad de sangre Contenida (mL) 2 3 4 5 7 10 15

10.25 x 50 10 x 65 10.25 x 85 13 x 75 13 x 100 16 x 100 16 x 127

Los aditivos son en general anticoagulantes líquidos o en polvo, los cuales evitan la coagulación del espécimen. Los tubos tienen un código de color para indicar los aditivos. Color

Azul claro

Espécimen

Uso

Aditivo

Plasma o sangre Coagulación Citrato total Azul marino Suero Metales Ninguno, libre de metales Gris Plasma o sangre Glucosa Oxalato/Fluoruro total (inhibición de glicólisis) Lila Plasma o sangre Biometría EDTA total Hb Glicosilada Rojo Suero Bioquímica Ninguno Hormonas Rojo o Suero Bioquímica Gel separador Rojo/negro Verde Plasma o sangre Drogas Heparina total terapéuticas B Procedimiento de venopunción. “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



Por seguridad, se deben utilizar guantes para realizar la venopunción. •

•

•

Identificar al paciente. La identificación correcta es crucial. El flebotomista se debe asegurar que la muestra de sangre se está tomando del paciente cuyo nombre está en la requisición. El flebotomista debe preguntar al paciente por su nombre completo. El nombre reportado por el paciente debe coincidir con el de la solicitud. Seleccionar los tubos y agujas apropiados. Para realizar una prueba específica es necesario utilizar el anticoagulante apropiado. La sangre colectada con un anticoagulante puede ser adecuado para una o varias pruebas pero no para otras. Al utilizar tubos con aditivos en polvo, golpear suavemente el fondo del tubo para despegarlo del tapón y de las paredes del tubo. Etiquetar los tubos. Es crítico el etiquetado correcto y a tiempo. Se debe establecer un sistema de identificación que utilice la fecha y la clave o código de identificación del paciente para todos los especímenes en la toma de muestras y recepción.

Los tubos para muestra serán etiquetados ANTES de tomar los especímenes. Identificar cada tubo con la fecha del día en que se toma la muestra, el mes en que se toma, de acuerdo a la siguiente nomenclatura: MES Enero Febrero Marzo Abril Mayo Junio

ABREVIATURA E F M A MY J

MES Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre

ABREVIATURA JL AG S O N D

Si la muestra se toma en el área de recepción de muestras y atención al público del LESP: A la fecha deberá seguir el número de registro que indica el programa de laboratorio clínico, cuando se trata de muestras que se procesan en el Laboratorio de Química Clínica y Hematología, y las iníciales del paciente como primer nombre, primer apellido y segundo apellido, Por ejemplo: “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



Para una muestra tomada el día 11 de Noviembre, con registro No. 12682 del paciente Emilio Sebastián Alarcón Sánchez, las muestras deberán ser etiquetadas como: 11N12682EAS. Para el caso de muestras que ingresan a otros laboratorios clínicos, se identificará el tubo, colocando la fecha más los 4 últimos números de la factura y las iniciales del paciente como primer nombre, primer apellido y segundo apellido. •

 

Establecer un orden para la colección de especímenes múltiples. El orden apropiado para tomar muestras múltiples en una sola venopunción es: Tubo sin aditivo (tubo rojo) o con separador de suero negro) Tubos con aditivo en el siguiente orden: • • • •

(tapón rojo o rojo con

Azul (coagulación) Verde Lila Gris

Los tubos sin aditivo se toman antes que los que contienen aditivo para evitar la contaminación cruzada de los tubos con diferente aditivo. Si el tubo con tapón azul se va a utilizar para pruebas de coagulación, no deberá ser tomado como primera muestra ya que la tromboplastina del sitio de la venopunción puede invalidar los resultados de las pruebas de coagulación. Si únicamente se va a tomar un tubo azul, se deberá de llenar un tubo rojo de 5 mL antes de tomar y descartar. El espécimen para las pruebas de coagulación será colectado después. •

•

•

Alentar al paciente ya que aunque la venopunción puede ser ligeramente dolorosa, no durará mucho. Nunca decir al paciente “Esto no le va a doler” Acomodar al paciente de tal forma que se encuentre confortable en la silla. Colocar un brazo en la antebracera o en una mesa junto a la silla y extender el brazo para formar una línea recta del brazo a la muñeca. Hacer que el paciente cierre el puño. El ejercicio vigoroso o el bombeo por parte del paciente pueden causar que los resultados de las pruebas sean inexactos y por lo tanto se debe evitar.




•

•

Aplicar el torniquete alrededor del brazo 3 o 4 pulgadas arriba del sitio de la venopunción con el extremo atorado debajo de la última vuelta. Si se usa un torniquete de velcro, los extremos deberán estar adheridos uno al otro. El torniquete no debe de impedir el paso de la sangre en las venas por más de un minuto antes de que la muestra sea tomada. Si el torniquete se mantiene por más de un minuto antes de tomar la muestra, los resultados pueden ser falsamente elevados. Si hay dificultad por retraso en la toma de muestra, el torniquete debe ser aflojado por un minuto antes de tratar de puncionar la vena. Seleccionar el sitio de punción. La Figura 1, muestra las venas superficiales del brazo. Las más frecuentemente utilizadas son la cubital que es la más grande y más llena y las cefálicas. No se deben utilizar para venopunción los sitios en que se aplicaron líquidos intravenosos, un lugar con daño extenso o con hematoma o el lado en el cual se ha realizado una mastectomía.




Vena Cefálica

Vena cefálica Accesoria

Vena basílica

Vena Cubital Mediana

Vena basílica

Figura 1. Venas superficiales de la superficie anterior de las extremidades superiores




Un laboratorista nunca debe confundir una arteria con una vena. A diferencia de las venas, las arterias pulsan, son más elásticas y tienen una pared más gruesa. Las diferencias entre las venas se hacen aparentes, si se traza con el dedo índice la trayectoria de las venas varias veces. Las venas cicatrizadas carecen de elasticidad, se sienten como cordón y se retraen fácilmente. Cuando las venas superficiales sean difíciles de encontrar en un brazo, es adecuado verificar el otro brazo. Si la vena todavía no es aparente, la sangre se puede forzar dentro de la vena mediante masaje ligero del brazo de la muñeca hacia codo. Se puede dilatar la vena mediante un golpe muy ligero del sitio de la vena con el índice y el anular varias veces. La aplicación de una compresa caliente (cerca de los 40°C) dará el mismo resultado. •

Limpiar el sitio de la venopunción como sigue: Limpiar la piel con una torunda con alcohol, realizando un movimiento circular dentro hacia afuera sobre el sitio de punción.  Permitir que la piel seque para evitar: - La hemólisis del espécimen - Que el paciente tenga la sensación de rubor cuando se realice la venopunción. - No tocar el sitio de punción después de limpiarlo 

•

Realizar la venopunción. utilizando sistemas para recolección, extracción y análisis de sangre Sarstedt (Figura No. 2 y 3). 

Sujetar el brazo del paciente cerca del sitio de venopunción, utilizando el pulgar para mantener tensa la piel del paciente.



Con el bisel de la aguja hacia arriba, alinear la aguja con la vena, penetrar la piel y entrar en la vena a un ángulo de aproximadamente 15 a 30 grados.



Sostener el adaptador para evitar el movimiento de la aguja en el brazo del paciente y empujar el tubo hacia delante hasta que la parte posterior de la aguja de doble punta puncione el tapón. Mantenga el tubo más bajo que el sitio de punción mientras la aguja este en la vena.



Liberar el torniquete y solicitar al paciente que abra el puño cuando la sangre empiece a fluir por el tubo.

Mantener presión constante sobre el tubo en dirección de la aguja para evitar que se interrumpa el flujo de sangre por activación de la válvula de seguridad de la aguja. “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/ 



•

•

•

•

•



Remover el tubo del adaptador cuando la sangre deje de fluir. La válvula de seguridad de la aguja impedirá que el flujo continúe hasta que se inserte el siguiente tubo.



Inmediatamente después de colectar sangre dentro de un tubo conteniendo anticoagulante, invertir suavemente cinco a diez veces para mezclar la sangre con el anticoagulante o hasta que esté seguro que se disolvió el anticoagulante. Si no cuenta con tubos al vacío, asegurar que no hay grumos mediante la utilización de 2 aplicadores de madera. Si hay grumos, repetir la toma.



Insertar los otros tubos dentro del adaptador en el orden apropiado hasta que se colecten todos los tubos. Si no es posible obtener sangre del sitio, se deberá cambiar la posición de la aguja. Si la aguja ha penetrado mucho en la vena, se deberá retirar un poco. Si no ha penetrado la suficiente, se deberá mover hacia delante sin hacer movimientos laterales. Otra opción es cambiar de tubo.

Retirar suavemente la aguja del sitio de la venopunción antes de que el último tubo sea retirado del adaptador, aplicar inmediatamente un apósito estéril en el sitio. Solicitar al paciente que mantenga la presión en el sito por cerca de 2 minutos. Aplicar una banda adhesiva sobre el sitio de venopunción una vez que el sangrado haya parado. Instruir al paciente para que mantenga la banda en su lugar por cuando menos 15 minutos. Desechar la aguja en un contenedor para desechos punzocortantes biológico infecciosos rápida y cuidadosamente para evitar incidentes y asegurarse que no se reutilicen. Verificar que se tomaron todos los tubos solicitados. Revisar la solicitud y poner sus iníciales al estar seguro que se tomaron todos los especímenes solicitados. Registrar el tiempo de colección del espécimen. Esta información se deberá anotar en el registro de tomas o en la requisición.




Figura No. 2




Figura No. 3 Ejemplos de sistemas para recolección, extracción y análisis de sangre

S.Monovette

Monovette para análisis especiales

Sistema de extracción múltiple de sangre, con protección contra infecciones, robusto frente al transporte y centrifugación. Sistema de extracción por sistema de jeringa o vacío. Disponibles con etiquetas, estériles o sin esterilizar. Para análisis de gases en sangre, para determinación de función trombocito y para análisis de metales

Sediplus

Sistema combinado para extracción y sedimentación de sangre. Determinaciones manuales y automáticas en concordancia con Westergren

S-Sedivette

Sistema cerrado desde extracción de sangre a sedimentación, eliminando transferencia de muestras y pipeta de sedimentación.

Sediplus

Diferentes modelos de equipos para análisis automático y manual de sedimentación.

Microvette

Sistema de extracción de sangre capilar

Multivette 600

Sistema de extracción de sangre capilar y venosa combinado en un único sistema.

Filtros Seraplas

Filtros para la separación de suero/plasma luego de la centrifugación.




7.1.3 Problemas durante la venopunción a) Si el paciente se desmaya:     

Bajar la cabeza y los brazos del desmayado si se encuentra sentado. Aflojar la ropa. Tomar el pulso, presión sanguínea y observar la frecuencia respiratoria o avisar al médico para que lo realice. Permitir que el paciente inhale sales de amonio, acercándolas con un movimiento ondulante. El paciente responderá tosiendo. Avisar a un médico si el paciente no responde.

b) Si presenta náusea:   

Colocar al paciente de la manera más cómoda Pedir al paciente que respire profundamente y despacio Bajar la cabeza del paciente.

c) Si hay vómito:    

Si está acostado, rodar hacia el lado. Dar al paciente un recipiente si está avisando que siente ganas de vomitar y preparar papel absorbente. Dar al paciente agua para enjuagarse Avisar al médico

d) Si ocurre sangrado excesivo:  

Continuar la presión en el sitio de venopunción, hasta que el sangrado pare Avisar al médico si el sangrado dura más de 5 minutos

f) Si se presentan convulsiones:   

Evitar que el paciente se lastime a sí mismo, sin restringirlo completamente Colocar un material suave entre los dientes del paciente Avisar a un médico




7.1.4 OTRAS RECOLECCIONES DE SANGRE. a) Hemocultivos. Un espécimen de sangre se cultiva para determinar si las bacterias han penetrado a la sangre. Por lo tanto es importante que el espécimen no esté contaminado con bacterias mediante:  

 

Desinfección de tapas y tapones de los tubos de recolección o botellas de cultivo, con alcohol o yodo. Las tapas y tapones deben estar secos. Desinfección del sitio de punción con una torunda con isodine o con tintura de yodo al 2%. (Alternativamente, en pacientes con hipersensibilidad al yodo se puede utilizar alcohol o tintura de jabón verde). Iniciar la limpieza del centro y arriba del sitio de punción y frotar la piel con el desinfectante por 2 minutos. Dejar secar la piel y no tocar el sitio antes de realizar la venopunción Colectar primero el espécimen para el hemocultivo.

b) Especímenes cronometrados. Algunos especímenes deben ser colectados a intervalos de tiempo debido a los medicamentos administrados o a variaciones biológicas en la concentración de algunos analitos. Los especímenes de estas pruebas deberán ser recolectados precisamente en el tiempo especificado. c) Recolección de sangre de una línea intravenosa (IV). • • • • • • •

Cerrar la línea IV y desconectar las líneas de catéter intravenoso. Colocar la jeringa al catéter intravenoso libre Esperar 3 minutos Drenar cuando menos 5 mL de sangre por el catéter y desecharla Con una jeringa, tomar la muestra de sangre Transferir la sangre al o los tubos Reconectar la línea IV y reiniciar el flujo

d) Curva de tolerancia a la glucosa.




Para minimizar la variación de la prueba y la interpretación de la tolerancia a la glucosa, el siguiente procedimiento es recomendado. Estas recomendaciones son consistentes con las del Grupo nacional de datos de diabetes. Preparación del paciente. a. El paciente debe ser ambulatorio no hospitalizado b. El paciente no deberá haber tenido cirugía, trauma o enfermedad las últimas dos semanas. c. El paciente deberá realizar una dieta rica en carbohidratos (cuando menos 150 g de carbohidratos por día) los tres días previos a la prueba, cuando el médico así lo indique. d. El paciente deberá tener un ayuno de cuando menos 8h y no más de 16h antes de la prueba. Los pacientes pueden beber agua durante la prueba. El paciente deberá ser avisado de las restricciones de la dieta e interrogado para verificar el entendimiento y aceptación. Prueba. a. La prueba deberá iniciarse de preferencia, entre 7 y 9 de la mañana b. La carga de glucosa depende del tipo de pacientes y las razones para la solicitud de la prueba. Las cargas son: Adultos 75 g Niños 1.75 g / Kg de peso ideal, máximo 75g Diabetes gestacional 100 g Prueba en embarazo 75 g c. La carga completa deberá ser ingerida en menos de 5 minutos. d. Los tiempos de recolección son específicos para el tipo de curva de tolerancia solicitada: • • •

•

CTG2 (curva de tolerancia de 2 h) para diabetes, ayuno, 30 min, 1h, 90 min y 2h. CTT3 (curva de tolerancia de 3 h) para diabetes gestacional; ayuno, 1h, 2h y 3h. CTT5 (curva de tolerancia de 5h) para hipoglicemia; ayuno y especímenes recolectados a intervalos de 30 min. DGE (determinación de glucosa en embarazo); 1h. No se requiere ayuno.



GUÍA PARA LA TOMA, MANEJO, CONSERVACIÓN, TRANSPORTE Y ENVÍO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS. CLAVE CC-P-001 REVISI N: 2 Vigente a partir de: 20-MARZO-2009 PAG.: 19 DE: 50 •

GPP2 (glucosa postprandial de 2h) para búsqueda de diabetes; la muestra se toma a las 2h.

e. Se deberá tomar una muestra en cualquier momento que el paciente presente síntomas de hipoglicemia (nerviosismo, sudoración, taquicardia, mareo, etc.). •

•

Para CTG2, CTG3 y CTG5 el paciente deberá anotar cualquier detalle o sensaciones físicas que presente y la hora de las reacciones durante la prueba para que las discuta con su médico. El paciente no debe fumar, tomar café o hacer ejercicio durante la prueba únicamente puede caminar. Si se presentan respuestas del sistema nervioso autónomo durante la prueba (palidez, sudoración, náusea, desvanecimiento, etc.), la prueba deberá suspenderse después de tomar una muestra. La prueba se deberá repetir en otra ocasión, de acuerdo a la opinión del médico tratante

7.1.5 Manejo y procesamiento de especímenes sanguíneos. •

•

•

Tubos. Después de tomar el espécimen, los tubos deben mantenerse tapados hasta realizar el análisis. Algunas pruebas pueden ser inexactas si se destapan los tubos muy pronto. Para determinar la estabilidad del espécimen, referirse a las recomendaciones del proveedor para el manejo de muestras. El mantener los tubos pegados también evita la contaminación y evaporación del espécimen. La agitación de la muestra se disminuye si se mantienen los tubos en posición vertical. El tapón es menos probable que se desprenda del tubo. Agitación. Para evitar la hemólisis del espécimen, las muestras de sangre con anticoagulante se mezclan por inversión suave del tubo 5 a 10 veces. La agitación vigorosa de los especímenes deberá ser evitada. Las muestras hemolizadas son inaceptables para muchas pruebas como la hemoglobina, hematocrito, cuenta celular, potasio, DHL, magnesio y aspartato transaminasa AST. Exposición a la luz. La exposición a la luz del espécimen causa el rompimiento de algunos analitos, bilirrubina en particular, por lo tanto se recomienda el uso de papel aluminio o contenedores de color ámbar protegen el espécimen de la luz.




Temperatura. Los especímenes que se deben refrigerar se deben mantener entre 2 y 8°C hasta que estén listos para centrifugarse.

7.1.6 Recolección de Orina. a) Equipo: •

•

•

•

•

Los contenedores de muestra, deberán estar estériles, hechos de plástico inerte desechable, con tapa de rosca. Los recipientes deberán tener una capacidad para 50 a 100 mL, o bien para dos litros si son recolecciones de 24 horas, con una abertura superior de cuando menos dos pulgadas de diámetro. Si el espécimen va a ser transportado, el contenedor deberá tener una tapa de rosca para evitar derrames. Para los estudios microbiológicos de orina, se requieren recipientes estériles con tapa de rosca o tubos estériles de transporte. El recipiente deberá tener una etiqueta adherible que no se desprenda con el frío, con la identificación del paciente, la fecha y el periodo de colección y estar colocada en el recipiente no en la tapa. En estudios de 24 horas, deberán tener anotados los estudios a realizar en forma clara y legible. Si son depuraciones deberán estar anotadas talla y peso. Los conservadores deberán ser agregados al recipiente si son recolecciones de 24 horas o bien a los especímenes si son colectados en el laboratorio y son para estabilizar la muestra. Las etiquetas deberán mostrar el contenido de cáusticos usados como conservadores.

b) Métodos de recolección: La recolección debe de realizarse en un área privada. El paciente debe recibir instrucciones escritas detalladas de lo que se le explique oralmente. o

o

o

Especímenes al azar se recolectan a cualquier hora a lo largo del día. Primera muestra de la mañana o de ocho horas se recolectan inmediatamente que el paciente se levanta del sueño nocturno. Especímenes cronometrados se recolectan a un tiempo específico dentro del periodo de 24 horas. Entre ellos se incluyen los especímenes de orina para tolerancia que son recolectados en recipientes a diferentes tiempos. Para cada una de estas recolecciones de orina:




- Instruir al paciente en cómo debe recolectar cada espécimen. Desechar la

-

o

o

primera muestra y recolectar todas las muestras de orina, incluyendo la última micción. Proporcionar suficientes recipientes con los conservadores adecuados, si son necesarios (si se usa un conservador anotarlo en el contenedor). Asegurar que los especímenes se colectan en los intervalos establecidos. Etiquetar los recipientes con el nombre del paciente, número de muestra, hora y fecha de colección y volumen de muestra. Refrigerar la muestra completa, si se requiere. Registrar las cantidades que se retiran en la requisición. Incluyendo el total de muestras desechadas.

Especímenes de dos micciones se recolectan para comparar la concentración de un analito (por ejemplo glucosa) en la sangre y en la orina al mismo tiempo. El paciente vacía la vejiga, se anota la hora y estos especímenes se analizan. El paciente permite la acumulación de orina en la vejiga por un periodo de tiempo especificado, normalmente 30 minutos. Recolectar el segundo espécimen y analizar. Especímenes de chorro medio (Para examen general de orina)

Para hombres: - Indicar al paciente no circuncidado para que retire el prepucio antes de orinar. - Indicar al paciente para desechar la primera porción de la micción en el sanitario, colectar la porción media en el contenedor y desechar el resto en el sanitario. - Asistir a los pacientes enfermos, débiles, ancianos u obesos. Para mujeres: - Indicar a la paciente que se siente en el sanitario, separe los labios menores con una mano y los mantenga separados mientras desecha la primera porción de orina en el sanitario. - Solicitar a la paciente que colecte la porción media de la orina en el recipiente apropiado sin contaminar la boca o el interior del recipiente con las manos. - Indicar a la paciente que deseche el resto de la orina en el sanitario. “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



- Asistir a las pacientes enfermas, débiles, ancianas u obesas. o

Especímenes limpios de chorro medio (ver figuras)




Para hombres, de instrucciones al paciente para: - Retirar el prepucio si no está circuncidado. - Limpiar el glande empezando por la uretra con torundas estériles con jabón o equivalente. - Enjuagar dos veces el área uretral lavada, con torundas estériles con agua. - Desechar la primera porción en el sanitario, la porción media recolectarla en el recipiente estéril y el resto de la micción desechar en el sanitario. Para mujeres, dar instrucciones a la paciente para: - Sentarse en el sanitario, separa los labios menores manualmente - Limpiar el meato urinario y las áreas aledañas con torundas estériles con jabón - Enjuagar dos veces el área limpia con torundas de algodón estériles con agua, del frente hacia atrás. - Desechar la primera porción de orina en el sanitario, la porción media colectarla en el recipiente estéril y el resto eliminarla en el sanitario. o

Especímenes urinarios de catéter

Realizados generalmente en pacientes hospitalizados o postrados. El paciente deberá ser cateterizado previamente por un médico antes de la toma de muestra. - Colocar confortablemente al paciente en posición supina dorsal. Si es

mujer, subir las piernas con los talones juntos y las rodillas bien separadas - Usar guantes estériles y trabajar con un campo estéril. “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



- Limpiar el meato urinario y sus alrededores con torundas con jabón o

equivalente. - Enjuagar el área iniciando con la uretra dos veces, con torundas con agua estéril. - Colocar el catéter estéril dentro de la uretra y avanzar hasta que la orina fluya libremente. Recolectar el espécimen directamente en el contenedor estéril.

7.1.7 Manejo y procesamiento de los especímenes urinarios. El análisis de rutina deberá realizarse preferentemente dentro de las primeras 2 horas. Los especímenes que se mantienen a temperatura ambiente por más de 2 horas pueden mostrar cambios en el pH y constituyentes químicos. La refrigeración de los especímenes puede producir precipitación de uratos amorfos o de cristales de fosfato los cuales pueden interferir con el estudio químico y microscópico. Si el espécimen no puede ser analizado dentro de las primeras dos horas, refrigerar para evitar el crecimiento bacteriano. Antes de analizar el espécimen, dejar atemperar. Esto disolverá el material precipitado. 7.1.8 Recolección de muestras pediátricas. El análisis de muestras pediátricas es muy importante en el diagnóstico. Un diagnóstico pediátrico preciso está determinado por las diferencias en la recolección de especímenes entre pacientes pediátricos y adultos. Los valores de referencia pediátricos difieren de los de adulto es importante que el médico tenga la información pertinente. La obtención de especímenes pediátricos puede ser más difícil que en adultos por: -

Aumento en la posibilidad de contaminación Dificultad para obtener el volumen apropiado de muestra Diferencias en el método de recolección Diferentes necesidades de desarrollo




Se deben seguir las precauciones universales y el uso de guantes como obligatorios durante la toma de muestras. a) Toma de muestras de sangre La toma de muestras de sangre pediátrica requiere de entrenamiento y habilidades especiales. Con los pacientes pediátricos es importante tomar suficiente sangre, pero no demasiada. Los volúmenes apropiados de muestras pediátricas y micromuestras deberán estar disponibles. b) Recolección de orina Si el paciente pediátrico está ya entrenado, la muestra de orina se puede recolectar siguiendo los pasos del punto 7.1.6 sobre especímenes limpios de chorro medio. Si la toma de muestra es de pacientes menores, las alternativas son las siguientes: Cateterización. Procedimiento utilizado para recolección de muestras estériles en pacientes imposibilitados para orinar. Este procedimiento lo debe realizar el médico o el personal a su cargo bajo supervisión directa. Recolección en bolsa para orina. •

•

•

• •

Procedimiento utilizado para colectar orina en pacientes pediátricos sin entrenamiento para utilizar el sanitario. Este procedimiento lo puede realizar el flebotomista o los padres del bebé. Limpiar los genitales y zona periférica como se ha establecido previamente y colocar la bolsa perfectamente adherida para evitar derrames. Una vez que el paciente ha permitido la salida de orina, retirar suavemente la bolsa, sin tocar el contenido. Colocar la bolsa en un recipiente adecuado para su transporte. La bolsa no debe permanecer por más de una hora si se va a realizar un cultivo, ya que existe riesgo de contaminación.

Sonda suprapúvica. Es utilizada ocasionalmente en neonatos o bebés para obtener orina en condiciones completamente estériles, directamente de la vejiga. Este procedimiento debe realizarlo el médico directamente o el personal a su cargo bajo supervisión directa. Consideraciones especiales con pacientes pediátricos. “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



Los niños y bebés no son adultos pequeños; es importante recordarlo al obtener especímenes y realizar procedimientos con niños, particularmente si el procedimiento es doloroso. Los procedimientos se vuelven particularmente difíciles con niños que no han desarrollado completamente sus habilidades verbales. Para evitar respuestas de ansiedad condicionadas, es importante minimizar el impacto de los procedimientos dolorosos. 7.1.9 Especímenes para cultivos microbiológicos. Cultivos de orina. Referirse al procedimiento de toma de muestras de orina de chorro medio, siguiendo los pasos indicados en el mismo. (ver figuras pág.22)

Cultivo de Neisseria gonorrhoeae Mujeres Los especímenes deberán ser obtenidos con un hisopo humedecido con agua estéril para facilitar la recolección, utilizando un espéculo vaginal. Los lubricantes diferentes al agua estéril deberán evitarse ya que pueden ser tóxicos al organismo. El material vaginal se reduce si se limpia el cérvix externo con torundas de algodón. La descarga endocervical deberá ser recolectada con dos hisopos de dacrón o utilizando un hisopo inoculado directamente dentro del medio de cultivo y otro para hacer el barrido para la tinción de Gram. La laminilla deberá ser secada al aire antes de fijarse. La fijación se realiza por inmersión en metanol o pasándola 3 a 4 veces sobre la flama del mechero con precaución. La contaminación con secreciones vaginales reducirá la recuperación de Neisseria gonorrhoeae invalidando la interpretación de la tinción de Gram. Las tinciones de Gram para Neisseria gonorrhoeae en mujeres durante la menstruación no son recomendadas. Hombres Los especímenes deben ser recolectados después de un masaje prostático y cuando menos una hora después de que el paciente hay orinado debido a que los organismos serán lavados de la uretra durante la micción. El exudado prostático será recolectado con un hisopo para cultivo inmediato. Si el paciente produce escasa “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



descarga, utilizar el cepillo uretral o un hisopo delgado para tomar la muestra, insertándolo dentro de la uretra y girando. Utilizar el hisopo para preparar el barrido para tinción de Gram. Secar la laminilla al aire y fijar por inmersión en metanol 3 a 4 veces. Cultivos faríngeos Utilizar hisopos de dacrón o de alginato de calcio para recolectar las muestras para el cultivo. El estreptococo sobrevive en hisopos secos por cerca de 3 horas y en medio de transporte a 4°C por 24 a 48h. Recolección Utilizando un abatelenguas para mantener la lengua abajo, tomar el espécimen directamente de la parte posterior de la faringe, evitar el contacto con los dientes, mejillas, encías o lengua al insertar o retirar el hisopo. La faringe debe ser raspada, no ligeramente rozada, para remover los microorganismos adheridos a la superficie de la faringe. Los puntos blancos en el área superior son especialmente productivos en el aislamiento de estreptococos (ver figura 4).

Área superior Fondo de la garganta Oprimir la lengua hacia abajo Colocar el hisopo contra el fondo de la garganta y moverlo hacia arriba y hacia abajo en el área de la úvula. “El presente distribuye Tomardocumento cualquier se punto blancocomo copia no controlada, es responsabilidad del usuario vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página en elconfirmar fondo de su la garganta http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



Figura 4. Recolección de exudado faríngeo

Cultivos Nasofaríngeos. Recolección de la muestra. Introducir tres cuartas partes de un hisopo estéril de mango flexible de rayón o alginato de calcio por las narinas hasta llegar a la Nasofaringe. Rotar el hisopo suavemente tres o cuatro veces. Retirarlo y depositar el inoculo en una placa de medio de cultivo o depositarlo en un medio de transporte adecuado. (Ver figura 4.1)




Figura 4.1 Recolección de secreciones vaginales o o

o

o

Colocar a la paciente en la posición acostumbrada para un examen vaginal. Examinar la presencia de escoriaciones, inflamación o descarga excesiva en la vulva. Utilizar un espéculo para inspeccionar la mucosa vaginal y el cerviz Utilizar dos hisopos juntos para recolectar las secreciones de las paredes vaginales, saco y áreas inflamadas. Colocar los hisopos en un tubo estéril conteniendo 0.5 mL de solución salina. Mezclar completamente.

Inspección en fresco. La revisión microscópica directa de una preparación fresca de descarga vaginal es una prueba diagnóstica simple y rápida para Tricomonas vaginales . Preparación de la laminilla    

Colocar una laminilla limpia en una superficie plana. Utilizar la punta del hisopo para transferir una gota de la suspensión salina a la superficie del portaobjetos. Colocar inmediatamente un cubreobjetos sobre el material Con un papel absorbente, retire el exceso de líquido de los extremos del portaobjetos Examinar la laminilla directamente al microscopio.

Preparaciones con KOH para hongos. Las preparaciones con KOH son un tipo de preparación fresca a las cuales se les añaden una solución al 10% de hidróxido de potasio (KOH). Estas preparaciones se utilizan para buscar levaduras u hongos y sus hifas en secreciones vaginales, cabello, piel y uñas. Preparación de la solución de KOH al 10% o

o

Añadir 10 g de granallas de KOH a 80 mL de agua desionizada. Mezclar hasta disolución. Completar el volumen a 100 mL con agua desionizada.




Preparación de la laminilla o

o

o

o

Colocar un portaobjetos limpio en una superficie plana. Utilizar la punta del hisopo para transferir una gota de la suspensión salina a la superficie de la laminilla Agregar una gota de KOH 10%. Cubrir inmediatamente la superficie con un cubreobjetos Calentar cuidadosamente con la flama o un foco caliente la parte inferior de la laminilla. No hervir. Examinar la laminilla al microscopio.

Raspado anal Se deben tomar precauciones al realizar el raspado anal, el riesgo de contaminación es alto. Aunque existen estuches especiales para la toma, que contienen una superficie adhesiva cubierta y un soporte especial, se puede colectar la muestra de la siguiente manera: o

o o

o

o o o

Tomar un pedazo de cinta adhesiva de celofán, enrollarla sobre si misma con el extremo adhesivo hacia afuera. Pegar un lado sobre el abatelenguas. Como se muestra en la figura 5. Presionar el extremo pegajoso en la piel perianal para recolectar el espécimen. Colocar la cinta en un portaobjetos, despegar los extremos, descartar el abatelenguas. Presionar la cinta firmemente contra el portaobjetos para eliminar burbujas, usando torunda de algodón Cubrir el lado expuesto como precaución. Lavarse las manos cuidadosamente Examinar la laminilla.

Cinta adhesiva de celofán “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



Figura 5. Preparación de material para toma de muestra perianal. 7.1.10 Transporte de muestras. Provenientes de laboratorios externos Las muestras deberán ser transportadas de acuerdo a las temperaturas de conservación, si son enviadas por laboratorios externos, deberán estar empacadas para su protección, evitando derrames y rupturas. Las muestras de orina y heces en contenedores herméticos con tapón de rosca y boca ancha a temperatura ambiente. Las muestras refrigeradas deberán ser colocadas en hieleras con 2 a 6 geles congelados, dependiendo del tamaño de la hielera. Las muestras congeladas deberán transportarse en hieleras con hielo seco en trozos no muy pequeños esparcidos sobre una capa de muestras. Si las muestras colectadas son orinas, deberán ser colocadas en las charolas dispuestas en la parte central de la toma para posteriormente ser transportadas al laboratorio. Si son muestras de sangre, se colocarán en gradillas separando físicamente de acuerdo al departamento que las procesa, posteriormente se colocarán en recipientes pequeños dentro de la canastilla de atrás de recepción, en donde, mediante la utilización de un sistema de poleas, se harán llegar al laboratorio. Ya en el laboratorio se retirarán de la canastilla y se colocarán en el área de proceso. Si el paciente lleva sus muestras. Recepción deberá: “El presente documento se distribuye como copia no controlada, es responsabilidad del usuario confirmar su vigencia antes de hacer uso de esta versión en la página http://www.lesp-guerrero.gob.mx/



•

Recibir las muestras junto con las órdenes, demográficos y contenido.

para verificación de datos

Colocar las muestras en charolas de plástico para evitar que se derramen o resbalen.

•

Separar las muestras y colocarlas en la canastilla transportadora.

•

Entregar a los laboratorios que las procesarán.




7.2 CARACTERÍSTICAS QUE DEBEN CUMPLIR LAS MUESTRAS PARA SU ANÁLISIS. CC-F-001 Química Clínica Analito

Acido Úrico

Albumina

Bilirrubina total

Calcio

Cloro

Método Enzimático Colorimétrico con factor aclarante de lípidos

Colorimétrico

Muestra requerida Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Fotométrico

Suero 1mL (0.5mL)

Colorimétrico

Suero 1mL (0.5mL)

Química seca

Suero 1mL (0.5mL)

Estabilidad de la muestra (Temperatura*)

Días de proceso

Entrega de resultados

Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses

Lunes a Viernes 8:00 -13:00 hrs.

1 día


1 día


1 día


1 día


1 día




Analito

Método

Colesterol total

Enzimático Colorimétrico con factor aclarante de lípidos

Creatinina

Fosforo

Fosfatasa alcalina

GGT

Glucosa

Fotométrica colorimétrica para mediciones cinética

Fotométrico UV

Estandarizado optimizado

Colorimétrico

Enzimática colorimétrica sin desproteinizacion

Química Clínica Muestra requerida (mínimo) Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Estabilidad de la Días de Entrega muestra de proceso (Temperatura*) resultados Ambiente-72 hrs, Lunes a Refrigeración-7 Viernes días, 1 día 8:00 -13:00 Congelación-2 hrs. meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses


1 día


1 día


1 día


1 día


1 día




Analito

HDL Colesterol

LDL Colesterol

Magnesio

Potasio

Proteínas totales

TGO

Método

Enzimático colorimétrico

Enzimático colorimétrico

Fotométrico

Química seca

Colorimétrico fotométrico

Cinético


Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Estabilidad de la muestra (Temperatura*) Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses

Días de proceso



1 día


1 día


1 día


1 día


1 día


1 día




Analito

Método

TGP

Cinético

Triglicéridos

Enzimático Colorimétrico con factor aclarante de lípidos

Sodio

Quimica seca

Urea

Enzimático Para determinaciones cinética


Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Suero 1mL (0.5mL)

Estabilidad de la muestra (Temperatura*) Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses Ambiente-72 hrs, Refrigeración-7 días, Congelación-2 meses

Días de proceso



1 día


1 día


1 día


1 día

Días de proceso


Hematología Analito

Método

Biometría Hematica

Impedancia método Coulter, tamaño y forma

Grupo sanguíneo Aglutinación Directa en y Rh placa

de la Muestra requerida Estabilidad muestra (mínimo) (Temperatura*) Sangre 2.7mL

a Ambiente-24 hrs, Lunes Viernes Refrigeración-1 8:00 -13:00 días hrs.

1 día

Sangre Total

Ambiente-72 hrs, Lunes a Refrigeración-7 Viernes días, 8:00 -13:00 Congelación-2 hrs. meses

1 día




Hematología Analito

Método

Eosinofilo en Moco Nasal

Tinción de Wright

Plaquetas

Impedancia método Coulter, tamaño y forma

de la Días de Entrega Muestra requerida Estabilidad muestra de (mínimo) proceso (Temperatura*) resultados Ambiente-72 hrs, Lunes a Refrigeración-7 Viernes Moco nasal días, 1 día 8:00 -13:00 Congelación-2 hrs. meses Sangre 2. mL

Velocidad de Sedimentación Globular

Método de Westergren

Sangre 2.7mL

Reticulocitos

Colorante verde de cresil brillante

Sangre 2.7mL

Tiempo de Protrombina

Foto-óptico

Plasma 3mL

Tiempo Parcial de Tromboplastina

Foto-óptico

Plasma 3mL

a Ambiente-24 hrs, Lunes Viernes Refrigeración-1 8:00 -13:00 días hrs. a Ambiente-24 hrs, Lunes Viernes Refrigeración-1 8:00 -13:00 días hrs. a Ambiente-24 hrs, Lunes Viernes Refrigeración-1 8:00 -13:00 días hrs. Ambiente-72 hrs, Lunes a Refrigeración-7 Viernes días, -13:00 Congelación-2 8:00hrs. meses Ambiente-72 hrs, Lunes a Refrigeración-7 Viernes días, -13:00 Congelación-2 8:00hrs. meses

1 día

1 día

1 día

1 día

1 día




Analito Factor Reumatoide

Química Clínica (pruebas de Inmunología) Muestra Estabilidad de la Entrega Días de Método requerida muestra de proceso (mínimo) (Temperatura*) resultados Ambiente-72 hrs, Lunes a Aglutinación Suero 1mL Refrigeración-7 Viernes macroscópica en 1 día (0.5mL) días, Congelación8:00 -13:00 placa 2 meses hrs.

Proteínas ¨C¨ Reactiva

Aglutinación macroscópica en placa

Prueba de embarazo

Imnunoensayo por anticuerpos monoclonales y policlonales

Reacciones Febriles

Aglutinación macroscópica en placa

VDRL

USR prueba rápida para la detección de reaginas luéticas

Suero 1mL (0.5mL)

Ambiente-72 hrs, Lunes a Refrigeración-7 Viernes días, Congelación- 8:00 -13:00 2 meses hrs.

1 día

Suero 1mL (0.5mL)


1 día

Suero 1mL (0.5mL)


1 día

Suero 1mL (0.5mL)


1 día




Química Clínica (pruebas Endocrinología) Analito

Estradiol FSH Hormona Folículo Estimulante HL Hormona Estimulante

Prolactina

Progesterona

Testosterona TSH Hormona Estimulante de la Tiroides

Método

Muestra requerida (mínimo)

Inmunoensayo

Suero sin gel separador 1mL (0.5mL)

Estabilidad de la Entrega Días de muestra de proceso (Temperatura*) resultados Ambiente-72 hrs, Lunes a Refrigeración-7 Viernes 1 día días, Congelación- 8:00 -13:00 2 meses hrs.

Inmunoensayo



1 día

Inmunoensayo



1 día

Inmunoensayo



1 día

Inmunoensayo



1 día

Inmunoensayo



1 día

Inmunoensayo



1 día




Química Clínica (pruebas Endocrinología) Analito

T4 total

T4 libre

T3 total

Método


Inmunoensayo



Inmunoensayo



1 día

Inmunoensayo



1 día




Química Clínica (Toxicología) Analito

Acido Valproico

Carbamezapina

Fenantoina

Método


Inmunoensayo



Inmunoensayo



1 día

Inmunoensayo



1 día

Química Clínica (Tumorales) Analito

PSA total

Método


Inmunoensayo






Química Clínica (Urianálisis) Analito

Método


Examen General de Orina

Tiras reactivas y observación Microscópica

Orina 1mL (0.5mL)

Depuración de creatinina en orina de 24 hrs.

Fotométrico y colorimétrico

Prueba de embarazo en Orina

Imnunoensayo por anticuerpos monoclonales y policlonales

Analito

Perfil Bioquímico

Perfil de Electrolitos

Perfil de Lípidos


Orina 1mL (0.5mL)


1 día

Orina 1mL (0.5mL)


1 día

Química Clínica y Hematología (Perfiles) Muestra Estabilidad de la Entrega Días de Método requerida muestra de proceso (mínimo) (Temperatura*) resultados Ambiente-72 hrs, Fotométrico , Lunes a Suero 1mL Refrigeración-7 Colorimétrico – Viernes 1 día (0.5mL) días, Congelación- 8:00 Enzimático -13:00 2 meses Colorimétrico y Química seca

Colorimétrico

Suero 1mL (0.5mL)

Ambiente-72 hrs, Lunes a Refrigeración-7 Viernes días, Congelación- 8:00 -13:00 2 meses

1 día

Suero 1mL (0.5mL)


1 día




Analito Perfil Ginecológico

Química Clínica y Hematología (Perfiles) Muestra Estabilidad de la Entrega Días de Método requerida muestra de proceso (mínimo) (Temperatura*) resultados Ambiente-72 hrs, Suero sin gel Lunes a Inmunoensayo MEIA- separador 1mL Refrigeración-7 Viernes 1 día FPIA días, Congelación(0.5mL) 8:00 -13:00 2 meses

Perfil Hepático

Espectro fotométrico, colorimétrico, cinético

Suero 1mL (0.5mL)


Perfil Tiroideo

Inmunoensayo MEIAFPIA



1 día

Perfil Reumatoide

Colorimétrico, Aglutinación macroscópica en placa, Westerwreen.

Suero 1mL (0.5mL)


1 día

1 día

* Temperatura: Ambiente 20 - 25 °C, Refrigeración 2 - 8 °C, Congelación -20 °C




Biología Molecular Analito/Ensayo

Método


Diagnóstico molecular del Virus Dengue

RT-PCR de Punto Final

Suero 2mL (0.5mL)

Diagnóstico molecular del Virus Dengue

RT-PCR en Tiempo Real

Suero 2mL (0.5mL)

Carga viral para el VIH

Hibridación de ácido nucleico para la cuantificación directa de RNA del VIH -1

Plasma 3mL (2mL)

Captura de híbridos

Raspado endoexo cervical (sólo en el vial proporcionado para esta determinación)

Diagnóstico molecular del Virus del Papiloma Humano


Días de proceso

Refrigeración-72 horas, Lunes a Congelación -6 Viernes meses, 8:00 -15:00 Congelación- 2 hrs. años Refrigeración-72 horas, Lunes a Congelación -6 Viernes meses, 8:00 -15:00 Congelación- 2 hrs. años


3 días

2 días

Refrigeración-72 Lunes a horas, Viernes Congelación - 6 8:00 -16:00 meses hrs.

5 días


3 días

Ambiente - 1 semana




Biología Molecular Analito/Ensayo

Determinación de Vibrio parahaemolyticus Toxigénico

Método

PCR de Punto Final



Días de proceso

Cepa aislada en agua peptonada Lunes a 3mL ó Cepa Refrigeración - 24 Viernes aislada en medio horas 8:00 -15:00 TCBS, Agar hrs. Soya


3 días

* Temperatura: Ambiente 25 - 30 °C, Refrigeración 3 - 5 °C, Congelación -20 °C y -80 °C




Micobacterias Analito/Ensayo

Método



Días de proceso

Expectoración 3mL (2mL) en serie de tres (1 diaria)

Temperatura Lunes a Diagnóstico de ambiente – 3 días viernes Baciloscopía Tuberculosis Refrigeración - 5 8:00 días 15:00 hrs. Refrigeración: Expectoración Expectoración y 3mL, Orina 50mL biopsias menos de en serie de 6, 24 hrs., Orina, jugo gástrico Lunes a jugo gástrico, 10mL en serie de viernes Micobactiosis Cultivo líquido 3, Líquido 8:00 cefalorraquídeo, Cefalorraquídeo 14:00 hrs. líquido pleural, 2 (1mL), Líquido máximo 2 horas pleural 15 después de haber (10mL) sido tomado. Lunes a Reelectura de Laminillas 100 % Ambiente – 72 Control de viernes laminillas positivas y 10 % calidad de TB horas 8:00 (microscopía) negativas 15:00 hrs. * Temperatura: Ambiente 25 - 30 °C, Refrigeración 2 - 8 °C


3 días

Hasta 63 días

15 días

Citología Exfoliativa

Analito/Ensayo

Método


Control de calidad de CaCU

Reelectura de laminillas (microscopía)

Laminillas 100 % positivas y 10 % negativas


Días de proceso


Ambiente – 72 horas

Lunes a viernes 8:00 15:00 hrs.

3 días

* Temperatura: Ambiente 25 - 30 °C




Virología Analito/Ensayo

Ac IgM Dengue

Ac IgG Dengue

Antígeno NS-1 Dengue Ac IgM Sarampión

Ac IgM Rubeola

Ac VIH presuntiva Ac VIH Confirmatoria

Método

Elisa de captura

Elisa de captura

Elisa directo

Muestra requerida (mínimo) Suero 2mL (1.5mL) Suero 2mL (1.5mL) Suero 2mL (1.5mL)


Entrega Días de de proceso resultados

Refrigeración - 15 días


3 días



3 días

Refrigeración - 72 horas


3 días

3 días

Elisa directo

Suero 1.5mL (1mL)



Elisa captura

Suero 1.5mL (1mL)



3 días



3 días



3 días

Aglutinación pasiva y Elisa Inmunoelectrotransfere ncia (Western Blot)

Suero 1.5mL (1mL) Suero 1.5mL (1mL)




Virología Analito/Ensayo

Búsqueda de Ag del Virus de la Rabia Búsqueda de Ac IgM Hepatitis A y C Búsqueda de Ag de superficie de Hepatitis B Búsqueda de Ag del Virus de la Influenza Búsqueda de ARN de Rotavirus Citomegalovirus

Método

IFD

Elisa directo

Elisa directo


Encéfalo

Suero 1.5mL (1mL) Suero 1.5mL (1mL)


Entrega Días de de proceso resultados



2 días



3 días



3 días

2 días

IFI

Raspado faríngeo



Rotaforesis

Heces 5mL líquida, 5 g sólida



2 días



3 días

Elisa

Suero 1.5mL (1mL)

* Temperatura: Refrigeración 2 - 8 °C




Parasitología y Entomología Analito/Ensayo

Chagas

Toxoplasmosis

Leishmaniasis

Método

HAI, IFI

IFI

IFI

Muestra requerida (mínimo) Suero 1.5mL (1mL) Suero 1.5mL (1mL) Suero 1.5mL (1mL)


Días de proceso




2 días



2 días



2 días

2 días

Identificación de arácnidos

Claves entomológicas InDRE

Espécimen completo - 1

Ambiente - 72 horas


Identificación de chinches

Claves de LentWygodzinsky

Espécimen completo - 1

Ambiente - 72 horas


2 días

Coproparasitosc ópico

Faust, Rutchie, KatoMiura y Directo con solución salina

Materia fecal 10 (5 g)



3 días

Control de calidad de Paludismo

100 % Relectura de laminillas Laminillas positivas y 10 % (microscópico) negativas

Ambiente – 72 horas

Lunes a Viernes 8:00 -15:00 1 semana hrs.

* Temperatura: Ambiente 25 - 30 °C, Refrigeración 2 - 8 °C




Microbiología Epidemiológica Método


Leptospirosis

Microaglutinación en placa

2 muestras de suero 3mL (2mL), la 1ª. a los5-7 días de inicio de síntomas, la 2ª. a los15 días de tomada la 1ª.

Brucelosis

Prueba tamiz (Rosa de bengala) Pruebas confirmatorias (Prueba Estándar, Prueba 2Mercaptoetanol)

Suero 2mL


Lunes a domingo 8:00 – 20:00 hrs.

Cultivo

Materia fecal 2 g en frasco estéril. Hisopos rectales dobles (Medio de transporte de Cary Blair)

Materia fecal Ambiente - 1 día Hisopos rectales Ambiente – 15 días


5 días

Cultivo

Orina 20mL, segunda porción de la micción

Ambiente - 2 horas, después refrigerar


5 días

Analito/Ensayo

Cólera y enteropatógenos

Infecciones de vías urinarias (IVU)


Días de proceso




1 mes

3 días




Microbiología Epidemiológica Analito/Ensayo

Infecciones Respiratorias Agudas (IRAS)

Infecciones de Transmisión Sexual (ITS) Micosis

Infecciones Nosocomiales (IN)

Secreciones

Biopsias o Tejidos

Método

Cultivo

Cultivo

Cultivo

Cultivo

Cultivo

Cultivo

Muestra requerida (mínimo) Exudado faríngeo (medio de transporte Stuart) Exudado nasofaríngeo (Medio de transporte Cefalexina) Exudado vaginal y uretral (Medio de transporte Stuart)


Días de proceso


faríngeo Ambiente - 1 día Nasofaríngeo – menos de 1 día


10 días

Ambiente - 1 día


6 días


20 - 40 días

Lunes a domingo 8:00 – 20:00 hrs

7 días


7 días


7 días

Muestras cutáneas, Ambiente - 1 día expectoración, raspado de uñas Superficies vivas (lavado de manos), Inertes (mesa, cuneros, Refrigeración – 1 cama, pared, día lámpara, lavabo entre otros) en solución Buffer Exudado de secreciones (Medio de Ambiente - 1 día transporte Stuart) Solución salina

Ambiente - 1 día


GUÍA PARA LA TOMA, MANEJO,

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