La ©ísplor sploraeS aeSéD éDU U ©Hm ©Hmf ea d e l ©afeaDD® Antonio Fernández Casasnovas Tomás Conde Ayuda Javier Fondevila Abenia
SEKyET
En este libro se presenta la exploración clínica fundamental de los caballos. Antes de realizar cualquier diagnóstico clínico o de recoger las muestras para enviar al laboratorio y que nos sirvan de apoyo al diagnóstico, es necesario realizar una correcta exploración clínica. En muchas oca siones, este paso del diagnóstico se pasa por alto y el clínico pasa directamente al tratamiento o lleva a cabo una prueba exploratoria, que muchas veces es cara, difícil de realizar, se tiene que realizar en un hospital o incluso es innecesaria para llegar al diagnóstico. La exploración clíníca bien hecha es un acto sencillo y, si se realiza de forma exhaustiva, or denada y completa, en un lugar tranquilo y sin interferencias, permite reconocer muchos sín tomas que nos conducirán al diagnóstico. Afortunadamente, hoy en día y debido al avance de las ciencias clínicas veterinarias, el veterinario de équidos posee un amplio arsenal de pruebas diagnósticas que le van a permitir alcanzar un grado de precisión diagnóstica que hasta hace poco no se podía ni imaginar. Todas las técnicas de imagen como la moderna radiografía digital, el avance de la ecografía, circunscrita no sólo al ámbito reproductor o del aparato locomotor, sino a la exploración de otros órganos en especial el corazón (ecocardiografías), escintigrafías o las modernas técnicas de imagen como el TAC, escapan del objetivo de este libro. Para ello, el clínico dispone de excelentes manuales con una amplia gama de libros, revistas o páginas web sobre exploración de équidos y que se puede consultar en el apartado de bibliografía del libro. El libro está dividido en 10 capítulos siguiendo la exploración de los distintos aparatos y siste mas y en ella se incluyen los procedimientos básicos de exploración. También se incluyen otras técnicas diagnósticas que se hacen a nivel hospitalario pero que no son de aplicación a nivel de campo, que es lo primero que el veterinario se va a encontrar cuando el propietario llame al clínico para atender a un caballo enfermo. En el texto también se encuentran algunas tablas con las principales alteraciones bioquímicas que se producen en las enfermedades de los caballos y que pueden ser útiles a la hora de interpretar los análisis de laboratorio. Aunque el libro se titula “Exploración clínica de los caballos", no queremos olvidar a los otros équidos, y que también son objeto de atención en este manual. Nos referimos a los humildes asnos y mulos, que antaño ocupaban, con su papel de fuerza de trabajo en las tareas agrícolas, un importante foco de atención veterinaria a la que los clínicos acudían. Hoy en día, es el caballo dedicado al ocio y al deporte el que abarca nuestro interés, lo que ha originado la aparición de nuevas patologías como consecuencia de esa actividad física, afectando en buena medida al aparato locomotor.
En este libro se presenta la exploración clínica fundamental de los caballos. Antes de realizar cualquier diagnóstico clínico o de recoger las muestras para enviar al laboratorio y que nos sirvan de apoyo al diagnóstico, es necesario realizar una correcta exploración clínica. En muchas oca siones, este paso del diagnóstico se pasa por alto y el clínico pasa directamente al tratamiento o lleva a cabo una prueba exploratoria, que muchas veces es cara, difícil de realizar, se tiene que realizar en un hospital o incluso es innecesaria para llegar al diagnóstico. La exploración clíníca bien hecha es un acto sencillo y, si se realiza de forma exhaustiva, or denada y completa, en un lugar tranquilo y sin interferencias, permite reconocer muchos sín tomas que nos conducirán al diagnóstico. Afortunadamente, hoy en día y debido al avance de las ciencias clínicas veterinarias, el veterinario de équidos posee un amplio arsenal de pruebas diagnósticas que le van a permitir alcanzar un grado de precisión diagnóstica que hasta hace poco no se podía ni imaginar. Todas las técnicas de imagen como la moderna radiografía digital, el avance de la ecografía, circunscrita no sólo al ámbito reproductor o del aparato locomotor, sino a la exploración de otros órganos en especial el corazón (ecocardiografías), escintigrafías o las modernas técnicas de imagen como el TAC, escapan del objetivo de este libro. Para ello, el clínico dispone de excelentes manuales con una amplia gama de libros, revistas o páginas web sobre exploración de équidos y que se puede consultar en el apartado de bibliografía del libro. El libro está dividido en 10 capítulos siguiendo la exploración de los distintos aparatos y siste mas y en ella se incluyen los procedimientos básicos de exploración. También se incluyen otras técnicas diagnósticas que se hacen a nivel hospitalario pero que no son de aplicación a nivel de campo, que es lo primero que el veterinario se va a encontrar cuando el propietario llame al clínico para atender a un caballo enfermo. En el texto también se encuentran algunas tablas con las principales alteraciones bioquímicas que se producen en las enfermedades de los caballos y que pueden ser útiles a la hora de interpretar los análisis de laboratorio. Aunque el libro se titula “Exploración clínica de los caballos", no queremos olvidar a los otros équidos, y que también son objeto de atención en este manual. Nos referimos a los humildes asnos y mulos, que antaño ocupaban, con su papel de fuerza de trabajo en las tareas agrícolas, un importante foco de atención veterinaria a la que los clínicos acudían. Hoy en día, es el caballo dedicado al ocio y al deporte el que abarca nuestro interés, lo que ha originado la aparición de nuevas patologías como consecuencia de esa actividad física, afectando en buena medida al aparato locomotor.
El libro se ha ilustrado con una amplia colección de imágenes para hacerlo más ameno y para ayudar al que quiere realizar o recordar una determinada exploración clínica. Estas imágenes han sido obtenidas en los últimos años como consecuencia de nuestra actividad clínica pero también, muchas otras se han tomado para la elaboración del libro. Esperamos que este libro sirva de ayuda a aquellos estudiantes o profesionales que quieran actualizar o recordar sus conocimientos de la propedéutica clínica de équidos. Los autores so mos profesores universitarios y clínicos y hemos tratado de imprimir una visión didáctica y útil de la información facilitada, huyendo deliberadamente de las largas descripciones de las técnicas de exploración. Si lo hemos logrado y al lector le resultan útiles habremos alcanzado nuestro objetivo que no es otro que enseñar y transmitir nuestros conocimientos. Los autores Agosto de 2011
Historia clínica.................................
1
Anamnesis....................................................... Inspección del medio que rodea al animal Exploración en la distancia............................. Constantes vitales........................................... Temperatura..................................................... Frecuencia respiratoria (rpm).............................. Frecuencia cardiaca (ppm)................................. Grado de hidratación......................................... Tiempo de llenado capilar (TRC) ......................... Color de las mucosas........................................ Determinación de la edad por la dentición...... Ficha de inspección veterinaria ......................
2 3 4 5 5 6 6 7 8 8 9 12
.....
Manejo y comp ortamiento ................. 15 Manejo y bienestar animal .............................. 16 Manejo de los potros {<6 meses) .................... 19 Identificación................................................... 20 Destete de ios potros ...................................... 21 Métodos de contención o inmovilización física..................................... 22 Inmovilización farmacológica.......................... 24 Agentes sedativos............................................ 24 Tranquilizantes ............................................. 24 a -2 agonistas................................................ 24 Benzodiacepinas............................................ 24 Opioides....................................................... 24 Agentes anestésicos......................................... 25 Derribo y manejo del animal en decúbito....... 26 Castración....................................................... 27 Posibles complicaciones posoperatorias ............ 28 Inflamación.................................................... 28 Infección........................................................ 28 Hemorragias................................................. 28 Eventración................................................... 28
Exploración clínic a de la capa, la piel y el sist ema linf átic o .............. 29 Introducción.................................................... 30 Historia clínica................................................ 31 Valoración de la capa.......................................33 Cambios de coloración de la piel y de las mucosas...............................................34 Humedad de la piel: glándulas sudoríparas y sebáceas....................................................... .34
Elasticidad de la piel.......................................... 35 Temperatura de la piel....................................... 35 Aumento del volumen de la piel .......................... 36 Prurito o picor................................................... 36 Lesiones elementales de la piel.......................... 37 Lesiones primarias......................................... 37 Lesiones secundarias.................................... 38 Toma de muestras.......................................... 40 Raspado de la piel........................................... 40 Cepillado de la piel............................................ 40 Muestra de pelo ............................................... 41 Toma de muestras con cinta adhesiva transparente .................................................... 41 Aspiración con aguja fina................................... 42 Biopsia cutánea............................................... 43 Toma de muestras para hongos o infecciones bacterianas.................................. 44 Cultivos de hongos........................................ 44 Cultivos bacterianos.......................................... 44 Test intradérmico.............................................. 45 Ficha dermatológica....................................... 47 Exploración del sistema linfático .................... 50 Inspección y palpación...................................... 50 Punción de los nodulos linfáticos ........................ 50
Exploración de o rejas y o jo s.......... 51 Exploración de las orejas............................... 52 Inspección dinámica.......................................... 52 Situaciones................................................... 52 Inspección estática............................................ 52 Alteraciones.................................................. 53 Exploración de los ojos ................................... 55 Introducción...................................................... 55 Material............................................................ 56 Exploración....................................................... 58 Sedación...................................................... 58 Anestesia tópica............................................ 58 Bloqueos regionales....................................... 58 Bloqueo del nervio auriculopalpebral ............ 58 Bloqueo del nervio supraorbitario................. 59 Exploración con luz........................................... 59 Examen visual............................................... 59 Párpados...................................................... 60 Región conjuntival......................................... 62 Aparato lacrimal............................................. 63
Reflejos sensoriales.........................................65 Reflejo de amenaza.................................... .65 Reflejo pupilar..............................................66 Exploración en oscuridad.................................. .66 Linterna de bolsillo..........................................66 Córnea.......................................................66 Segmento anterior ..................................... .68 Oftalmoscopio directo.................................... .68 Oftalmoscopio indirecto................................. .69 Pruebas diagnósticas.........................................70 Hisopo.......................................................... .70 Raspado-frotis.............................................. .70 Tinciones oftálmicas....................................... .71 Dacriocistorrinografía..................................... .71 Test de Schirmer.............................................72 Tonometría.....................................................72 Ecografía del globo ocular................................73 Radiología......................................................73 Gonioscopia.................................................. .73 Otras técnicas............................................... .74
Exploración del aparato respiratorio
75 Anamnesis........................................................76 Valoración del estado general......................... .76 Fosas nasales................................................. .77 Inspección.........................................................77 Palpación......................................................... .77 Examen funcional...............................................77 Senos paranasales...........................................79 Palpación...........................................................79 Percusión...........................................................80 Exploración de laringe y tráquea .................... .81 Palpación...........................................................81 Auscultación de las vías respiratorias altas.......... .82 Métodos complementarios de exploración de las vías respiratorias altas.......................... .83 Radiografías.......................................................83 Trepanación de los senos.................................. .83 Exploración de las bolsas guturales................ .84 Inspección.........................................................84 Palpación......................................................... .85 Percusión...........................................................85 Exploración del tórax respiratorio ................... .86 Inspección.........................................................86 Palpación...........................................................87 Percusión...........................................................88 Auscultación......................................................89 Modificaciones de los sonidos normales ............. .90 Sonidos anormales del pulmón.......................... .90 Toracocentesis................................................. .90
Radiografías...................................................... .91 Ecografía.......................................................... .91 Endoscopia de vías respiratorias altas................. .91 Aspirado transtraqueal....................................... .92
Exploración del sistema cardiovascular ......................................... 95 Inspección y palpación................................... 96 Percusión cardiaca......................................... 97 Auscultación................................................... 98 Frecuencia cardiaca.......................................... 99 Ritmo............................................................... 99 Soplos cardiacos...............................................101 Soplos sistólicos............................................101 Soplos diastólicos..........................................101 Soplos continuos...........................................101 Sitio de máxima intensidad y radiación del latido.. 101 Frémito....................................................... ...... 101 Electrocardiografía..........................................102 Interpretación del ECG......................................102 Análisis de las ondas.........................................102 Onda P .........................................................102 Complejo QRS..............................................103 Ond aT .........................................................103 Pruebas de resistencia................................... 104 Pruebas de resistencia y arritmias...................... 104 Soplos cardiacos y ejercicio...............................104 Recuperación después del ejercicio ................... 104 Uso de cintas rodantes...................................... 104 Ecocardiografía.............................................. 105 Valoración del sistema vascular ..................... 106 Pulso arterial..................................................... 106 Punción arterial y análisis de gases sanguíneos.... 106 Capilares.......................................................... 107 Venas y pulso venoso........................................107 Punción venosa y análisis de sangre .................. 108 Tipos de muestras sanguíneas....................... 108 Sangre.......................................................108 Suero.........................................................108 Plasma .....................................................109 Análisis hematológico.................................... 110 Serie roja................................................... 110 Serie blanca............................................... 111
Exploración del aparato digestivo 115 Exploración de la bo ca ................................... 117 Exploración de la faringe................................ 120 Exploración del esófago................................. 121 Exploración del estómago...............................122 Exploración de la cavidad abdominal ............. 123
Examen clínico..................................................123 Inspección........................................................123 Auscultación abdominal.................................... 125 Palpación rectal ................................................ 126 Sondaje nasogástrico........................................128 Paracentesis abdominal.................................... 129 Método.........................................................129 Evaluación de la muestra................................130 Alteraciones más comunes............................. 130 Exploración del hígado................................... 131 Biopsia hepática............................................... 131 Anamnesis e historia clínica ............................133
Exploración del sistema genitourinario ..........................................135 Aparato gen ital............................................... 136 Macho: el semental...........................................136 Introducción................................................. 136 Historial y anamnesis.........................................137 Exploración directa........................................... 138 Genitales externos.........................................138 Testículos y escroto.................................... 138 Pene y prepucio.........................................138 Genitales internos..........................................138 Glándulas accesorias................................. 138 Ampolla del conducto deferente..................139 Próstata.....................................................139 Glándulas bulbouretrales .............................139 Glándulas vesiculares ................................ 139 Anillos inguinales............................................139 Extracción del semen en caballos ...................... 140 Vagina artificial............................................... 141 Colector cervical............................................142 Hembra: la yegua............................................. 144 Introducción .................................................. 144 Fisiología....................................................144 Ciclo estral................................................ 144 Historia clínica. Anamnesis................................ 145 Exploración.......................................................145 Directa......................................................... 145 Genitales externos......................................145 Vulva y región perianal.............................145 Genitales internos.......................................145 Vestíbulo................................................ 146 Vagina.................................................... 146 Útero......................................................146 Ovarios..................................................147 Palpación rectal............................................. 147 Pruebas complementarias: ecografía.............. 148 Diagnóstico de gestación ............................148 Patologías más frecuentes detectadas con ecografía............................ 149
Ováricas................................................. 149 Uterinas................................................. 149 Vaginales .............................................. 150 Aparato urinario.............................................. 151 Introducción......................................................151 Historia clínica................................................... 152 Exploración.......................................................152 Directa.......................................................... 152 Inspección................................................. 152 Palpación rectal............................................ 152 Pruebas complementarias..............................152 Análisis de orina.........................................153 Perfil bioquímico de la función renal ............. 153 Ecografía................................................... 155 Biopsia renal.............................................. 155
Exploración del aparato locomotor ..................................................157 Exámen gen eral..............................................158 Anamnesis........................................................158 Examen en estación..........................................158 Conformación de los aplomos en estación y locomoción de los miembros del caballo......... 158 Inspección regional........................................161 Palpación......................................................161 Percusión...................................................... 163 Examen de la marcha .......................................163 Pruebas diagnósticas complementarias..............166 Bloqueo nervioso diagnóstico......................... 166 Radiología.................................................... 166 Ecografía....................................................... 168 Analíticas laboratoriales.................................. 168 Artroscopia de la articulación......................... 168 Termografía...................................................168 Gammagrafía ósea con tecnecio-99m ............ 168 Resonancia magnética nuclear ....................... 168 Tomografía computarizada.............................168 Examen clínico del aparato muscular ............. 169 Examen............................................................ 169 Inspección.................................................... 169 Palpación y manipulación ..............................169 Pruebas de extensión, flexión y abducción...... 169 Examen de la espalda y el miembro anterior ....... 169 Examen del dorso..............................................169 Examen de la grupa...........................................169 Examen clínico del aparato tendinoso ............ 170 Palpación..........................................................170 Ecografía.......................................................... 170 La ecografía de los tendones flexores en el miembro anterior ................................... 171 Examen clínico del aparato podotroclear ....... 172 Diagnóstico clínico.............................................172
Observación.....................................................172 Palpación..........................................................172 Prueba de la cuña de Lungwitz..........................172 Examen clínico del aparato osteoarticular 173 .....
Exploración del sistema nervioso
175 Historia clínic a................................................178 Exploración neurológica de la cabeza ............ 179 Exploración de pares craneales..........................179 N. olfatorio (par I)............................................179 N. óptico (par II).............................................179 N. oculomotor (par III).....................................179 N. troclear (par IV) .........................................179 N. trigémino (par V) ....................................... 180 N. abducens (par VI) .....................................180 N. facial (par VII) ............................................180 N. vestibulococlear (par VIII)...........................181 N. glosofaríngeo (par IX), N. vago (par X), N. espinal accesorio (par XI)............................181 N. hipogloso (par XII)...................................... 181 Exploración de la postura y la marcha ............ 182 Evaluación de la debilidad o paresia....................183 Evaluación de la incoordinación o ataxia.............183 Hipermetría.......................................................183 Hipometría........................................................183 Exploración del cuello y extremidades anteriores...............................184 Exploración del tronco y de las extremidades posteriores .................... 184 Exploración de la cola y el an o.......................185 Exploración de caballos en decúbito..............185 Obtención de líquido cefalorraquídeo ............. 186 Otras técnicas exploratorias...........................187 Ficha de examen neurológico del caballo 188 ......
Bibliografía...............................................191
Historia clínica
Historia clínica Anamnesis Inspección del medio que rodea al animal Exploración en la distancia Constantes vitales Determinación de la edad por la dentición Ficha de inspección veterin aria
Anamnesis En cada caso clínico se debe de recoger un conjunto de datos muy valiosos que nos proporcionan infor mación de las circunstancias que han llevado al ani mal hasta esa situación. Muchos de los datos tendrá que deducirlos el propio veterinario, pero otros y muy importantes nos los aportará el propietario del animal. A este conjunto de datos lo llamamos anamnesis. Esta palabra, originaria del griego, significa “traer a la memoria". Por lo tanto, es toda la información que se recoge para incorporarla a la ficha clínica. Una buena anamnesis consiste en recopilar mu chos datos que le vamos a preguntar al propietario; o simplemente en dejarle hablar para que él lo explique a su manera. Es importante: • Conocer la esencia de lo que realmente quiere de cir el propietario, es decir, eliminar el subjetivismo del mismo. • Preguntar absolutamente todo lo que se nos ocu rra, puesto que hasta la respuesta más simple nos va a dar una información que puede ser determi nante en el diagnóstico del problema. • No emplear demasiados tecnicismos que el dueño del animal no pueda entender o sentirse mal al no hacerlo y que puedan omitir información; y si se hace, explicarlo para que lo pueda entender. • El dueño del caballo no tiene por qué saber lo que le ocurre y hay que dejar que nos explique con sus palabras lo que él ve y cómo lo ve, para ir in terpretando la información.
El veterinario debe conversar con el propietario del caballo para recoger todos los datos necesarios para la anamnesis.
Las preguntas básicas que se formulan son: • ¿Qué le pasa? • ¿Desde cuándo? • ¿A qué puede ser debido? Preguntas secundarias: • ¿Ha cambiado algo en la rutina del animal? • ¿Ha sido transportado o ha habido movi miento de caballos en la misma cuadra? • ¿Cuándo fueron las últimas vacunas y desparasitaciones? • ¿Qué tipo de actividad desarrolla el caballo? • ¿Qué edad tiene? • ¿Se le ha tratado con alguna medicación? • ¿Está gestante? • Última comida administrada (Ver ficha inspección veterinaria al final del capítulo)
Inspección del medio que rodea al animal Cuando el veterinario llega a una visita, es impres cindible comprobar y examinar dónde vive habitual mente el caballo, puesto que nos va a dar una infor mación muy valiosa a la hora de completar nuestra ficha clínica y anamnesis. Hay que fijarse si el animal vive en un box, en un campo o en un lugar mixto. Cada uno de estos lu gares debería requerir unas condiciones adecuadas para los caballos, que en muchos sitios no se cum plen y esto puede provocar ciertos accidentes que pueden evitarse cumpliendo unas normas básicas.
Al mismo tiempo que se observa el entorno y el propietario comienza a relatar lo que ha ido obser vando en el animal, el veterinario realiza un examen general que permitirá hacernos una idea de la grave dad del problema, de su evolución en el tiempo y en un posible pronóstico.
Los caballos en libertad pueden permanecer mucho tiempo tumbados.
Caballo estabulado en un box.
Yeguas gestantes en una corraleta.
Caballos pastando en el Pirineo Aragonés.
Animales en un recinto cercado con alambre de espino.
Exploración en la distancia Principalmente nos vamos a fijar: ° En la postura del animal, si está tumbado o en es tación. Un caballo cuando está tumbado debería levantarse en cuanto nos acercamos y una vez levantado mantenerse de pie. Por el contrario, si avanzamos hacia otro lugar y vuelve a tumbarse no es buena señal. « Si el caballo está tumbado del todo con la cabeza tocando el suelo o adopta la posición de "perro sentado", indica que la situación es grave. ° Una vez en estación, hay que fijarse en la postura que adopte el caballo, en la posición del cuello (arriba o abajo), orejas, belfo, movimientos mas ticatorios repetidos, rechinar de dientes, colora ción de los ojos y su expresividad, extremidades (abiertas o en posición normal), cola (movimiento continuo o quieta), respiración (aumentada o dis minuida, superficial o profunda). Caballo tumbado descansado, cuando nos acercamos reacciona levantándose. ° Si se mueve de manera incontrolada, está agre sivo o totalmente apático. ° El estado de nutrición nos va a proporcionar una información de la alimentación que lleva el animal, del tiempo que lleva enfermo o con la patología, o bien si ha perdido mucho peso en poco tiempo. ° Si el animal no se acerca a comer cuando se le ofrece comida es un claro indicador de que no se encuentra bien. ° Nos debemos fijar en las heces: si son más duras de lo normal, más blandas o menos frecuentes. ° Por último nos fijaremos en la presencia de cicatri4 ces o heridas, aumentos de volumen corporal que alteren la simetría del mismo, aspecto de la capa y presencia de secreciones nasales o descarga vaginal. Potro de 7 meses en estado de caquexia.
_ _ _
Constantes vitales Temperatura La temperatura normal del caballo adulto oscila entre 37,5-38,5 °C; en el caso de los potros (<6 meses) esta temperatura puede estar ligeramente aumen tada, aunque cada caballo tiene su temperatura de terminada. Por esta razón, es conveniente compro bar la temperatura de cada caballo, para que en el momento que tenga algún problema el propietario pueda decir si es normal o no en él. La temperatura en el caballo se toma por vía rectal y hay que tener en cuenta no tomarla justo después de que haya realizado ejercicio porque estará ele vada; conviene esperar al menos unos quince minu tos tras la actividad física. Situaciones con aumento de temperatura Infección Golpe de calor Fisiológica {hasta 39 °C) Ejercicio intenso Hipoxia cerebral Anhidrosis
Debemos colocar el termómetro algo inclinado, tocando la pared del recto, de tal manera que nos aseguremos de no penetrar el termómetro dentro de una masa de heces, lo que daría una temperatura errónea. También es muy importante la posición del veterinario a la hora de tomarla para evitar cualquier coz por parte del caballo. Para ello, nos acercaremos tocando con la mano el dorso y la grupa del animal, levantaremos la cola e introduciremos el termómetro. Primero, dar unos golpecitos alrededor del ano para que se acostumbre y después se introduce el termó metro en el recto durante al menos dos minutos.
Situaciones con disminución de temperatura Shock Hipotermia Cólicos graves Yeguas antes de parir Frío extremo Mala circulación Potros neonatos
Tom a de tempe ratur a vía rectal
Se debe introducir el termómetro de manera oblicua haciendo contacto con la pared del recto.
Frecuencia respiratoria (rpm) La frecuencia normal en un caballo sano oscila entre 10 y 16 rpm (en los potros de 20-30 rpm) y debe ser regular, homogénea, rítmica. Para tomarla nos pone mos a una distancia de unos dos metros y compro bamos el movimiento del tórax, el movimiento de los flancos o el de los ollares. También podemos acer carnos y poner la mano en los ollares para notar la salida del aire y contar las respiraciones por minuto. Frecuencia aumentada (taquipnea) y con dificultad (disnea) puede verse en casos de: • Dolor abdominal (cólico) • Enfermedades respiratorias • Reacciones anafiláctícas
Observar los movimientos de los ¡jares para contar el número de respiraciones por minuto.
Frecuenci a cardi aca (ppm) La frecuencia cardiaca normal en un caballo es de 30-44 pulsaciones por minuto (ppm) (en potros de 50-100 ppm). Depende de la raza, edad, peso cor poral y nivel de entrenamiento del animal. Para medir la frecuencia cardiaca haremos uso del es tetoscopio y se ausculta en la parte izquierda del ca ballo, justo detrás de la articulación del codo. O bien colocando los dedos en una de las arterias siguientes: • Arteria facial que pasa por debajo de la mandíbula inferior. • Arteria digital de las extremidades en la articula ción metacarpofalángica. • Arteria temporal, por detrás de la comisura lateral del ojo. • Arteria coccígea, en la cara ventral de la cola.
Auscultación cardiaca en el lado izquierdo del animal.
Comprobar con el dorso de la mano el aire espirado para contar las respiraciones,
Toma del pulso en la artería facial
La frecuencia cardiaca es un claro indicador del grado de dolor que presenta un animal en procesos como el cólico. En caballos que presentan una fre cuencia de 60 ppm podemos intuir que el cólico es leve, si es de 80 ppm es moderado y por encima de 100 ppm es grave, lo que indica un grave deterioro cardiovascular.
Grado de hidratación Para medir el grado de hidratación, realizamos la téc nica del pliegue cutáneo en la zona preescapular o en las tablas del cuello; se pellizca la piel del caballo y luego se suelta. Se debe contar cuántos segundos necesita la piel para volver a su estado original. En condiciones normales debería tardar menos de dos segundos, por encima de eso nos indicaría un cierto grado de deshidratación. Otros signos para valorar el estado de deshidra tación, especialmente cuando están muy afectados, son el hundimiento del ojo, mucosas orales secas, disminución de la producción de orina y menor dis tensión de la vena yugular.
Realización del pliegue cutáneo en el cuello.
Pliegue en la articulación escápulo-humeral.
Hidratando al caballo durante una carrera de raid.
Grado de deshidratación y déficit de fluidos que presentará un caballo de 500 kg
Grado de deshidratación
Signos clínicos
% Peso corporal
Déficit/I para caballo de 500 kg
Ligera
Tpliegue cutáneo
5
25
Media
7
35
Moderada
>í pliegue cutáneo ojos caídos, extremidades frías
9
45
Grave
hipotermia, moribundo, tumbado
12
60
Tiempo de llenado capilar (TRC)
Color de las mucosas
Es una sencilla prueba que se utiliza para evaluar la perfusión periférica. Se presiona con el dedo en las en cías, la mucosa se queda blanca y se cuenta el tiempo que tarda en recuperar su color. Se puede considerar normal un TRC de 1-2,5 segundos. Un TRC superior a 3 segundos se considera anormal, indicando una perfusión periférica inadecuada debido a una hipovolemia o vasoconstricción en situaciones de shock.
El color de las mucosas nos indica el estado del sis tema vascular y la gravedad del animal. Se puede comprobar en la mucosa oral o conjuntival. Las modificaciones del color de las mucosas son: • Rosas: las mucosas normales son rosáceas. • Pálidas: pueden indicar un estado de anemia. • Amarillentas: casos de ictericia debido a una piroplasmosis o incluso a un ayuno prolongado en estados de cólico. • Rojas/congestivas: el enrojecimiento de las mu cosas indica hemoconcentración y vasodilatación capilar. El color puede ir oscureciendo a medida que avanza el estado de shock hipovolémico o de endotoxemia, y con ello también aumenta el tiempo de llenado capilar, excepto en las fases ini ciales del proceso que está aumentado. • Azul: unas mucosas cianóticas nos indican un pronóstico grave debido a un gran compromiso vascular.
Zona donde tiene que observarse el TRC.
Mucosa conjuntival rosácea de un caballo sano.
Comprobar el TRC es imprescindible para valorar la correcta perfusión capilar. Caballo con mucosas pálidas en estado de anemia.
Estado correcto del TRC en un caballo sano.
Mucosas enrojecidas debido a una endotoxemia.
Determinación de la edad por la dentició n La importancia de una correcta dentadura en el ca ballo se debe a que es la primera porción del tubo digestivo, por lo que cualquier lesión bucal o altera ción dentaria producirá una deficiente aprehensión y masticación del alimento, y por consiguiente una mala digestión de ellos y un déficit nutricional en el animal, lo que finalmente se traduce en la disminu ción de cualquiera de las actividades productivas en la que se utilice el caballo. Los dientes de los caballos se diferencian de los de los humanos en que, en los individuos adultos, crecen durante toda la vida. Como los dientes se desgastan continuamente por el efecto lija de los alimentos con mucha fibra, el crecimiento continuo evita que se desgasten rápidamente.
Las características de los dientes (forma, angulación y marcas) cambian a medida que el caballo crece, y este fenómeno se utiliza para saber la edad del caballo. Sin embargo, a partir de los seis años, dictami nar con exactitud la edad real del caballo puede ser inexacto debido a las diferencias masticatorias entre ellos. La mandíbula superior es algo más ancha que la inferior, los premolares superiores están colocados algo más separados que los premolares inferiores.
Evolución de la dentadura con la edad 0-2 semanas
2 dientes incisivos temporales más el 2oy 3Wpremolar
1 mes
4 dientes incisivos temporales y 3 molares
6-9 meses
6 incisivos temporales
12 meses
4 premolares
1,5 años
5 premolares
2,5 años
2 dientes permanentes sustituyen a dos temporales
3,5 años
4 incisivos permanentes
4 años
4 caninos y 6 molares
4,5 años
6 incisivos permanentes
.................
Imagen de dientes permanentes
Dentadura decidua
Potro de 2,5-3 años
Potro de 4 anos
Caballo de 7 años
Caballo de 9 años
Caballo de 10 años
Caballo de 17 años
Cambios morfológicos más relevantes: • Desa parición de los infun díbulos : a medida que su superficie se desgasta, la parte vacía del mismo desaparece, quedando expuesto un pe queño núcleo de cemento y alrededor un anillo de esmalte, denominado marca dentaria. • Desaparición de la marca: en los caballos más jóvenes es ovalada y con la edad y el desgaste se va haciendo redondeada y desapareciendo en dirección lingual en la superficie oclusal. • Aparició n de la estrella dentaria: suele aparacer a los 5 años, 6 y 7 años en los centrales, medios y extremos.
• Pico de gavilán: aparece a los 7 años y se des gasta para volver a aparecer a los 11 -13 años. • Ángulo incisivo: en una vista lateral, entre las dos arcadas incisivas, en animales jóvenes quedan aproximadamente en linea recta y con la edad se hace más agudo. • Surco de Galvayne: es un parámetro para deter minar la edad del caballo a partir de los diez años, aunque solo aparece en un 50% de los caballos. A los 15-20 años debe ocupar desde la mitad de la superficie labial hasta el final en los incisivos ex tremos superiores.
Caballo joven
Cemento _ Esmalte _
Cemento Dentina .
Marca dentaria
Cavidad de la pulpa
Estrella dentaria
Caballo adulto
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r- -- -
Dentaduras de équidos en diferent es edades ' ' I l j il r f I T T r i h i l f f M B l T i r t P i B ' M f c l g l i» i I l i ' ir I ■ i i r V É B il MIÉ fi rT ^ tt
7 años
____
3 años
Ficha de inspección veterinaria Datos generales
Nombre del propietario__________________________________ Apellidos ___________________________ Localidad
Provincia
Teléfono
Da t o s y s e ñ a s d e i d e n t i f i c a c i ó n
Nombre del caballo_____________________________________Ra7a _______________________ Capa ____________ Sexo _______________________________________________ Uso_________________________________________ Fecha de nacimiento (indicar al menos el año)_____________________________________________________________ Marcas y cicatrices_________________________________________________________________________________ N° Mícrochip__________________________________________¿Se ha leído en el momento de la inspección? Sí □ No Lugar de estabulación:______________________________________
Comprobar e indicar si el animal coincide con el descrito en la documentación acreditativa de su identidad y valor (carta genealógica, TSE...) ¿Se ha comprobado la identidad del caballo y su documentación? Sí □ No _________________________________ ¿Qué documentación ha revisado el veterinario? (Tarjeta sanitaria equina, carta genealógica...) _____________________ Indicar n° o código de la documentación consultada: ___________________________________ n° lie:
n°TSE
n° pasaporte
otros:
Existen antecedentes o evidencia de... (en caso afirmativo indicar tipo y trascendencia actual y futura) ¿Vicios o hábitos perjudiciales? No □ Sí □ Describir___________________________________________ ¿Cirugía abdominal? NoD SÍD __________________________________________________________ ¿Otras intervenciones quirúrgicas? No
Sí
¿Cuál?__________________________________________
¿Enfermedad infecto-contagiosa? No
Sí
¿Cuál?__________________________________________
¿Episodios de cólico? NoD SÍD Fechas y trascendencia ______________________________________
¿Antecedentes de laminitis? No D Sí D_____________________________________________________ ¿Antecedentes de cojeras? No D Sí D Describir______________________________________________ ¿Está tomando algún medicamento actualmente? No D Sí D ¿Cuál? ______________________________ ¿Ha recibido algún tratamiento médico en los últimos 60 días? No D SíD ¿Cuál?_____________________ Últimas vacunaciones y desparasitaciones. (Indicar fechas, tipo de vacuna y producto antiparasitario) Influenza D
Fecha: _______________ Tétanos D
Fecha: _______________ Rimoneumonitis D
Fecha:
Desparasitación D Fecha y producto:______________________________________________________ Alimentación Reconocimient o general
Condición corporal: Sobrepeso D
Óptima D
Media D
Delgado D ___________________________
Temperatura: ___________________________________________________________________________ Ojos: Normales D
Anormales D___________________________________________________________
Aparato digestivo:_______________________________________________________________________ Boca y dientes: Normales D
Anormales D___________________________________________________
Presencia de hernias: No D
SíD_______________________ Evidencia de cirugía abdominal: NoD
SÍD
Sistema cardiovascular:___________________________________________________________________ Pulso: en reposo: _______ lat/min. ________________________ En ejercicio: _______ lat/min ______________
A la auscultación cardiaca, ¿presenta alguna alteración?____________________________________________ No D
Sí D ¿cuál? ______________________________________________________________________
Sistema respiratorio:______________________________________________________________________ Tos: No D
SíD____________________________________ Disnea: No D
SíD __________________
Respiración: en reposo: _______ resp/min. __________________ En ejercicio: ______ resp/min _____________ A la auscultación pulmonar, ¿presenta alguna alteración? ___________________________________________ No D
Sí D ¿cuál? ______________________________________________________________________
Sistema nervioso: Normal D
Anormal D
Sistema urogenital/aparato reproductor: Si es macho: Entero
¿Testículos normales? SíD NoD
Castrado Si es hembra: ¿Está preñada? No □
Sí □ Fecha estimada del parto
¿Tiene historial de abortos o incidencias en gestaciones anteriores? Sistema musculoesquelético: Extremidades (Indicar si son normales o si existe algún tipo de lesión y la patología de que se trate) A.I.: A.D.: P.I.: P.D.: ¿Hay evidencia de cojera? No □
Sí □ Grado de cojera (0-5)
¿Extremidades aíectada/s? Indicar a qué se atribuye y trascendencia: ¿Hay evidencias de neurectomía? No □
Sí
¿Presencia de ceños en los cascos? No □ ¿Deformaciones de la palma del casco? No □
Sí Sí □ Describir
¿Se adjunta algún tipo de documentación con este informe de inspección? (Carta genealógica, TSE...) Sí □ No Detallar documentación que se adjunta:
Yo. veterinario coleaiado en con el número una vez examinado el animal, cumpliendo el siguiente Informe Pericial, a mi leal saber y entender, y con arreglo a lo dispuesto en el artículo 335.2 de la Lev 1/2000 de Enjuiciamiento Civil, ciue exDido el día de de 20 Teléfono Día de la visita: Hora del examen Teléfono Mis señas Firma v sello
Manejo
Manejo y comport amiento Manejo y bienestar animal Manejo de los potros (<6 meses) Identificación Destete de los potros Métodos de contención o inmovilización física Inmovilización farmacológi ca Derribo y manejo del animal en decúbito Castración
Manejo y b ienestar animal
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El caballo es un animal inteligente, se da cuenta rá pidamente a quien tiene delante, cómo reacciona, si tiene miedo, si está nervioso, si tiene seguridad, si es un niño o incluso una persona mayor y, por lo tanto, va a actuar en consecuencia. Esto puede ser muy útil para desempeñar nuestro trabajo como veterinarios. En el ejercicio de nuestra profesión nos vamos a encontrar todo tipo de caballos, desde muy nervio sos, tranquilos, miedosos, potros y caballos mayo res, pero con todos ellos debemos extremar las me didas de seguridad puesto que hasta el caballo más tranquilo puede reaccionar de una manera brusca ante una situación inesperada, ya que en la natura leza y en la vida salvaje su vida depende de ello. A pesar de que su tamaño y fuerza puedan resultar en ocasiones impresionantes, los caballos suelen ser fáciles de controlar y su gran tamaño ofrece ciertas ventajas. Todo caballo que esté en una cuadra o en el campo se siente seguro, es su territorio y por lo tanto debemos actuar de una manera determinada. Cuando entramos en su territorio y el caballo se encuentra tumbado, lo primero que debe hacer un animal sano es levantarse en el momento que nota nuestra presencia; si no es así, excepto alguna rara circunstancia (exceso de confianza, cansancio físico, potros durmiendo, etc.) debemos suponer que no se encuentra bien y que presenta algún tipo de dolor o causa que le impide levantarse. Una vez tenemos al animal en la estación (de pie), nos va a observar y rápidamente se pondrá en su
Potro descansando. Se debería levantar en el momento que escuche movimiento.
lugar cuando nos estudie, adoptará una posición de terminada de superioridad, tranquilidad, nerviosismo, incomodidad, etc. En primer lugar debemos obser var la posición de las orejas. Estas son básicamente, aparte de la posición postural del animal, las que nos van a indicar si somos de su agrado o si, por el con trario, no se fía mucho de nosotros. Nuestra posición debe ser clara, sin miedo, con respeto y hemos de acercarnos suavemente, ge neralmente por su lado izquierdo, hablándole, per mitiendo que nos vea en todo momento, y mante niendo el contacto con él, acariciándole con la mano
Caballos en libertad. En esta situación los caballos pasan gran parte del día pastando, interaccionando con los compañeros.
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Aproximación por el lado izquierdo del caballo. Nudo de seguridad para poder soltarlo rápidamente si el caballo pega un tirón.
Cabezada de cuadra.
Caballo preparado para trabajar a la cuerda.
Cabezada de cuerda trenzada.
por la cabeza, dejándole que nos huela para que el caballo empiece a coger confianza con nosotros y no tenga miedo. Todo esto se realiza con el mayor sigilo y cuidado de no realizar cualquier movimiento brusco que lo puede asustar. Para la conducción del caballo, debemos ponerle correctamente la cabezada, sin que esté demasiado
suelta ni demasiado apretada. Nos posicionaremos en su lado izquierdo a la altura del encuentro suje tando el ramal con nuestra mano derecha, aunque idealmente se debería acostumbrar al animal a ser llevado por ambos lados para evitar la unilateralidad, para que en un futuro pueda reaccionar bien ante cualquier situación.
Conducción del caballo, siempre en un lado y por delante de él.
Cuadra amplia y limpia con una abundante cama de paja que asegura el confort del caballo.
Cuando estamos manejando un caballo es im prescindible anticiparnos ante cualquier imprevisto, para llevar el control de la situación y demostrarle al animal quién es el jerárquicamente superior. Para ello nos debemos colocar siempre un paso por delante de él. Si el animal se niega a andar, otra persona se pone en la parte posterior del caballo (siempre man teniendo las medidas de seguridad) y simplemente haciendo gestos con las manos será suficiente para que el caballo comience la marcha. Es esencial la construcción de unas buenas cua dras, con unas dimensiones de al menos de 2,5 x 2, 5 m para que el animal se pueda sentir cómodo -en caso contrario, el caballo podría desarrollar lesiones por incapacidad de movimiento-ios techos deben ser lo bastante altos como para que el caballo pueda ele varse con su tercio posterior y no tocar con la cabeza. Entre las cuadras debe haber ventanas, para que los caballos puedan verse y olerse y de esta manera pue dan sentirse mucho más seguros, además de esta forma la ventilación de las instalaciones mejorará.
Manejo de los potros (<6 meses) Los potros jóvenes reaccionan de una manera similiar a un caballo adulto, salvando las distancias siempre, tratan de huir y de cocear y por eso hay que saber inmovilizarlos muy bien para evitar que nos ha gan daño. Para sujetar a un potro suele ser necesario que alguien nos ayude a sujetar a la yegua y que otra persona inmovilice al potro, pasandole una brazo por el cuello y cogiéndole firmemente de la cola en posi ción vertical para aumentar el control del mismo. La mayoria de los potros suelen quedarse quietos con este sistema, pero aun así, sigue habiendo potros que se mueven y con éstos lo mejor es cogerles de una oreja, de la cola en la misma posicion vertical y con una pierna presionándole levemente en el ¡jar del mismo lado para mantener mejor el control.
Inmovilización de un potro muy nervioso. Para conseguir que se esté quieto lo empujamos contra la pared.
Inmovilización de un potro tranquilo.
Antes de coger un potro debemos tener sujeta a la madre.
Identificación Proviene de la necesidad de identificar individual mente un individuo frente a los demás. Durante años se han utilizado métodos diversos como la forma de los espejuelos, tatuaje del belfo y reseña (capa, raza, edad dentaria, y particularidades de la capa como espigas, remolinos, calzados, etc.). Todos estos métodos tienen un gran margen de error ya que existen un gran número de caballos con una reseña similar. A partir de los años 90 comenzó la implantación sistemática de microchips, en principio a las razas puras para su inscripción en los diferentes libros de orígenes y posteriormente a todos los caballos, in cluidos los cruzados de manera obligatoria.
Pasaporte equino, microchip y lector.
Con la implantación del microchip, que por conve nio se realiza en el lado izquierdo en la parte superior sobre el funículo nucal, en el momento que se quiere identificar un animal tan solo hay que pasar superficial mente un lector de microchip sobre esta zona para realizar una lectura del código numérico del mismo. La posibilidad de extracción de este microchip im plantado en un animal vivo es remota ya que la ciru gía necesaria para ello provocaría unas cicatrices en el animal muy visibles desde el exterior. Existe una base de datos española y una europea para registrar los datos identificativos de los propieta rios y de los caballos identificados. Actualmente la identificación mediante microchip junto con la reseña son los métodos más utilizados en todo el mundo.
Destete de los potros
Conviene no interrumpir el momento de toma de leche para no provocar en el potro ningún estrés excesivo.
Adopción por parte de la yegua de otro potro huérfano
El momento del destete es muy importante en la vida posterior del potro, puesto que puede provocar tras tornos en su comportamiento. En este proceso de bemos evitar, en la medida de lo posible, un estrés excesivo en el potro. En muchas ocasiones es inevi table y por ello trataremos de realizarlo de la forma más natural posible. Las yeguas que viven en libertad destetan a sus potros cuando se aproxima el final de la siguiente gestación, rechazándole cada vez que va a mamar dándole una ligera coz. De esta forma se realiza el cambio progresivo para alimentarse únicamente de pasto. Cuando queremos destetar al potro que vive en una cuadra o corraleta, la mejor manera es ir acos tumbrándolo a estar alejado de su madre, aumentar el tiempo paulatinamente y hacerlo así de manera progresiva hasta que finalmente se acostumbre y se separen. Se puede comenzar a separar al potro en las horas de la comida, siempre y cuando se man tenga el contacto visual con la madre, así el potro estará relativamente tranquilo y la madre también puesto que estará comiendo. Otra manera de hacer el cambio es hacer trabajar a la yegua, o darse un paseo con ella y así poco a poco el potro se acos tumbrará a estar solo. Cuando está sin su madre, este será un buen momento para que comience a coger confianza con las personas.
Métodos de contención o inmovilización física A ningún veterinario, propietario, personal auxiliar que trabaje con équidos, o incluso a cualquier per sona que le gusten los caballos, les gusta utilizar los métodos de contención, pero muchas veces y sobre todo cuando el animal presenta dolor, es inevitable su utilización. Con dichos métodos, bien por inca pacidad física del caballo o bien por el dolor que les produce, el animal se queda quieto y nos permite su exploración.
Las principales maniobras de contención son: • Levantar una extremidad anterior: de esta manera, el caballo tiene dificultad para cocear o incluso moverse, ya que se le está falseando uno de sus apoyos. No obstante, este método de sujeción no implica que el animal no pueda mover alguna ex tremidad ligeramente y pueda pisar o dar un golpe. • Un pellizco en la piel del cuello y retorcerla suele ser bastante eficaz como método de contención leve, pero fundamentalmente porque no es muy cono cido y el animal se queda bastante sorprendido. • Coger la base de la oreja y retorcerla.
Levantar una de las extremidades anteriores limita el movimiento del caballo.
Al retorcer la oreja el animal se queda quieto.
Pellizco en las tablas del cuello.
Sistema de trabones para inten.'enciones quirúrgicas mínimas.
Turcedor.
Trabones: son unas abrazaderas con unas pro tecciones para evitar el quemado de la zona por abrasión en caso de coz. Se ponen en las extre midades posteriores con un sistema de cuerdas para evitar que el animal pueda cocear, tanto al veterinario en cualquier intervención necesaria, o incluso al semental en caso de monta. Acial o torcedor: es uno de los métodos utilizados con más frecuencia. Se compone de una cuerda sujeta a un palo y su función consiste en retorcer el belfo superior o inferior del animal modificando la presión en función del dolor que queramos oca sionarle. Algunas de las investigaciones acerca de este sistema desvelan que la presión ejercida por el torcedor produce la liberación de endorfinas y estas a su vez una atenuación del dolor y relaja ción consecuente. Potro de contención: hay situaciones en las que los caballos necesitan estar mucho más quietos, para realizar determinadas exploraciones o ciru gías menores, y sobre todo por la seguridad del examinador. Para ello empleamos estos cajones donde tienen poco margen de maniobra, y esta mos a salvo de sus coces.
Con un sistema de torcedor y tapando la visión se consigue que el animal esté bastante quieto.
Sistema de trabado para realizar una cubrición sin riesgo de coz para el semental.
Potro de contención, tanto para manipulación de animales excesivamente nerviosos, como para intervenciones quirúrgicas y palpaciones rectales en yeguadas.
Inmovilización farmacológica La clínica equina, tanto ambulante como hospitalaria, requiere en muchas ocasiones de una inmovilización farmacológica del animal para trabajar sin riesgo y con mayor eficacia. Afortunadamente, la mayoría de los caballos que son sedados o anestesiados en la clínica de campo están sanos y por lo tanto suelen responder correctamente a los efectos de las anestesias.
Agentes sedativos
Tranquilizantes Acepromazina: es el tranquilizante más utilizado que tiene una acción de media sedación, provocando una ligera ataxia. Tiene propiedades antieméticas y antihistamínicas. La vía de administración es intrave nosa, intramuscular o incluso vía oral. El caballo está bien sedado pero responde a estí mulos externos. Es la elección idónea para producir un prolapso del pene.
Algunos de los productos anestésicos más frecuentes.
Los principales agentes son la xilacina, la detomidina y la romifidina, siendo este último el que produce una sedación más ligera.
a-2 agonistas Producen una sedación y su efecto máximo se al canza al cabo de unos pocos minutos tras su admi nistración por vía intravenosa. El caballo adopta una posicion en la estación, con la cabeza abajo y apa rentemente ajeno a cualquier estímulo externo. Todos ellos producen ataxia en función de la dosis administrada, y se usan en función del procedimiento veterinario a realizar, es decir, realizar una radiogra fía, endoscopia, una cirugía menor o incluso la pre paración del caballo para una anestesia general en decúbito.
Benzodiacepinas En este grupo incluye el diazepam, midazolam y el zolazepam. No se emplean para producir una se dación en los caballos adultos pero sí que son em pleados para su uso en potros o como inductores de combinaciones anestésicas.
Opioides Principalmente poseen efectos analgésicos y su em pleo se centra en combinaciones con otros agentes sedativos.
Producto
Dosis
Indicaciones
Acepromacina
0,04-0,08 mg/kg
Xilacina
0,3-1 mg/kg
Detomidina
0,01 -0,04 mg/kg
Romifidina
0,04-0,12 mg/kg
Prolapso de pene Tranquilización leve Altas dosis pueden producir ataxia Mejor sedación que analgesia Aprox. 30 min de duración Altas dosis pueden producir ataxia 60-90 min de duración Menor ataxia 60-90 min de duración
Agen t es am ames estésñ tésñco cos s
Sedación profunda de un caballo para una cirugía menor en la estación.
Ningún anestésico general inyectable reúne todas las propiedades idóneas empleándolo solo, y la mayoría de los procedimientos se hacen sin anestesia gene ral. Por esta razón se emplean combinaciones anes tésicas entre estos grupos para lograr una correcta sedación, analgesia y relajación muscular. Existen va rias combinaciones posibles y efectivas, pero las más ultilizadas son: 1. Acepromacina 0,03-0,04 mg/kg + detomidina 0,01-0,02 mg/kg. 2. Acepromacina 0,03-0,04 mg/kg + romifidina 0,05-0,1 mg/kg. 3. Detom Detomidina idina 0,01-0,02 0,01- 0,02 mg/kg + butorphanol 0,02 mg/kg. 4. Romifidina 0,05-0,1 mg/kg + butorphanol 0,01 -0,05 mg/kg. 5. Xilacina 0,5 mg/kg + butorphanol 0,01 -0,05 mg/kg.
Prolapso de pene, evidenciando la máxima relajación.
Equipo hospitalario de anestesia inhalatoria.
Equipo de anestesia inhalatoria.
Derribo Derribo y manejo manejo del animal en d ecúbito Derribar a un caballo es un procedimiento delicado, que únicamente se debe considerar en los casos ex tremos, ya que un mal derribo puede suponer fractu ras, luxaciones o diversos traumatismos. Se deben tener unas nociones básicas, tanto de premedicación, sedación, inducción, como de ma nejo del caballo y sus reacciones; y poseer un lugar con unas condiciones adecuadas para minimizar los problemas que puedan surgir. Si vamos a realizar un derribo controlado en una cuadra normal, hay que tener siempre un punto de anclaje para que el animal no lo tengamos descon trolado; si el derribo va a ser en un hospital se em pleara la “sala “sala de derribo" derri bo" perfectamente perf ectamente acolchada. Para el derribo de un caballo tenemos que com binar drogas anestésicas para conseguir el efecto que queremos, que no es otro que el animal caiga al suelo pero con una relajación muscular y una anal gesia suficiente y que su efecto se prolongue en el tiempo sin complicaciones.
Existen Existen varias varias combinaciones a elegir por el profesio pr ofesio nal veterinario o anestesista: 1. Xilacina (1 (1mg/k mg/kg) g) o detomi d etomidina dina (0,01 -0,02 -0,0 2 mg/kg) m g/kg) o romifidina romifidi na (0,1 (0,1 mg/kg) m g/kg) + ketamina ket amina (2 mg/kg). Esta es la combinación más frecuente en la clínica equina, se emplea para realizar intervenciones menores. 2. “Triple drip": drip": a-2 a -2 agonista (xilacina (xilacina o detomidina) detomidina) + guaifenesin + ketamina. Esta es la combinación más frecuente en cirugías mayores sin que se emplee la anestesia inhalatoria. Una vez que tengamos al animal en decúbito, ya bien sea en el campo o en un hospital, se puede mantener esa anestesia con el isoflurano, princi palmente en cirugías mayores o que se prolongen en el tiempo.
El manejo de un animal en decúbito en condiciones hospitalarias ofrece más seguridad para el animal y para el veterinario. veterinario.
Castración La castración es una de las técnicas quirúrgicas más frecuentes en la clínica equina. La mayoría de los ca ballos machos se castran preferiblemente antes de su madurez sexual, que comienza a los 16 meses aproximadamente. La mayoría de los potros enteros muestran un comportamiento natural agresivo con mordiscos, intento de montar yeguas, nerviosismo, manoteos y la consiguiente peligrosidad que esto conlleva si se está montando a caballo en grupo. Es por esta razón por la que aquellos machos enteros no destinados a la reproducción se castran. Se suele castrar en la estación del año que haya menos moscas para prevenir cualquier complicación no deseada, pero realmente si se hace correctamente, en un lugar limpio y las condiciones posoperatorias son buenas buenas,, se puede realizar en cualquier estación estaci ón del año. El examen veterinario previo es esencial para comprobar que ambos testículos se encuentran en la bolsa escrotal, puesto que puede ocurrir que solo
tenga un testículo -criptorquidia -criptor quidia-- y sea necesaria necesaria una una intervención quirúrgica diferente. Es una técnica que se puede realizar bajo una se dación general en la estación o bajo una anestesia general en decúbito, según la preferencia del profe sional veterinario que la realice. La castración en la estación (la más frecuente) conlleva una sedación profunda del animal, ayudada de una anestesia local en el escroto. Se realiza la exteriorización del testículo y, con la ayuda de un emasculador, cortaremos y sellaremos los conductos espermáticos y el sistema vascular. Con esta técnica es más difícil mantener una asepsia y hay más probabilidades de que halla complicaciones posoperatorias, como hemorragias o incluso eventración. Mediante la técnica de la castración en decú bito, es posible una disección más precisa de los tejidos y esto nos ayudará a controlar la hemorragia posoperatoria.
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Proceso de castración en la estación estación
Limpieza y desinfección del escroto.
Infiltración de anestesia local en el escroto.
Exteriorización del testículo.
Con la ayuda del emasculador se corta y se sella.
PosibDes comp li caci on es posoperatorias
inflamación l_a inflamación del escroto y del prepucio puede lle gar a ser normal en función de la edad del caballo y del tratamiento antiinflamatorio administrado. Esta inflamación se reducirá con el ejercicio y con duchas de agua fría en la zona.
Infección Una infección en la bolsa escroíal supone una inflama ción de la zona y probablemente esa herida se “cierre en falso”, lo cual evita su drenaje y limpieza. En estos casos se debe proceder a un tratamiento antibiótico y antiinflatorio y al buen drenaje de esa infección para evitar una complicación como el "cordón cirroso”.
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Castración mediante anestesia inhalatoria debido a una neoplasia en el testículo derecho.
Infección posoperatoria por cierre de la herida en falso.
El goteo frecuente de sangre de la piel del escroto y de los vasos sanguíneos es relativamente normal, a no ser que sea constante y abundante, en cuyo caso será necesaria la sutura de los vasos.
Eventración Esta es posiblemente la complicación más temida de todo veterinario en el momento de la castración en la estación. Supone la salida de contenido abdominal al exterior a través de la incisión del escroto, que hay que corregir inmediatamente mediante una anestesia general.
Neoplasia en testículo derecho.
El lavado del escroto con agua fría ayuda a rebajar la inflamación como consecuencia de la castración.
Capa, piel y sis tema l infático
Exploración clínica de la capa, la piel y el sistema linfático Introducción Historia clínica Valoración de la capa Toma de muestras Ficha dermatológic a Exploración del sistema linfático
Introducción Sección de las capas de piel y la estructura del pelo en los mamíferos
Epidermis
Glándula sebácea Dermis Nervio Vaso linfático Tejido subcutáneo
Tejido graso Vena Arteria
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La piel es el órgano más amplio del organismo ani mal. Es una capa de 1 a 5 mm de espesor depen diendo de la región corporal, que se continúa con las mucosas en los orificios naturales. Está formada por una capa externa delgada, la epidermis, seguida de la dermis, donde se encuentra la red vascular sanguí nea y linfática, las terminaciones nerviosas y las glán dulas. La última capa es la hipodermis formada por grasa subcutánea que actúa como una almohadilla. En el caballo, la piel presenta unos anejos: el pelo y los cascos. Las glándulas sebáceas y sudoríparas son más grandes y numerosas que en otros anima les y tienen una importante función én la termorregulación. Las cernejas, unas pequeñas callosidades que se encuentran entre los mechones de pelo del menudillo (superficie flexora), son un vestigio del segundo y cuarto dedo de los équidos. El espe juelo es una masa de tejido córneo localizado en la superficie medial del radio. El casco es el recubri miento córneo distal de la tercera falange. La capa está formada por el pelo, éste se re emplaza influenciado por la temperatura ambiente
y el fotoperiodo. En ambientes cálidos la capa está compuesta por pelo medular grueso mientras que en ambientes fríos, por fibras más largas y finas, con menor porción medular, proporcionándoles un buen aislante del frió. Las enfermedades de la piel son muy comunes en los équidos. En muchas ocasiones constituyen un reto diagnóstico importante para el clínico y ha bitualmente quedan sin diagnosticar. Aunque es el órgano de mejor acceso para el veterinario, pues lo tiene a la vista, en muchas ocasiones nos encontra mos con procesos crónicos y de difícil diagnóstico. A menudo, el propietario no da la suficiente impor tancia a las enfermedades de la piel y sólo llama al veterinario cuando el problema se hace crónico o bien se extiende por todo el cuerpo afectando cla ramente al aspecto estético del caballo. La mayoría de las enfermedades de la piel se pue den dividir en infecciosas, es decir, originadas por bac terias, virus, hongos o parásitos y en no infecciosas, entre las que destacan los procesos alérgicos que afectan a la piel y, en menor medida, las neoplasias.
Historia clínica
La variedad de capas y colores de los caballos es muy amplia, algunas como la de este Apaloosa aparecían dibujadas en las cuevas rupestres de Europa hace 20.000 años.
Como en todo proceso patológico, la elaboración de una historia clínica completa ayuda en gran medida al diagnóstico. Se pueden hacer las preguntas clásicas que se vieron en el primer capítulo, aunque lo mejor es tener una ficha clínica donde se anoten todos los datos interesantes para el diagnóstico. La historia clí nica debe incluir los siguientes datos: raza, edad, sexo, aptitud, capa, enfermedades previas y evolución de las mismas. La época del año es importante, pues habi tualmente con el buen tiempo se presentan reacciones alérgicas a insectos, sobre todo Culicoides. También hay que preguntar por la administración de medica mentos, ya que pueden explicar la aparición de una ur ticaria consecuencia de una alergia al fármaco; por las pautas de desparasitación y los productos utilizados. Tras realizar la historia clínica continuaremos con un examen físico general, teniendo en cuenta todos los órganos. Por ejemplo, una enfermedad hepática puede originar una fotosensibilización de las partes blancas del caballo. En el examen dermatológico nos fijaremos en el aspecto de las lesiones, examinando la base de los mechones de pelo de la crin y de la cola, donde se pueden acantonar los parásitos ex ternos. Se debe palpar la superficie de la piel para
descubrir lesiones que no se ven a simple vista o para valorar la sensibilidad, elasticidad, temperatura, etc. Así se puede detectar si el pelo es untuoso, si se depila fácilmente o qué textura tiene. No hay que olvidar levantar las patas del caballo para observar la ranilla, las bandas coronarias y el casco. La presencia de espejuelo, cernejas y el pelo rayado de la pata de este caballo son vestigios de los dedos de los antepasados de los équidos.
La piel sana se caracteriza por una capa de pelo brillante, lustrosa, corta en verano como la de este caballo.
La capa al final del invierno adquiere un aspecto basto y poco brillante, Posteriormente se desprende y da lugar al pelo del verano.
En el examen dermatológico se debe separar los mechones de pelo de la crin y de la cola para buscar la presencia de parásitos o de descamación.
Un pelo áspero, basto, mate, con la piel engrosada es propio de procesos crónicos de la piel.
Hirsutismo o hipertricosis. Pelo largo, rizado, en la extremidad anterior de un caballo con síndrome de Cushing.
Zona alopécica en el tarso de un potro, en este caso debido a una herida.
Valoración de la capa La capa está constituida por ei pelo y presenta una gran variedad de colores atendiendo a la enorme di versidad de razas que existen. Un pelo sano suele ser corto, suave y con brillo, mientras que un pelo enfermo es más áspero o erizado y se enreda con facilidad. Los caballos suelen pasar por un proceso de muda exhibiendo en invierno un pelo más basto y con pelusa. A medida que aumenta la temperatura ambiente, este pelo se sustituye por uno más corto. Las modificaciones de la capa son la hipertricosis o hirsutismo, que es normal en algunas razas de ponis, y característico del síndrome de Cushing, con pelo más abundante en la gotera de la yugular o en extremidades. El caso contrario es la hipotricosis que puede llegar hasta un caso de alopecia local o bien generalizada. Estas alopecias pueden ser reversibles o irreversibles y se deben a causas tóxicas, infec ciosas u hormonales. Las alopecias locales suelen deberse a tiñas, sarnas, estados carenciales o bien son de origen dérmico. Los cambios de color tienen poca importancia en el caballo, por lo general a me dida que los animales avanzan en edad adquirieren un color gris y canoso.
Atriquia o alopecia. Extensas zonas alopécicas que depilan el rabo y todo el periné en una burra. Las causas pueden ser tóxicas, hormonales o infecciosas.
Leucotriquia. Mechón de pelo blanco, sin pigmentar.
Hiperemia
Hiperemia de la piel debido a dermatitis en la cuartilla de un caballo y en la cara de un caballo con atopia.
Cambios de coloración de la piel y de las mucosas Para apreciar el color de las mucosas se requiere una buena iluminación. • Color blanquecino: las mucosas están pálidas a consecuencia de la falta de riego sanguíneo. Ca racterístico de un estado de anemia no hemolítica (hemorrágica, aplásica). • Hipermelanosis: coloración oscura de la piel de origen hormonal o inflamatorio. • Hipom elanosis (leucodermia): despigmentación cutánea que aparece en ciertas enfermedades víricas. • Enrojecimiento de la piel y de las mucosas • Hiperemia: enrojecimiento de la piel que se ocasiona como consecuencia de dermatitis, insolaciones o septicemia. Debido a los trastornos hemorrágicos se producen petequias, equimosis y manchas multiformes propias de enfermedades infeccio sas. El hematoma es la acumulación de sangre en tejido subcutáneo como consecuencia de un traumatismo. • Cian osis : coloración azulada debido a un proceso de insuficiencia cardiaca o de asfixia. Aparece frecuentemente en cólicos graves de tipo estrangulante. Coloración negruzca en el caso de gangrena cutánea. • Ictericia : coloración amarillenta por incremento de la bilirrubina en sangre. Está relacionado prin cipalmente con anemias hemolíticas o afeccio nes hepáticas. No obstante, hasta el 15% de los
caballos presentan coloración amarillenta normal de la conjuntiva ocular sin presentar ninguna enfermedad.
Humedad de la piel: glándulas sudoríparas y sebáceas En la piel encontramos glándulas sudoríparas y se báceas, que son las encargadas de mantener la hu medad y la secreción de grasa para lubrificar la piel. Las glándulas sudoríparas se localizan por todo el cuerpo, su secreción se encarga de mantener la homeostasis del medio interno y la temperatura corporal. Los caballos transpiran abundantemente para comba tir el estrés térmico y regular la temperatura corporal. Se pueden diferenciar dos tipos, las glándulas más abundantes en los équidos son las denominadas ecrinas, que producen una secreción acuosa rica en sa les minerales. Las glándulas apocrinas están situadas junto al folículo piloso y se encargan de la secreción odorífera produciendo una sudoración más densa. Las alteraciones de estas glándulas son: • Hipe rhidrosis: aumento de la sudoración, fre cuente en caballos después de un ejercicio exte nuante, con temperaturas y humedad elevadas. • Anhidrosis: incapacidad de transpirar ante estí mulos apropiados. Aparece en caballos que viven en países tropicales con humedad y temperaturas elevadas. La piel se seca, pierde elasticidad y se convierte en escamosa. • Hematidrosis o sudoración hemorrágica: se debe a pequeñas hemorragias a nivel del folículo
Elasticidad de la piel
piloso. Aparece en casos de anemia infecciosa equina, púrpura hemorrágica o intoxicaciones por raticidas. • Las glándulas sebáceas se encargan de lubrificar y dar brillo al pelo. Sus alteraciones son menos frecuentes. Se clasifican en: ° Seborrea: excesiva producción de grasa. En la seborrea húmeda la capa adquiere un as pecto untuoso, brillante y de olor rancio. La se borrea seca produce escamas y el pelo tiene un aspecto reseco. Hay que diferenciar estas escamas de las producidas por una dermatitis o dermatosis. ° Astea tosis: es la situación contraria, la pro ducción grasa está disminuida. El pelo aparece basto, sin brillo y quebradizo.
Elasticidad de lia piel Se utiliza para valorar el estado de deshidratación. Se realiza un pliegue cutáneo en la zona de las tablas del cuello y se obsen/a el tiempo que tarda la piel en recuperar su estado normal. También aparece au mentado en caso de dermatosis ya que se produce un endurecimiento de la piel. Conforme los animales tienen más edad se pierde la elasticidad de la piel y por tanto aumenta este tiempo de recuperación.
Temperatura de la piel Es un reflejo de la temperatura interna pero no es exactamente la misma. Se puede tomar aproxi mando el dorso de la mano a la zona de la cara. Las axilas resultan más cálidas. Al tocar las orejas, tanto
Hematiclrosis. Se aprecian pequeñas hemorragias que proceden del folículo piloso.
la base como la punta tienen que estar a la misma temperatura, excepto cuando hay fiebre o la tem peratura externa es muy fría y con viento fuerte. En caso de hipotermia, se aprecian las extremidades frías lo cual indica colapso circulatorio.
Ed e m a
Pr u r i t o Manifestaciones de prurito. El picor es tan intenso que lleva al poni a rascarse con la extremidad posterior o, en el caso de la yegua, a volverse y morderse dejando el pelo húmedo y revuelto.
Edema de la piel como consecuencia de una insuficiencia insuficiencia cardiaca. Debido a lo prolongado de la lesión y a la pérdida de elasticidad de la piel piel se ha producido pro ducido una fisura sangrante.
El edema de la piel deja una huella característica o fóvea al presionar con el dedo.
Aumento del volumen de la piel Se produce en dos situaciones, cuando hay un in cremento de líquido (edema) o de gas (enfisema) en la piel. En el edema, el líquido queda retenido en los espacios intercelulares de la epidermis y del tejido subcutáneo. Al presionar con el dedo, queda mar cada la huella o fóvea durante varios segundos. Los edemas se presentan en las partes declives, declives, principal mente en la punta del pecho y el abdomen ventral. Se suelen deber a insuficiencias cardiacas congestivas o bien a alteraciones hepáticas que desencadenan la hipoalbuminemia. El enfisema es el aumento del volumen de la piel por la presencia de aire en el tejido conjuntivo. Al pre sionar con el dedo tiene una consistencia crepitante. El enfisema se produce como consecuencia del cre cimiento de bacterias anaerobias (p. ej. Clos tr ídi um )
o bien debido a traumatismos que ponen en comuni cación el medio externo e interno, por fracturas de la tráquea o costillas, etc.
Prurito o picor Es una sensación desagradable que provoca el de seo de rascarse, morderse o rozarse con objetos. Es el síntoma más común en dermatología. Lo produ cen las terminaciones nerviosas de la piel. Su origen puede ser: • Sintom Sin tomátic ático: o: debido a la liberación liberación de histam histamina ina en dermatitis alérgicas o por la acción mecá nica de parásitos externos como C h o r i o p t e s o Sarcoptes. •
Central: Centr al: prurito generalizado generalizado que no se se debe a una enfermedad de la piel. Se puede considerar como una neurosis cutánea.
Lesiones primarias
Verruga en la entrada de los ollares de un potro. Esta lesión suele ser de origen vírico.
Lesión primaria de la piel. Habones en la parte ventral del abdomen consecuencia de picaduras de insectos.
Detalle de las lesiones de una foliculitis bacteriana. Se forma un punto central que en ocasiones es hemorrágico.
Salida de pus y exudados de un absceso que se ha roto situado en la cara interna del muslo.
Lesiones elementales de la piel En las enfermedades cutáneas se pueden observar dos tipos de lesiones: las primarias, que se desarrollan de forma espontánea sobre la piel intacta, o bien se cundarias, que son la evolución de las anteriores como consecuencia de las complicaciones del rascado.
• Mácula Mác ula:: lesión lesión circunscrita circuns crita inferior a un centímetro de diámetro que se caracteriza por un cambio de coloración. Si el tamaño es superior a un centímetro se llaman manchas. Pueden tener un origen vas cular, produciendo eritema, cianosis y angiomas, o pigmentario por depósito de melanina en el tejido dérmico como es el caso de los melanomas. • Pápula/p Pápu la/plac laca: a: lesión lesión inferior inferior a un centímetro de diá metro pero que hace relieve sobre la superficie de la piel y se resuelve sin dejar cicatriz. Suele ser de etiología viral. Cuando confluyen varias pápulas se forma una placa. • Nodu Nodulo: lo: lesión circunscrita superior a un centímetro de diámetro que hace relieve sobre la piel. Se en cuentra implicada la dermis y la hipodermis. El con tenido es variable y puede ser de naturaleza inflama toria, neoplásica o depósitos de fibrina. • Quiste: lesión lesión circunscrita que hace hace relie relieve ve sobre la piel. Está formada por una cavidad que contiene el líquido o el sólido producido por las células que for man la pared. • Verruga: Verr uga: masa carnosa de la piel que está unida a la la misma por una base fina (pedunculada) o bien más ancha (sésil). Suelen ser de origen vírico. • Tumor Tu mor:: lesión circunscri circ unscrita ta de la piel, piel, no inflamatoria, inflamatoria, de contenido sólido, forma, color y tamaño variable. Como por ejemplo ejemplo melanom melanomas as o carcinomas. ® Habón o roncha: elevac elevación ión circunscrita circunscrita de de la piel piel de de consistencia elástica que aparece repentinamente y desaparece al cabo de unas horas. Esta es la lesión que se produce como consecuencia de la picadura de insectos o en las reacciones intradérmicas en las pruebas alérgicas. • Vesícula, ampolla, bulla y flictena: flictena : la vesíc vesícula ula es una lesión prominente y circunscrita de menos de un centímetro de diámetro, llena de líquido claro. Tiene localización intradérmica. Las ampollas o bullas son vesículas de mayor tamaño. Las flictenas son aún mayores y se producen debido de bido a quemaduras. quemaduras. • Pústulas o amp ampollas ollas purulentas : elev elevaci ación ón cir cunscrita de la piel llena de pus. Las pústulas pue den ser superficiales como es el caso del impétigo, o bien profundas, localizadas entre la dermis y la epidermis. • Absc Ab sceso eso:: tumefacción fluctuante originada por la acumulación de pus.
Lesiones secundarias • Erosión: Eros ión: pérdida pérdid a de de tejido dérmico a nivel nivel muy superficial. • Escoriación: Escor iación: solución solución de continuidad continuidad de la epider mis y de la dermis. Se produce por el rascado o el lamido de lesiones pruriginosas o también cuando se rompen las vesículas. No suelen dejar cicatriz. • Fisura: Fisur a: hendidu hendidura ra linea lineall de la epidermis epiderm is que puede llegar a la dermis o tejido subcutáneo. Aparece en zonas sometidas a mayor movi miento y donde la piel ha perdido la elasticidad natural. • Úlcera: pérdida de continuidad de la piel piel donde puede quedar expuesta al exterior la dermis o el tejido subcutáneo. • Costras: Costr as: desecación de exudado exudados, s, sangre y res tos celulares que se quedan en la superficie de la piel. Recubren las superficies de soluciones de continuidad cutánea como erosiones, o apare cen tras la ruptura de vesículas y ampollas. • Escamas Escam as y collarete: colla rete: la descamación se pro duce por la exfoliación de la capa córnea. Esta lesión produce fragmentos laminares de la epider mis que tienden a desprenderse. Los collaretes son un tipo de escamas circulares. Estos restos de tejidos epidérmicos formaron parte de la pared de vesículas, ampollas o pústulas. • Escara: Escara : lesió lesión n de un tejido necrótico que el or ganismo tiende a eliminar. Son zonas de piel necrosada, negruzca, provenientes de regiones traumatizadas. 0 Cicatriz: tejido tejido fibroso fibroso resul resultant tante e de la repara repara ción de las lesiones que afectan a la dermis. Se produce tras la curación de heridas traumáticas, quemaduras o incisiones quirúrgicas. B Lique Liquenificació nificación: n: engrasamien engrasamiento to y endu endurecim recimiento iento de la piel piel caracterizada por una exagerada exagerada demar cación de las líneas de superficie. Suele aparecer en dermatosis pruriginosas o crónicas como la atopia. 3 Hiperq uera tosis: engrasami engrasamiento ento y endureci miento de la piel por causas mecánicas origi nando callosidades o por causas infecciosas.
Costras formadas por la desecación de los exudados de una dermatitis bacteriana. bacteriana. La capa tiene aspecto húmedo y los pelos se encuentran apelmazados apelmazados como consecuencia de los exudados de la infección.
Sarcoide equino que se extiende por el cuello del caballo. En ocasiones puede llegar a producir úlceras en la base de la oreja.
Descamación Descamación. Es una lesión que se encuentra frecuentemente y está producida, en muchas ocasiones, por la acción de parásitos externos.
Descamación ocasionada por Choríoptes.
Toma de muestras Como mínimo, se deben recoger muestras mediante raspados de piel, de pelos y hacer impresiones direc tas con celo transparente.
Raspado de la piel Es la prueba diagnóstica más común debido a que es simple de realizar, rápida y barata. Es muy útil para identificar parásitos, sobre todo los ácaros. Técnica Humedecer la piel con parafina líquida o KOH
10%. Raspar cuidadosamente la piel con una hoja de bisturí. Depositar el material obtenido mediante raspado en un portaobjetos con el mismo líquido con el que se ha humedecido la piel. Esta muestra ya se puede observar al micros copio óptico (MO), empezando con cuatro aumentos. Cuando hay una excesiva cantidad de costras, lo mejor es montar las muestras con hidróxido de potasio (KOH 10%) para permitir que el material se disgregue. Esto conseiva bien a los parásitos, pero los mata. En ocasiones es necesario realizar raspados más profundos para buscar parásitos menos comunes, como los D e m o d e x .
K)
Cepillado de la piel Se realiza con un cepillo o peine de púas densas, muy útil para la detección de ácaros y piojos. Se puede utilizar un cepillo de dientes, que es un mé todo barato y efectivo. La muestra que se obtiene se coloca sobre un portaobjetos para observarlo al MO.
Raspado de la piel para identificar parásitos. Una vez obtenida la muestra se monta sobre un portaobjetos con aceite de parafina y se observa al MO. En este caso se observan liendres de piojos agarradas al pelo.
Muestra de pelo Se utiliza para hacer tricogramas que son necesarios para observar las características de las raíces, los tallos y las puntas del pelo. Cuando hay sospecha de dermatofitosis o dermatofilosis se deben arrancar pelos de los márgenes de la lesión utilizando unas pinzas. Técnica Coger cuidadosamente el pelo con unas pinzas y tirar con fuerza para arrancarlo. Es mejor esto que arrancar el pelo con los dedos. Colocar las muestras sobre un portaobjetos con parafina líquida para observar la estructura del pelo o con KOH para ver hongos. Si se sospecha de una dermatofitosis, hay que añadir azul de metileno al KOH para teñir los ele mentos fúngicos. Observar la muestra directamente al MO.
Toma de muestras con cinta adhesiva transparent e Este método es muy útil para identificar huevos de Oxyuris equ i de la región perianal y ácaros de la
superficie del manto como Chor íop te s. En áreas alopécicas se pueden identificar bacterias superficiales como S t a p h y l o c o c c u s y levaduras como Candida y Malassezia.
Técnica En áreas con abundante pelo, como crin o cola, presionar firmemente sobre el pelo varias veces. Colocar directamente sobre un portaobjetos. En áreas sin pelo, presionar sobre la piel y frotar con el dedo para llevarnos a los microorganismos. Se pueden teñir con un colorante rápido de ci tología, omitiendo la primera solución que lleva alcohol, montarlo y observarlo directamente al microscopio. Además de estas técnicas más sencillas, en oca siones es necesario tomar muestras de lesiones que presentan líquido como abscesos o vesículas o de tumores. Para ello se realiza la técnica de aspiración con aguja fina, o bien se toma una muestra de tejido para realizar un diagnóstico histopatológico por parte de un laboratorio especializado para lo que tendre mos que realizar una biopsia cutánea.
Toma de muestras con cinta adhesiva en la región perianal para obtener muestras de Oxyuris.
Aspiración con aguja fina Una simple aspiración del fluido de una masa en la piel nos puede indicar la presencia de exudado puru lento en un absceso producido por bacterias o bien hifas o macroconidias en nodulos micóticos. También se pueden aspirar células de lesiones hiperplásicas y neoplásicas.
Técnica Los nodulos se pueden aspirar con agujas finas de 18 a 21G en jeringas de plástico de 5-10 mi. El tamaño de la aguja depende de la firmeza del tejido. Una vez introducida la aguja, se debe dirigir hacia el centro de la lesión, tirar del émbolo, re orientar la aguja, y volver a succionar. Liberar la presión negativa que ejerce el émbolo, sacando la jeringa de la aguja. Expulsar el contenido sobre un portaobjetos. Ex tender el contenido para disgregar los grupos celulares. Dejar secar al aire el aspirado y teñirlo directa mente para observarlo en un MO, o bien remitirlo a un laboratorio de análisis.
Biopsia de piel Material necesario para realizar una biopsia
Biopsia cutánea Cuando sea posible, se deben obtener biopsias de lesiones primarias tales como máculas, pápulas, tu mores, pústulas y vesículas. Las lesiones secunda rias y crónicas, como ulceraciones, liquenificaciones y excoriaciones, y en general las producidas por autolesiones no suelen dar buena información. Las le siones pequeñas deberían tener, cuando sea posible, márgenes de tejido sano. Técnica Preparar y limpiar bien el área de la biopsia. Marcar con un rotulador el área a obtener e infiltrar un anestésico local. En caballos rebeldes, o cuando las áreas son muy sensibles, se les puede poner un sedante, o bien un torcedor.
Utilizar trocares de biopsia de 6 a 8 mm de diáme tro. El trocar se coloca sobre la lesión y se aplica una presión moderada a la vez que se gira. Una vez que ha penetrado en la piel, se retira, dejando la piel unida a la grasa subcutánea. Con una pinza recogemos la muestra, cortando la unión de la muestra con la grasa subcutánea. También se pueden obtener mediante un bisturí, cortando un pequeño ojal de piel. Esto es espe cialmente útil para pústulas y vesículas. La herida se puede suturar colocando un punto, o bien una grapa. Fijar la muestra obtenida en formol al 10% y remi tirla al laboratorio.
Biopsia de piel. En primer lugar hay que anestesiar la zona y tomar la muestra con un trocar de 6-8 mm. La muestra de piel, con tejido subcutáneo, se introduce en formol 10%. La colaboración con el histopatólogo será esencial para llegar al diagnóstico en dermatología equina. La última imagen muestra una dermatitis eosinofílica leve multifocal en un caso de atopia equina.
Toma de muestras para hongos o infecciones bacterianas Cultivos de hongos Se deben de realizar cuando hay una historia de pér dida de pelo en alopecias multifocales o costras y hay más de un animal afectado. Técnica Limpiar la zona con alcohol y dejar secar al aire. Recoger pelos de las zonas periféricas de pápulas o costras. En caso de lesiones extensas, utilizar cepillos, pei nes que sean estériles. Envolver estas muestras en un sobre de papel, o recipientes herméticos al aire. Los pelos y costras se pueden llevar a un medio DTM para dermatofitos y dejar la muestra a tem peratura ambiente y en oscuridad durante 7 días. Los hongos patógenos producen una variación del color del medio de cultivo, pasando de color ámbar a color rojo. Los hongos saprofitos tarda rán 10 o más días en virar el medio. Se recomienda llevar las muestras a un laboratorio y cultivarlas en medio Saboreaud.
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Cultivos bacterianos Cuando se sospecha de infección bacteriana se pueden recoger muestras de hisopos de la superfi cie de la lesión, pero raramente nos van a indicar el causante de la enfermedad, pues es muy común el aislamiento de gérmenes saprofitos. Lo mejor es ha cer aspirados de las pústulas con una aguja de 25G y remitir el contenido dentro de un hisopo a un labo ratorio. Se pueden exprimir los exudados frescos y recogerlos con un hisopo. Si se presentan costras, se pueden tomar muestras colocando el hisopo justo debajo de la costra. En los procesos de tipo alérgico, como la atopia o hipersensibilidad a Culicoides se puede desarrollar un test de ¡ntradermorreacción para identificar el agente causal.
Tes t intradérmico Al realizar esta prueba, hay que asegurarse de que el caballo no ha sido tratado con antihistamínicos o corticoides al menos 15-30 días antes del ensayo. Técnica Depilar y limpiar un área suficientemente amplia de la espalda del caballo para realizar el test. Marcar los lugares de inyección con un rotulador, separados entre ellos 3 cm.
Inyectar intradérmicamente 0,05 mi de la suspen sión del alérgeno. Inyectar intradérmicamente un control positivo (histamína) y otro negativo (suero fisiológico). Realizar la lectura a los 20 minutos, 1 hora y, si es posible, a las 4 horas. La reacción se considera positiva si entre los 20 y 60 minutos el diámetro del habón en el punto de inoculación es de al menos 15 mm.
Sit uaciones en que empeora el pruri to
Hipersensibilidad a la picadura de insectos Trombiculidiasis____________________
Meses de verano
__________________Dermatitis atópica a pólenes __________
Meses de invierno
Patrones clíni cos de las enfermedades de la piel de los caballos
Enfermedades pruríticas Dermatosis alopécicas
Atopia a alérgenos de interior __________ Pediculosis _______________________
Dermatosis nodulares
Sarna corióptica
Cambios de pigmentación
|
Dermatosis escamosas costrosas
Dist rib ución de las lesio nes de la piel en los caballos y su causa más probabl e
Cabeza
Orejas
Cuello
Dorso
Atopia Hipersensibilidad a la picadura de insectos Trombiculidiasis Hipersensibilidad a los ácaros de la paja Intolerancia alimentaria Alopecia areata Dermatofitosis Atopia Hipersensibilidad a la picadura de insectos Trombiculidiasis Sarna psoróptica Sarcoides Hipersensibilidad a la picadura de insectos Atopia Intolerancia alimentaria Hipersensibilidad a tos ácaros de la paja Pediculosis Sama psoróptica Oncocercosis Hipersensibilidad a la picadura de insectos Pediculosis Atopia Intolerancia alimentaria Psoroptes
Vientre, ingles y periné
Extremidades
Hipersensibilidad a la picadura insectos Atopia Dermatitis por Malassezia Dermatitis por contacto Intolerancia alimentaria Melanomas Carcinoma de células escamosas Oncocercosis Hipersensibilidad a la picadura de insectos Sarna corióptica Trombiculidiasis Dermatitis por contacto Dermatofitosis Dermatofitosis
Ficha dermatológic a Anamnesis e historia clínica
Fecha
__________ Nombre del propietario
Teléfono
Dirección Sexo
Nombre del caballo Raza
Castrado o entero
Capa Aptitud _________________ Nivel de actividad_____________ Rutina diaria _______________________________________ Medio ambiente: a) interior_________________________________________
b) exterior_________________________________________ Tipo de alimentación _________________________________ Esquema de desparasitación/vacunación, producto y frecuencia
¿Motivo de consulta? ¿Cuándo comenzó el problema? ¿En qué parte del cuerpo empezó? ¿Cuál era el aspecto inicial de la lesión? _____
¿Se ha extendido o ha cambiado de aspecto? ¿El problema es continuo o intermitente? ¿Es estacional y cuándo se produce? ¿Se rasca? ______________ ¿Dónde? ¿Hay más caballos afectados? ¿Tiene contacto con otros animales domésticos, mascotas o silvestres? ¿Hay alguna persona afectada con problemas de piel? ¿Son personas en contacto con el caballo? _____________ ¿Utilizan algún tipo de control de insectos? ¿Qué productos? Tratamientos aplicados hasta el momento ______________ Resultado del tratamiento Otras enfermedades y tratamiento que haya recibido
Edad
Rodear con un círculo las lesiones que presente el caballo
1. Lesiones cutáneas Mácula Nodulo Vesícula Habón Hipotricosis Fisura Hiperpigmentación Hiperqueratosis Liquenificación
Verruga Placa Bulla Erosión Alopecia Escara Hipopigmentación Callo
Púrpura Tumor Quiste Eritema Costra Escoriación Escamas Comedón
Pápula Pústula Absceso Hlperhidrosis Úlcera Collarete Necrosis Cicatriz
Grueso Hiperextensible
Fino Incremento de laxitud
Frágil
2. Cambios cutáneos Normal Hipotónico
3. Cambios en la capa
Hipertricosis Otro color Pelo desprendido Otra
Alopecia Melanotriquia Pelo quebradizo Capa oleosa
Hipotricosis Leucotriquia Fácil depilación Capa seca 4. Forma de las lesiones Folicular Anular Otra
Agrupada
Lineal
5. Dolor cutáneo Ausente
Ligero
Moderado
Grave
6. Prurito Ausente Lesional
Ligero No lesional
Moderado
Grave
Garrapatas
Ácaros
Liendres
7. Parásitos Piojos Otros 8. Otros hallazgos Orejas __________ Cavidad oral Uniones mucocutáneas Bandas coronarias Cascos 9. Recogida de muestras Raspados ____________
Cinta adhesiva _________ Aspirados_____________ Medio DTM ___________ Biopsia_______________ Hisopos ______________ 10. Diagnóstico diferencial
Exploración del s istema li nfático El sistema linfático forma parte del sistema defen sivo de los animales y lucha frente a la invasión de microorganismos. Está formado por vasos y nodulos linfáticos. Los vasos linfáticos no se pueden explo rar a no ser que se produzca una inflamación muy marcada (linfangitis) o dilatación (linfangiectasia). Los nodulos linfáticos se pueden explorar mediante dos procedimientos: • Incruento: por inspección y palpación. Se valora el tamaño, consistencia, sensibilidad, temperatura y movilidad. En condiciones normales se despla zan con facilidad. En las inflamaciones agudas los nodulos lin fáticos son menos movibles, aumentan de tamaño y de consistencia así como de tem peratura y dolor. Si se forma un absceso son grandes, blandos, fluctuantes y, en ocasiones, su contenido puede fistulizar al exterior. Si la inflamación es crónica presentan tamaño y consistencia aumentada. En los procesos tumorales están aumentados de tamaño y son muy duros. ° Cruento: punción de los nodulos linfáticos.
Inspección y palpación
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En los caballos se pueden explorar los siguientes nodulos: • Submandibulares: recogen la linfa de la cavidad nasal, labios, mejillas, lengua, suelo de la boca y mandíbula inferior. Se sitúan debajo de la piel ha cia la parte caudal del espacio intermandibular. Tienen el tamaño de un dedo meñique. En las pa peras equinas se encuentran considerablemente aumentados. ° Retrofaríngeos: recogen la linfa de las fosas na sales, piel de los senos, faringe, laringe, base de la lengua y paladar blando y duro. Tienen forma ovalada. Se localizan en la superficie dorsolateral de la faringe, debajo de las bolsas guturales. ° Preescapulares: tienen forma alargada y se en cuentran delante de la escápula. Recogen la linfa de las extremidades anteriores. En ocasiones son difíciles de palpar. ° Precrurales: se encuentran por encima de la ro dilla, delante del músculo tensor de la fascia lata. Recogen la linfa de la musculatura abdominal y parte de la extremidad posterior.
Punción de los nodulos linfáticos Se realiza de un modo similar a lo indicado en la as piración por aguja fina. Las muestras obtenidas se utilizan para el estudio citológico y microbiológico del mismo.
Orejas y ojos
Exploración de orejas y ojos Exploración de las orejas Exploración de los ojos
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Exploración de las orejas La exploración clínica de las orejas en los équidos no presenta gran importancia desde el punto de vista de patologías propias del oído ya que las otitis en esta especie no son muy frecuentes. Sin embargo, la observación de las orejas en los caballos son unos indicadores claros del estado anímico del animal, de sus intenciones, o incluso si presentan algún dolor o enfermedad sistémica. La inspección de las orejas debe hacerse de ma nera dinámica y estática.
Inspección dinámica Se realiza provocando un ruido sin que el animal nos vea y de esta manera sabremos acerca de su capa cidad auditiva, ya que, un caballo normal va a mover una o las dos orejas hacia el foco del sonido.
Situaciones Si un caballo con una capacidad auditiva correcta está con un dolor cólico, fiebre, apatía o cualquier
otra patología sistémica, no va a reaccionar como si estuviera sano. El animal no va a mover las orejas con normalidad, ralentizando el movimiento o incluso haciendo caso omiso del sonido provocado. El movimiento de las orejas es un claro indica dor del estado anímico del animal, indicándonos si está tranquilo, inquieto, nervioso, agresivo, confiado, desconfiado, puesto que cuando el animal no se en cuentra con una situación cómoda pone las orejas totalmente hacia atrás. En este momento ya se sabe que el animal no está tranquilo y que incluso puede reaccionar de una manera violenta.
Inspección estática Nos va a permitir ver el estado del pabellón auricu lar externo e interno y poder comprobar la presen cia de una otitis, heridas, infecciones por hongos o cualquier otra patología. Debido a la configuración del oído interno, es muy difícil realizar una exploración con un otoscopio en caballos.
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La posición de las orejas reflejan el estado anímico del animal. Cuando el caballo las echa hacia atrás puede indicar el inicio de un ataque.
Inspección
La exploración de las orejas comienza con una inspección para aseguramos de su simetría, para continuar con inspección de la cara interna auricular.
Realización de la prueba del chasquido.
Alter ac iones o Otitis: en estos casos el pabellón auricular estará caliente, con una sensación dolorosa y positiva a la “Prueba del chasquido” si la cantidad de cerumen es considerable. La prueba consiste en estirar de la oreja, presionar el cartílago auricular con fuerza hasta que se toquen los dos lados y soltar la presión de golpe. Notaremos cómo se pegan entre sí las paredes del conducto auditivo y al despegarse se escuchara un “chasquido".
Infección fúngica de un pabellón auricular.
° Micosis : la infección fúngica es la más frecuente y en muchas ocasiones suele ser un problema crónico y muy molesto para los caballos puesto que la propia infección atrae a mosquitos que rodean continuamente el pabellón auricular en la temporada de primavera y verano.
® Traum atismos: debido a su posición, en la parte más alta del cuerpo, y por sus movimientos brus cos, son muy típicos los traumatismos en las orejas.
° Caída de las orejas: puede ser debido a una mayor cantidad de piel y a una mayor distancia entre los dos pabellones auriculares o bien a una parálisis del nervio facial que suele ir acompa ñada de caída del labio del lado afectado y de ptosis del párpado superior.
Sección casi por completo del cartílago auricular debido a un traumatismo.
Exploración de los ojos Introducción En los caballos los ojos adquieren una gran impor tancia desde el punto de vista de la exploración clí nica, de manera que para realizar un profundo exa men es necesario conocer perfectamente todas sus estructuras y anejos. De manera rutinaria siempre se deben examinar los ojos ya que debido a su posición (totalmente lateral) están predispuestos a cualquier tipo de traumatismo. Hay que tener en cuenta que los ojos reflejan otro tipo de enfermedades sistémicas, como pueden ser, la co loración amarillenta de la conjuntiva ocular en las en fermedades del hígado o anemias hemolíticas. Para realizar una completa exploración del ojo y de sus anejos, es necesario seguir un protocolo de actua ción determinado y ordenado, anotando todos los pa rámetros exactos en un diagrama impreso previamente.
No todos los caballos presentan ojos de color marrón. Este ejemplar exhibe el ojo con el iris azulado.
Los componentes del ojo y anejos son: • Párpados (incluyendo el tercer parpado) • Aparato lacrimal • Órbita ocular (córnea, cámara anterior y posterior, nervio óptico ) • Conjuntiva • Músculos Por la posición de los ojos de los caballos, la visión que tienen es principalmente lateral. Esta posición hace que estén muy predispuestos a sufrir traumatismos cuando se sacuden la cabeza para eliminar las moscas. í>
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Cuerpo ciliar Glándula tarsal Ángulo iridocorneal Pestaña Fibras zonulares Córnea Cámara anterior Pupila Cristalino Iris Cartílago y glándula de la membrana nictitante Canal de Cloquet Nervio óptico Esclerótida Coroides Retina Tapetum Vitreo Conjuntiva Glándula lagrimal
Material
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Fluoresceína Suero fisiológico Sedantes Anestésicos locales y tópicos (lidocaína, mepivacaína, bupivacaína) • Agujas y jeringas
El material necesario para llevar a cabo una explora ción rutinaria: • Fuente de luz normal • Lupa • Lámpara de Wood
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Matenal básico para empezar la exploración del ojo en los caballos.
Quemosis: edema paipebral, puede tener un origen trau mático, infeccioso o incluso alérgico. Entropión: inversión de los párpados, generalmente el In ferior, hacia la superficie del ojo. La secuela más frecuente que puede llegar a producir es una queratitis, debido al roce con la córnea. Blefaritis: inflamación de los párpados, por lo común de bido a una conjuntivitis. Blefaroespasmo: contracción espasmódica de los párpa dos por dolor, generalmente cuando hay un cuerpo extraño. Epífora: derrame continuo de lágrimas, presente cuando se obstruye el conducto nasolacrimal y la lágrima drena por el exterior, llegando a provocar incluso lesiones en la piel como dermatitis.
• Conjuntivitis: inflamación de las conjuntivas, originadas por diversas causas. • Qu era titis: inflamación de córnea, se caracteriza por una pérdida de la transparencia y torna a un color azulgrisáceo. • Uveítis: inflamación de la úvea anterior, compuesta por el iris y el cuerpo ciliar. Su cronicidad puede originar secuelas como sinequias. • Exoftalmia: protrusión del globo ocular. Un caso muy claro y llamativo es cuando un caballo presenta tétanos. • Enoftalmia: hundimiento del globo ocular. Un signo claro de enoftalmia es en enfermedades graves o en casos de deshidratación extrema. • Anoftalmia: ausencia del globo ocular.
1. Entropión. Como consecuencia del roce de las pestañas, se ha producido una conjuntivitis purulenta. 2. Blefaritis. 3. Epífora en una yegua como consecuencia de una úlcera corneal. 4 y 5. Conjuntivitis: inflamación de las conjuntivas. 6. Queratitis en el ojo de un caballo. Se caracteriza por el aspecto gris azulado de la córnea. 7. En la uveítis se observa una pérdida de transparencia de la úvea.
Exploración Para proceder a una exploración del ojo, el caballo debe estar lo más quieto posible, para ello haremos uso de medidas de contención o directamente pro cederemos a la sedación del animal con anestésicos locales e incluso bloqueos regionales que detallare mos a continuación.
También se puede usar una jeringa de insulina e instilar el anestésico con el ojo abierto sin ser forzado.
Bloqueos regionales Los nervios que se suelen bloquear para realizar una completa exploración ocular son el auriculopalpebral, el supraorbitario, el lacrimal, el cigomático y el infratroclear.
Sedación Los protocolos más frecuentes de sedación incluyen los siguientes fármacos: hidrocloruro de detomidina, xilacina y romifidina por vía endovenosa lenta. Adi cionalmente, si el caballo o la exploración del ojo re quiere de alguna técnica un poco más agresiva se pueden combinar estos fármacos con un analgésico como el butorfanol también por vía endovenosa.
Anestesia tópica En determinadas ocasiones se necesita realizar una anestesia tópica de la conjuntiva y de la córnea para realizar la exploración sin ningún problema. Para ello podemos evertir el párpado inferior de tal manera que colocamos el líquido anestésico en esa zona y que posteriormente, al volver el párpado y el ojo a su posición normal, logremos su mayor difusión.
Bloqueo del nervio auriculopalpebral Este nervio motor es una rama del nervio facial que se puede bloquear por sitios diferentes. Inerva el músculo orbicular, que es muy fuerte en los caballos. En aquellas exploraciones donde el caballo presenta blefaroespasmo es necesario bloquearlo para produ cir la aquinesia del mismo y poder trabajar sin difi cultades. Es importante conocer que no se pierde la sensibilidad del nen/io trigémino. Con una aguja de 22G se introduce en el tejido subcutáneo un volumen de 2-4 mi de anestésico local, lidocaína 2%, mepivacaína o incluso bupivacaína, en función del tiempo de la exploración que vayamos a realizar, siendo la mepivacaína la que presenta mayor duración con 120 minutos de anestesia.
Esquema del bl oqueo anestésico de l os nervios oculares Bloqueo del nen/io
3
Bloqueo del nervio auriculopalpebral
Lugares donde se inocula el anestésico local para obtener el bloqueo regional de los nervios oculares
Bloqueo del nervio auriculopalpebral.
Bloqueo del nervio supraorbitario.
Bloqueo del nervio lacrimal.
Bloqueo del nervio cigomático.
El punto de inoculación del nervio auriculopalpebral se encuentra en la depresión caudal sobre la rama vertical de la mandíbula, aproximadamente 2,5 cm por dejado de su punto más alto. La rama palpebral del nervio se bloquea inmedia tamente medial y ligeramente rostral al punto más alto del arco cigomático, aproximadamente a mitad entre el ojo y la oreja. Bloqueo del nervio sup raorbitario Este nervio es una rama del nervio trigémino y su blo queo proporciona una desensibilización del párpado superior. Se inyecta 1-2 mi de anestesia en el fora men supraorbitario, a una profundidad de 1 cm, en la cara dorsal de la órbita.
Exploración con luz Examen visual La primera parte de la exploración del ojo es compro bar la simetría de ambos ojos y de sus estructuras anejas, párpados, aparato lacrimal, órbita y zonas periorbitarias. A continuación se comprueba la inte gridad de la función palpebral, signos de descarga anormales, posibles traumatismos e inflamaciones, palpación del arco cigomático, hueso orbital y fosa supraorbitaria, puesto que cualquier tipo de inflama ción a este nivel podría suponer una lesión de la zona retrobulbar o retroorbital. Debemos comprobar cualquier signo de dolor ocu lar (fotofobia o blefaroespasmo), conjuntivitis (edema y exudados), exoftalmos y enoftalmos del globo ocular.
Párpados Se deben examinar las superficies de los párpados, tanto superiores como inferiores, con una maniobra determinada, presionando con el dedo índice sobre el globo ocular y con el dedo pulgar evidenciando el párpado inferior. De esta manera podemos examinar la integridad del tercer párpado, así como la presen cia de algún cuerpo extraño o incluso un carcinoma de células escamosas, ayudándonos de unas pinzas atraumáticas previa instilación de anestésico local para su manipulación.
Inflamación
Inflamación difusa de ambos párpados. Técnica a aplicar para la exteriorización del tercer pár pado.
Tumores
Quistes
Proceso de extracción de un quiste sebáceo.
Traumatismos
Traumatismos frecuentes en los párpados. Se acompañan frecuentemente de enrojecimiento de la conjuntiva, epífora y edema de párpados.
Infección fúngica
Proceso micóticos próximos al ojo.
Región conjuntiva! Comprende la conjuntiva palpebral y el tercer pár pado. En ella se puede observar cualquier patología de manera aislada unilateralmente, o bien de manera bilateral en alguna enfermedad sistémica. Para ex plorarla metemos el dedo índice entre la pared dor sal del globo ocular y el arco cigomático y al mismo tiempo desplazamos con el pulgar el párpado inferior hacia abajo. Alteraciones: • Conjuntivitis: conjuntiva enrojecida y con edema. Producida por causas físicas, químicas o microbiológicas. Muchas veces viene acompañada de alteración de la córnea por lo que se produce una queratoconjuntivitis. • Ictericia: coloración amarillenta de las conjuntivas, aparece en enfermedades del hígado o crisis hemolíticas. • Pálida: la conjuntiva aparece blanquecina, debido a procesos anémicos o isquemias. • Cianosis: coloración azulada que indica una si tuación de hipoxemia como la que se encuentra en enfermedades con grave compromiso respira torio, problemas cardiacos y congénitos.
Queratoconjuntivitis. Se aprecia el orificio de una pequeña úlcera.
Mucosas ictéricas debido a un problema hepático en un potro.
Exploración de las conjuntivas. Con el dedo índice y pulgar se separan los dos párpados para dejar visibles las conjuntivas.
Aparato lacrimal Se tiene que comprobar la correcta formación y dre naje de la lágrima a través de los orificios superior e inferior así como en el orificio nasal, observando en los ollares una zona húmeda que determina el buen funcionamiento. Para ello vamos a utilizar el Test de Schirmer, el cual va a determinar el grado de secre ción lacrimal del animal. Una patología muy frecuente es la obstrucción del conducto nasolacrimal que genera una infección
localizada y cursa con conjuntivitis y blefaroespasmo. Para desobstruir este conducto se debe drenar con suero salino, bien desde el orificio nasal o desde el orificio del globo ocular, siendo más fre cuente y sencillo realizarlo desde el primero. Alteraciones: • Infecciones ° Traumatismos
Infecciones
La obturación del conducto nasolacrimal le ha provocado una conjuntivitis purulenta a este caballo y el drenaje de pus por los ollares.
Obstrucción del con ducto nasolacrimal con una espiguilla a su salida por los ollares.
Reflejos sensoriales La capacidad visual que tienen los caballos es com plicada de definir y de graduar, excepto en aquellos individuos en los que la visión esté totalmente anu lada. La respuesta pupilar a la luz de diferentes estí mulos va a variar en función de la presencia o ausen cia de luz. Reflejo de amenaza Una respuesta de amenaza positiva (mover la cabeza, cerrar los parpados, huir...) implica un funcionamiento normal de las vías nerviosas periféricas y centrales y por lo tanto un cierto grado de visión. Para realizar esta prueba es importante hacerlo correctamente para evitar que el flujo de aire al mover la mano entre en contacto con la córnea o directamente con los párpa dos. Asimismo, cualquier sonido que el animal asocie como extraño presentará una respuesta positiva y se guramente nos distorsionará nuestro estudio.
Traumatismos próximos al globo ocular. Realización del reflejo de amenaza.
Reflejo pupilar La presencia de respuesta a la luz no significa nece sariamente que el caballo tenga una visión correcta, puesto que en enfermedades del SNC que producen ceguera puede haber una respuesta positiva al estí mulo de la luz. Para hacer esta prueba conviene estar bajo un am biente tranquilo y con poca luminosidad para que en el momento de incidir con el haz de luz sobre el ojo podamos observar claramente los cambios pupilares.
Esquema nervioso del f uncionamient o ocular
Exploración en oscuridad La exploración del ojo a oscuras implica que todas las posibles anomalías en presencia de luz se van a ver evi denciadas mucho mejor puesto que no hay otros refle jos que nos distraigan. Para ello vamos a necesitar: • Linterna de bolsillo • Una lente de aumento • Oftalmoscopio directo • Oftalmoscopio indirecto
Linterna de bolsillo Es el método más sencillo y el más usado por los ve terinarios clínicos equinos. Se pueden observar: Córnea Es la parte más anterior del globo ocular y es tam bién la más propensa a recibir golpes. Es importante recordar que esta zona no está vascularizada. Debemos identificar opacidades, cuerpos extra ños, úlceras, heridas punzantes, infecciones localiza das, vascularización normal o anormal (neovascularización), para ello también se puede hacer uso de una lente de aumento. Alteraciones frecuentes • Queratitis: inflamación de la córnea. Se pierde la transparencia de la córnea y ésta adquiere un co lor azulado-grisáceo. Las etiologías son muy varia das e incluyen causas biológicas (virus, bacterias, hongos), traumatismos, cuerpos extraños, etc.
La neovascularización en este ojo se aprecia en la parte inferior del globo ocular.
Heridas punzantes
Pérdida del globo ocular por traumatismo.
Tes t de fiuoresceína
Test de fiuoresceína para comprobar la presencia de una úlcera corneal.
• Úlcera corneal: es una pérdida de sustancia a nivel de la córnea. Las causas suelen ser traumáticas por cuerpos extraños, distiquias, entropión, etc. • Cuerpo extraño: pueden provocar úlceras cor neales.
Heridas punzantes: pueden provocar pérdida del globo ocular. Neovascularización: es una secuela de muchas enfermedades inflamatorias del segmento anterior del ojo como la queratoconjuntivitis.
Segmento anterior Aquí se incluyen las estructuras internas hasta el cristalino. Observando desde diferentes ángulos, podemos ver la existencia de quistes, sinequias, neoplasias, uveítis y cuerpos extraños en el iris, cristalino, humor acuoso y la cámara anterior. Para observar bien el cristalino es necesario em plear un midriático como la tropicamida tópica al 1% para producir la dilatación de la pupila, que se consi gue a los 20 minutos.
• Glaucoma: se produce por un fuerte aumento de la presión intraocular que conlleva un endu recimiento del globo del ojo, atrofia de la retina y ceguera.
Glaucoma
Alteraciones más frecuentes • Uveítis: es la inflamación de la úvea que se acom paña de fotofobia, blefarospasmo, epífora y en grasamiento del iris. • Depósitos de melanina (granos de hollín): nor mal en los caballos excepto si son demasiado abundantes o grandes, puesto que pueden difi cultar la visión.
Granos de hollín
OñaBmoscopio di rect o Utiliza una fuente luminosa dirigida al interior del ojo mediante un espejo ajustable, con lo cual la luz refle jada se reúne mediante una lente de condensación (por lo general de una potencia de +20 o +30 diop trías) para formar una imagen real invertida de la retina. Tiene las ventajas de proporcionar una ilumina ción de gran intensidad y un amplio campo visual; se puede valorar el fondo de ojo aún a través de medios ópticos turbios, puesto que las opacidades cornea les de la cámara anterior, del cuerpo vitreo y del cris talino se observan contra la reflexión del tapete. Se puede realizar una oftalmoscopia monocular indirecta o una oftalmoscopia binocular indirecta. Ésta posee una fuente de luz integrada y más po tente; permite obtener una visión estereoscópica e imágenes separadas para cada ojo. Además permite al veterinario disponer de una mano libre. Sus des ventajas son que la imagen está invertida y que su manejo requiere cierta habilidad.
OftaBmiQscopio indirecto
Realizació Rea lización n del examen con oftalmoscopio oftalm oscopio directo.
El oftalmoscopio es un instrumento con varias lentes y espejos que ilumina el interior del ojo a través de la pupila y el cristalino, permitiendo el examen de la retina y del fondo de ojo. Existen muchas formas, siendo la más común mente utilizada la del oftalmoscopio manual diseñado para la visión amplificada directa, con una fuente de luz proyectada por medio de un espejo o un prisma al fondo del ojo del paciente, que se refleja en la re tina y que coincide con la línea de visión del observa dor a través de la abertura. Su principal aplicación es la observación del fondo de ojo, aunque también pueden examinarse el resto de estructuras oculares, desde los párpados y el segmento anterior del ojo hasta los medios infraocu lares y la retina.
Oftalmoscopio y tonómetro utilizados para oftalmología equina.
Pruebas diagnósti diagnósti cas Hisopo Para descubrir la causa de una contaminación bac teriana o fúngica, se debe tomar una muestra antes de comenzar con cualquier tratamiento tópico que pueda interferir en los resultados. Si el animal no co labora se puede realizar la anestesia del nen/io auri culopalpebral. Con un hisopo y medio de transporte o suero salino, se toma la muestra generalmente del saco conjuntival inferior, lo más cercano a la comisura medial, párpados y córnea. Hay que asegurarse de tomar la muestra donde realmente existe la infección para evitar una diseminación innecesaria.
Toma de muestra con hisopo para determinar el agente causal de una conjuntivitis bacteriana.
Raspado-frotis Para realizar un raspado se necesita anestesia tópica, insensibilización del nervio auriculopalpebral o incluso una sedación ligera del animal para evitar cualquier posible complicación en el momento de la toma de muestras. No es una técnica rutinaria pero se puede emplear para el examen de lesiones fúngicas y carci noma de células escamosas. Se realiza con un bisturí o un portaobjetos p ortaobjetos de d e inmersión respectivamente. respectivamente. Material: • Hisopo comercial • Medio de trasporte suero suero salino salino • Portas • Bisturí • Anestesia Anestesia loca locall tópica • Medio de cultivo • Fijador
Raspado-frotis
Tinciones oftálmicas La fiuoresceína es una solución de color naranja, que en condiciones de alcalinidad vira a verde. Es una solución que no penetra en la córnea intacta o en la conjuntiva y que la empleamos como indicador de la presencia de úlceras corneales puesto que en esos casos el estroma hidrófilo absorbe el pigmento y se delimita la zona lesionada perfectamente, que se puede observar empleando una fuente de luz levemente azulada. Consiste en poner una gota de fiuoresceína y a continuación lavar el ojo con una so lución salina para eliminar el pigmento sobrante.
Otro uso que qu e se le puede dar a esta solución es el de comprobar el correcto funcionamiento de drenaje del canal canal nasolagrimal, nasolagrimal, puesto puest o que cuando cuand o se coloca la solución en el ojo debe aparecer pigmentada de verde la zona de los ollares.
Dacriocistorrinografía Es una radiog radiografía rafía de contraste del conducto cond ucto nasola grimal para determinar la magnitud de la lesión o ano malía del conducto o incluso confirmar la necesidad de una cirugía. Se inyectan 5 mi de solución de con traste como sulfato de bario o un contraste a base de yodo por el punto lacrimal proximal o distal y a conti nuación se toman tom an radiografías radiografías laterales y oblicuas.
Tincio nes oftálmicas
Secuencia de imágenes para la realización del test de fiuoresceína fi uoresceína..
Test de Schirmer Consiste en comprobar el funcionamiento de la pro ducción de lágrima mediante una tira de papel estan darizada puesta en el saco conjuntival y ver el reco rrido de papel mojado producido por la lágrima.
El método más empleado es la tonometría indirecta (Ton-O-Pen, el más conocido y portátil) que nos da la tensión infraocular midiendo la tensión desde la córnea. Valores normales
Caballos normales
15 mm en 30 s 20-30 mm en 60 s
Valores anormales
16-32 mm de Hg < 16 mm de Hg: glaucoma 32 mm de Hg: uveítis aguda
Caballos con patología <10 mm en 60 s Un déficit de producción de lágrima podría corres ponder con una posible queratoconjuntivitis.
Tonometría La presión infraocular es una técnica muy empleada tanto en humana como en pequeños animales, sin embargo su uso en caballos no es tan frecuente por la poca incidencia de glaucoma.
Otra técnica empleada es la tonometría digital, en la que se utiliza el dedo índice de nuestra mano, realizando una ligera presión sobre el globo ocular, tanto sobre el párpado superior como directamente sobre la córnea, previa anestesia local. La prueba se repite en el otro ojo para encontrar diferencias. No obstante, se necesita tener mucha experiencia sobre animales sanos para estimar de este modo la presión infraocular.
Test de Schirmer
Comprobación del funcionamiento de la producción de lágrima mediante el test de Schirmer.
Ecografía del globo ocular
Radiología
Esta técnica se emplea mucho y es bien tolerada ge neralmente por los caballos, aunque para la exactitud del resultado y comodidad por parte del veterinario se puede proceder a su sedación y anestesia local cuando se realiza la ecografía directamente sobre la córnea. Es útil para determinar masas infraoculares, cuerpos extraños, lesiones retrobulbares y cataratas. Aplicando gel sobre la piel y el transductor vamos a identificar diferentes estructuras:
La identificación de las estructuras anatómicas de la cabeza del caballo no es una tarea sencilla, y para ello se debe tener un conocimiento amplio de ana tomía y de las estructuras relacionadas directamente o indirectamente con el globo ocular. Su empleo se limita a cuando hay alguna posible alteración de la cavidad nasal, senos paranasales y del hueso orbital, en los casos de traumatismos orbitarios o faciales, exoftalmos o incluso en alteraciones del conducto lacrimal.
Córnea
color negro color negro
Cámara anterior Cristalino
color negro
Tejidos
color blanco
Retina
color blanco
Coroides
color blanco
Esclerótica Nervio óptico
color blanco color gris
Gonioscopia Permite el examen directo del ángulo iridocorneal, el cual es una zona de drenaje del humor acuoso, mediante una lente específica y una fuente de luz. Se emplea para el estudio de la luxación del crista lino, presencia de cuerpos extraños, hemorragias, sinequias, tumores o desgarros de la base del iris y cuerpo ciliar.
Ecografía del globo ocular
Ecografía del globo ocular colocando el transductor sobre los párpados o bien directamente sobre la córnea.
Otras técnicas Son más específicas y se hacen a nivel hospitala rio para explorar el ojo en profundidad. Entre estas destacar: • Miomicroscopía: permite el examen de los ojos y anexos mediante un microscopio asociado a una fuente luminosa. • Tomografía computerizada • Resonancia magnética • Electrorretinografía: es un registro gráfico de los cambios en el potencial eléctrico cuando la retina es estimulada por la luz.
Exploración de aparato respire Anamnesis Valoración del estado general Fosas nasales Senos paranasales Exploración de laringe y tráqu ea Métodos complementarios de exploración de las vías respiratorias altas
Las afecciones del sistema respiratorio del caballo son la segunda causa, después de las enfermedades musculoesqueléticas, causantes del bajo rendimiento en los caballos. Originan también importantes pérdidas econó micas, porque interrumpen los programas de entrena miento debido a las lesiones pulmonares. Por lo tanto, la temprana detección de los signos clínicos y el trata miento de los problemas respiratorios son esenciales para que los caballos vuelvan a su actividad deportiva. Esto se realizará llevando a cabo en el animal: • Diagnóstico clínico y de laboratorio. • Intentar predecir la aparición de enfermedades espe cíficas, basándose en experiencias previas y la intro ducción de técnicas de administración que reduzcan al mínimo el efecto de los factores de estrés.
• Introducir programas de vacunación para enfer medades específicas. En la mayoría de los casos, las enfermedades infec ciosas de las vías respiratorias en el caballo se pro ducen por la suma de múltiples causas como: • Inclemencias del tiempo atmosférico (vientos do minantes, frío). • Estrés del destete o del transporte, predisponen mucho a las enfermedades infecciosas. • La deficiente ventilación de los boxes favorece el incremento de gases tóxicos y de polvo que irrita las vías aéreas. • Transmisión entre caballos de los agentes infec ciosos, especialmente virus de la influenza y herpesvirus.
Anamnesis
• Edad y raza: hay que tener en cuenta los defec tos congénitos como atrofia de coanas, desvia ción del tabique nasal y neumonías por f íh od o- c o c c u s e q u i en potros. Además, los potros de raza Árabe pueden presentar el síndrome de inmunodeficiencia combinada favorecedor de infec ciones pulmonares. • Medio ambien te: los animales deben alojarse en boxes bien ventilados sin acumulación de gases, humedad o polvo.
• Programa de vacunación: frente a influenza y herpesvirus. • Programa de desparasitación: * Pa r a s c a r i s e q u o r u m : por la migración de los parásitos en potros, o Dyctioca ulu s arnfieldi. • Patologías previas: si ha habido infecciones por S t r e p t o c o c c u s pueden presentarse abscesos in ternos (papera bastarda), empiema de bolsas gu turales, abscesos retrofaríngeos.
Valoración del estado general
Es necesario apreciar el estado mental del animal; comprobar si está alerta, postrado, decaído, si no come..., situaciones que nos encontraremos en ani males con enfermedades graves.
Se debe valorar la presentación de disnea, ollares dilatados y con mucosidades, actitudes ortopneicas para favorecer la respiración o bien la cara con expre sión de ansiedad.
Fosas nasales Inspección
Exámen funcional
En primer lugar realizaremos una inspección externa de cavidades nasales. Si con luz natural no es sufi ciente se puede ayudar con una linterna.
Permite valorar diversos parámetros como el aire es pirado. Para el aire espirado debe valorarse: • Tem peratura: aumenta en procesos febriles y disminuye en hipotermia. • Volumen: disminución unilateral, cuerpo extraño en la nariz, edema de mucosa; disminución bilate ral, afecciones en vías respiratorias profundas. • Fuerza • Olor: digestivo (debido a caries, olor a estómago), respiratorio (gangrena). • Ruidos nasales: por obstrucciones o la presencia de moco. • Flujo nasal: secreción nasal fisiológica: secreción de mucosa nasal. • Ruidos 0 Ruidos ordinarios. • Ruidos anormales: en el caso de hemiplejía laríngea y patología pulmonar.
Los principales signos que podemos recoger al ob servar los ollares son: • Desviaciones y estrechamiento por parálisis unila teral del nervio facial. • Deformación de los supranasales: por tumores o abscesos. • Edemas pronunciados en el extremo de la nariz. • Costras, excoriaciones: por rozamiento, rascado del hocico en superficies duras.
Palpación Externa, con los dedos para comprobar, sensibilidad dolorosa por fracturas, hematomas, edemas, cam bios de temperatura, consistencia o crepitaciones debido a fracturas internas.
Inspección de los ollares para buscar la presencia de sangre o cuerpos extraños.
Toma de muestras con un hisopo directamente de los ollares.
Valoración del moco en los oll ares del caballo
Cantidad: abundante o escaso. Aparición: unilateral o bilateral. Examen macroscópico: • Aspecto: seroso, seromucoso, purulento, hemorrágico. • Consistencia: más fluido (seroso), más difuso y viscoso (purulento). • Color: incoloro (fisiológico), amarillo-verdoso (purulento), herrumbroso (presencia de hemoglobina como en casos de neumonía), amarronado (gangrena). • Olor: inodoro, pútrido, carioso.
Examen microscópico: • Células epiteliales, glóbulos rojos y fibras elásticas: indica destrucción del parénquima pulmonar. • Fibrina y bacterias. Alteraciones del flujo: • Aumenta al bajar la cabeza: indica proceso en senos o bolsas guturales. • Aumenta al comprimir bolsas guturales o en deglución: indica proceso en bolsas guturales. • Espumoso: indica edema de pulmón. • Hemorrágico: puede ser epistaxis (sangre en gotas) o rinorragia (hemorragia nasal, la sangre sale en chorro).
Senos paranasales Tienen la función de aligerar el peso del cráneo, pues están huecos en su interior. Su importancia clínica ra dica en que están recubiertos de una mucosa y que se puede infectar. En los équidos se exploran los senos frontales y los senos maxilares. Estos últimos enferman en muchas ocasiones debido a problemas dentales. La exploración se realiza siempre que se observe flujo nasal, estenosis nasal (silbido nasal) y la presen cia de dolor y aumento de tamaño en los nodulos linfáticos.
Lugares de punción para la tr epanación de l os senos
Palpación Se hace con la punta de los dedos sobre la piel que recubre el seno para comprobar el desplazamiento de la piel y la ausencia de una dermatitis. Después, una más profunda con los nudillos para obtener da tos que nos informan sobre la sensibilidad (presen cia o no de dolor), temperatura y consistencia de las paredes que, si son menores, nos pueden indicar la existencia de una trepanación.
Palpación
Palpación del seno frontal primero con la punta de los dedos y en segundo lugar con los nudillos para buscar puntos dolorosos.
Percusión Se realiza de manera directa con la contera del martillo, o bien con los nudillos. En ocasiones es necesario ta par ambos ojos al caballo y percutir de manera gradual hasta que se acostumbre. La boca debe estar cerrada para que ésta no actúe como caja de resonancia.
Obtendremos los siguientes sonidos: • Timpánico: normal, suena como a caja hueca. • Submate: por engrasamiento de la pared. • Mate: presencia de exudados.
Percusión
Percusión del seno frontal con la contera del martillo para buscar alteraciones del sonido que pueden dar un sonido mate como la acumulación de pus que se produjo en el seno de este caballo.
Exploración de laring e y tráq uea La laringe regula el paso de aire y la fonación, por lo que es la responsable de emitir los relinchos en el caballo. Esta constituida por varios cartílagos unidos por un aparato ligamentoso y muscular. Su inervación se realiza por medio del nervio laríngeo craneal que inerva la mucosa de la laringe (le da sensibilidad), y el nervio laríngeo caudal que inerva la musculatura de la laringe. Su parálisis origina la hemiplejía laríngea.
Palpación
Palpación Para palpar la laringe se levanta levemente la cabeza, y se toca con ambas manos los lados de la laringe para detectar deformaciones o presencia de cica trices por traqueotomías, sensibilidad o calor. Si se comprime fuerte la laringe o los anillos traqueales es po sible provocar la tos en el caballo, siendo más fácil si el animal padece un problema respiratorio. En las en fermedades respiratorias de las vías altas no hay que
Palpación de la laringe y tráquea con una mano. Oprimiendo fuertemente en estos sitios se puede provocar la tos.
olvidarse de la exploración de los ganglios regionales, ya que se suelen encontrar afectados en los casos de empiemas de bolsas guturales o de paperas por
Palpación
Streptococcus.
Auscult ació n de las vías respiratorias altas La auscultación de la traquea debe hacerse en una zona tranquila, exenta de ruidos. Si no consegui mos oír nada utilizaremos una bolsa de respiración, para aumentar la presión de C 02 y dar lugar a un incremento en la frecuencia y en la profundidad de la respiración. Debe valorarse, tanto en la inspiración como en la espiración, la presencia de artefactos, in flamación de la mucosa traqueal o moco que puedan obturar la luz traqueal. Hay que empezar auscultando a nivel de la laringe para ir después descendiendo a lo largo del cuello siguiendo la referencia de los anillos traqueales hasta llegar al último tercio, donde ya se pierde la traquea. A la vez que realizamos esta auscultación, no olvidaremos una auscultación cardiaca, ya que el edema pulmonar y la intolerancia al ejercicio por una enfermedad de origen cardiovascular pueden cursar con síntomas muy similares a las patologías respiratorias. La hemiplejía laríngea es una de las patologías más comunes de los caballos de deporte en las que está implicada la laringe. Es la parálisis por cie rre incompleto de uno o los dos cartílagos aritenoides lo que origina un ruido agudo muy ostensible cuando el caballo comienza su actividad deportiva. Conforme la gravedad del proceso es mayor, la dis minución de la luz provocará un mayor “ronquido laríngeo” y por tanto una mayor gravedad del pro ceso por riesgo de shock cardiorrespiratorio. La endoscopia permite cuantificar el grado de parálisis de esos cartílagos y la probabilidad de éxito de una cirugía correctora.
La exploración de los nodulos linfáticos de la cabeza está siempre indicada en las afecciones de las vías respiratorias altas.
Auscultación
Auscultación de la tráquea. En esta posición se auscultan perfectamente los sonidos respiratorios aun en caballos en reposo.
Métodos complementarios de exploración de las vías r espirato rias altas Radiografías • Radiografía del cráneo Septo nasal y cavidad nasal (roturas óseas, desviaciones tabique nasal). Patologías de los senos paranasales (presencia de fluidos en sinusitis, masas que invaden los senos). • Radiografía de bolsas guturales ° Distensión timpánica en potros con timpanismo de bolsas guturales. Presencia de líneas de fluidos en empiemas de bolsas guturales.
Caballo mostrando una descarga nasal mucopurulenta.
• Radiografía de faringe y laringe • Engrasamiento del paladar blando. • Epiglotis hipoplásica. • Fracturas del aparato hioideo.
Trepanación de los senos En caso de infecciones agudas permite la extracción del contenido infectado, la limpieza y desinfección de los senos nasales implicados y la valoración del resto de las cavidades de los senos.
Trepanación para acceder a los senos nasales.
Exploración de las bolsas gu tur ales Las bolsas guturales son una estructura caracterís tica de los équidos formadas por dos sacos muco sos constituidos como un divertículo ventral de la trompa de Eustaquio en el oído interno con una co municación con la faringe a través del orificio faríngeo del tubo auditivo. Se localizan por detrás de la man díbula, debajo de la base de la oreja, y por delante del ala del atlas. Las patologías más habituales que se presentan en las bolsas guturales son: • Empiema: formación de pus en su interior. • Timpanism o: por defecto congénito, sobre todo en potrancas. Las bolsas se llenan de aíre y dis tienden, provocando dolor. • Micosis: por micelios de hongos del géneroAsper- gillus que colonizan los divertículos de las bolsas.
Inspección Lo primero es comprobar la ausencia de abultamientos. Lo mejor es colocarse delante de la cabeza del caballo y observar la simetría de ambas bolsas guturales.
Localización extema de la bolsa gutural.
Vista del i nteri or de la bolsa gutural derecha
Palpación y percusión
Exploración de las bolsas guturales mediante palpación y percusión dígito-digital.
Palpación Con los dedos comprobamos que tienen una consis tencia blanda y elástica. En ocasiones, al comprimir se produce un aumento del flujo nasal y en los ca sos de empiema la palpación denota una estructura blanda y fluctuante.
Percusión Es dígito-digital y se realiza de arriba abajo. Dos de dos de la mano izquierda, en el caso de que el clínico sea diestro, se colocan encima de la bolsa gutural y con los dedos de la mano derecha se percute enér gicamente para obtener el sonido. En condiciones normales es submate tirando a timpánico, debido a que se trata de una estructura hueca llena de aire. Un sonido claramente timpánico se obtendrá en el timpanismo de bolsas guturales, mientras que el so nido mate es típico de las colecciones de pus dentro de la bolsa.
Exploración del tó rax resp iratorio Inspección La inspección busca descubrir cambios de forma o de volumen. Se puede captar un aumento de ta maño del tórax a consecuencia de enfisema alveolar crónico, un abuitamiento ventral debido a edemas o hidrotórax, abultamientos por traumatismos de costi llas o bien que estén deformadas. Es posible encon trarse con modificaciones de la columna vertebral como cifosis, lordosis o escoliosis. En inspiración, el caballo desplaza hacia fuera la caja torácica y la cavidad abdominal, mientras que en la espiración ocurre todo lo contrario. La inspira ción es ligeramente más corta que la espiración. Los équidos presentan una respiración costo-abdominal en la que intervienen a partes iguales la caja torácica y la prensa abdominal. La respiración exclusivamente costal aparece en los procesos dolorosos del abdo men, como es el caso de los cólicos o peritonitis. Durante la inspección nos fijaremos si se presenta disnea, que se define como una respiración dificul tosa o laboriosa. La disnea inspiratoria se produce cuando existen obstáculos a la entrada de aire de los pulmones. El animal tiene los ollares dilatados y depresión del hueco del ijar. Aparece en casos como
Este caballo presenta los ollares dilatados a consecuencia de la disnea que padece.
la hemiplejía laríngea o empiema de bolsas guturales. Al contrario, la disnea espiratoria aparece cuando hay dificultades para expulsar el aire de los pulmones. Es el caso de la obstrucción recurrente de vías respira torias (ORVR), que en los casos crónicos produce el
Representación esquemática de las vías respiratorias bajas
3
Bronquio derecho e izquierdo Bronquio principal
Bronquiolo
surco del huélfago, una línea a lo largo de las unio nes costocondrales, originado por la hipertrofia de los músculos abdominales encargados de expulsar el aire. En esta situación también es posible ver el con tragolpe del ijar.
Palpación
Este caballo, con ORVR, recibe una sesión de sauna com o tratamiento para mejorar su función pulmonar.
En primer lugar se hace una palpación superficial del tórax para buscar puntos dolorosos, o calientes debido a abscesos. La palpación profunda se hace para comprobar el estado de las costillas. Para ello se pasan los nudillos de una mano por la superficie de las costillas para comprobar la presencia de frac turas o fisuras que provocarán dolor que dificulta la respiración. Con la punta de los dedos se recorren los espacios intercostales para localizar puntos de dolor pleural en los principios de pleuritis.
Espacios intercostales en los que cortan las líneas del pulmón Línea
Paravertebral, paralela al suelo, a 4 dedos de las apófisis espinosas Ilíaca, paralela a la anterior
Si los caballos presentan problemas respiratorios es conveniente realizar las tareas de limpieza sin los animales dentro del box.
Isquiática, parte del ángulo externo del isquion Del encuentro, pasa por la articulación escápulo-humoral Del codo
Espacio intercostal
17 16 14 10 6
Unos boxes individuales y bien ventilados reducen considerablemente la presentación de ORVR.
Palpación
Palpación intercostal y encima de las costillas para buscar punt os calientes o dolorosos.
Percusión Se hace con martillo y plesímetro. El plesímetro se coloca bien adherido a la superficie de la piel y se dan golpes con el martillo continuados, de la misma intensidad. Ello se consigue golpeando con el martillo con movimientos de muñeca, no levantando la mano arriba y abajo. La percusión tiene que ser ordenada, siguiendo las líneas de los paradigmas o la de los espacios intercostales. Con la percusión superficial
tratamos de buscar los límites del pulmón. En los équidos, en el caso de la ORVR se encuentra atra sado. Con la percusión profunda se quieren localizar lesiones concretas dentro del área pulmonar como puntos de neumonía o abscesos. En muchas oca siones es posible originar la tos. El sonido que se obtiene es claro con una reso nancia que depende del grosor de la pared costal, siendo más sordo en los animales obesos. Aparece
Percusión
En la percusión del tórax en el caballo, los golpes del martillo deben ser secos para apreciar bien la sonoridad.
Auscultación
La auscultación del pulmón ha de ser ordenada y sistemática, auscultando amb os pulmones. Conviene mirar el flanco para comprobar los movimientos respiratorios.
un sonido hipersonoro en animales delgados o con enfisema pulmonar. Por el contrario, el sonido mate o submate se escucha en los casos de alteraciones pulmonares como neumonías o derrames torácicos. En estos casos se nota una línea mate por debajo
Colocando una bolsa de plástico sobre los ollares durante un tiempo se consigue una inspiración más profunda para poder auscultar.
del lugar de derrame pleural e hipersonoro en la zona que está por encima.
Auscultación Supone un buen método para diagnosticar mu chas enfermedades pulmonares. La auscultación ha de ser ordenada, simétrica y comparativa. Debe hacerse en un lugar lo más silencioso posible. En ocasiones es muy difícil escuchar los ruidos respi ratorios, por lo que para forzarles la respiración se puede poner una bolsa de plástico tapando los ollares durante el tiempo que aguante el animal. Al retirar la bolsa el caballo realizará varias inspiracio nes profundas; es el momento que aprovecharemos para auscultar. También se le puede hacer correr un poco para aumentar la frecuencia respiratoria y por tanto la profundidad de la respiración. En cada punto de auscultación hay que estar durante al menos cuatro o cinco respiraciones. Si el caballo tiene mucho pelo, separar con los dedos el mismo o mojarlo para evitar ruidos de roce. El sonido respiratorio normal que se escucha se conoce como "sonido respiratorio”, que se aprecia mejor al inicio y mitad de la inspiración. En la espi ración son casi inaudibles, como en animales muy gruesos o con respiración muy superficial. En la la ringe y tráquea se escuchan perfectamente como un sonido áspero y tubular.
Modificaciones de los sonidos normales
Toracocentesis
Se escuchan sonidos más fuertes sobre la tráquea cuando se presenta un incremento de la ventilación ocasionado por ejercicio, fiebre, cardiopatías, ane mia grave, etc. Las enfermedades obstructivas del pulmón como bronconeumonías, enfisemas, ORVR, también lo originan como consecuencia del estre chamiento de las vías aéreas en los pulmones. El incremento de los sonidos durante la inspiración es sugestivo de estrechamiento de las vías extratorácicas y si lo es en la espiración indica estrechamiento en las vías intratorácicas. La disminución de los sonidos normales del pul món se deben a enfisema y su ausencia se debe a derrames pleurales.
Sonidos anormales del pulmón • Silbidos: son estertores secos y se producen por la vibración de las paredes de las vías aéreas o de sustancias extrañas intraluminales. Si son espira torias indican lesiones intratorácicas, mientras que si los escuchamos en la inspiración suelen origi narse en la laringe o la tráquea. • Sonidos crepitantes: son sonidos discontinuos de duración muy breve. Suelen distinguirse en broconeumonías en cualquiera de las dos fases de la respiración.
Toracocentesis Es una técnica exploratoria que se realiza cuando se sospecha la presencia de líquido en el tórax. También tiene un fin terapéutico con el objeto de drenar los líqui dos encontrados en la cavidad pleural. • Se realiza con el animal de pie, en el 5oespacio intercostal izquierdo o 6o espacio intercostal de recho, 10 cm dorsal al olecranon, justo craneal al borde de la costilla. • Desinfectar bien la zona, realizar una anestesia lo cal y desplazar la piel del tórax para que no coin cida con el músculo intercostal. Utilizar un catéter
Toracocentesis para drenar el líquido del hemotórax de un caballo.
de 14 G unido a una llave de tres vías. El líquido fluirá libremente; si no es así, utilizar una jeringa para aspirar. • El líquido normal tiene menos de 10.000 células/ml y menos de 2,5 g/dl de proteína. Las muestras se llevan al laboratorio para determinar los micro organismos causantes de una pleuritis.
Otras técnicas de diagnóstico Radiografías Son útiles para detectar alteraciones de las vías res piratorias superiores, como masas producidas por abscesos, pólipos, etc. o acumulación de líquidos en bolsas guturales o senos. La exploración radiográ fica del tórax del caballo adulto presenta dificultades técnicas, no son específicas y quedan reservadas a potros recién nacidos.
de la fosa nasal, si hay úlcera, mucosidades, presen cia de hematoma etmoidal progresivo y de la con cha ventral. El principal hallazgo en la nasofaringe es la hiperplasia linfoide, común en potros de hasta dos años y que con la edad tiende a desaparecer. Al avanzar con el endoscopio se puede ver la entrada a ambas bolsas guturales y la nasofaringe. Con mucha precaución se puede entrar dentro de las bolsas gu turales para confirmar la presencia de exudados con
Ecografía Es muy útil en la detección de efusiones pleurales, consolidación pulmonar o formación de abscesos o cuando se aprecie dolor en la percusión pulmonar. También se puede utilizar la biopsia pulmonar ob teniendo tejido a través del 8o espacio intercostal, y a 8 cm por encima de una línea horizontal de la articu lación escapulo-humeral.
Clasificación de la hiperplasia linfoide
Grado 1 II
Endoscopia de vías respiratorias altas
III
Es la más utilizada. Se comienza el examen por las fosas nasales introduciendo el endoscopio por el meato ventral para observar el estado de la mucosa
IV
Características Folículos pequeños, poca cantidad, pared faríngea dorsal Muchos folículos, pequeños, pared lateral y dorsal de la faringe Muchos folículos grandes que se pueden extender al paladar blando Muchos folículos grandes, edematosos que cubren toda la faringe, epíglotis y paladar blando
Introducción de la sonda del endoscopio. Es necesario sujetar bien al animal para evitar en la medida de lo posible la sedación con medicamentos.
sangre consecuencia de micosis o bien de pus por empiema de las bolsas. Dentro de las bolsas, tener precaución de no dañar las arterias carótida interna y externa y la arteria maxilar externa. De las estructuras de la laringe lo que hay que comprobar es la simetría de los cartílagos aritenoides, ya que en el caballo es común la hemiplejía laríngea izquierda. Para compro barlo, realizaremos el “test de la palmada". Mientras se realiza la endoscopia, un ayudante da una pal mada fuerte en la espalda derecha del caballo. Los aritenoides responderán cerrándose y abriéndose de una forma simétrica. En el caballo enfermo se pro duce un movimiento asincrónico y que tiene diversas graduaciones, como se indica en la tabla. Cuando se abren los cartílagos aritenoides se entra en la tráquea para comprobar el estado de la mucosa, esteno sis o presencia de pus o de sangre en los caballos de carreras de velocidad que sufren de hemorragia pulmonar inducida por el esfuerzo. Situándose en la tráquea se podría hacer un lavado broncoalveolar para obtener muestras para citología muy útil en el diagnóstico de la ORVR. Para ello, a nivel de la carina y a través del canal de biopsias del endoscopio se inyectan 100 mi de suero salino fisiológico para luego aspirarlo y enviar una muestra con EDTA al labora torio para el análisis citológico. Esta citología es más fácil de interpretar que la del aspirado transtraqueal.
Es una alternativa al lavado broncoalveolar. Se pre para un área en el tercio medio de la tráquea que se rasura y desinfecta. Después de administrar un anestésico local se hace una pequeña incisión en la piel con un bisturí y se inserta un catéter de 16G y 17 cm de longitud entre dos anillos traqueales.
Clasificación de
Clasificación de la hemorragia pulmonar
la hemiplejía laríngea
inducida por el ejercicio
Grado I
II
III
IV
Funcionalidad Abducción y aducción completa y sincrónica de ambos cartílagos aritenoides. Movimientos asincrónicos, menor aducción del aritenoides izquierdo, pero abducción completa en la deglución. Movimientos asincrónicos del aritenoides izquierdo sin producirse la aducción completa. Asimetría manifiesta de la laringe en reposo y falta de movimiento del aritenoides izquierdo.
Aspirado transt raqueal
Grado
Características
0
No hay sangre en vías respiratorias.
1
Hay 1-2 estrías de sangre que ocupan poca longitud y diámetro en la tráquea.
2
Restos de sangre que ocupa más de la mitad de largo de la tráquea, o varios rastros que ocupan menos de un tercio.
3
La sangre ocupa más de un tercio de diámetro de la tráquea.
4
La sangre cubre más del 90% de la superficie de la tráquea.
El enorme esfuerzo exigido en las carreras de caballos de velocidad hace que muchos de estos PSi (Pura Sangre Inglés) presenten hemorragia pulmonar inducida por el ejercicio.
Realización de un aspirado transtraqueal.
Se deja que el catéter avance hasta la carina y a continuación se administran 50 mi de suero salino fisiológico. Inmediatamente se aspira la muestra y se vierte en tubos con EDTA y sin aditivos para llevarlo a un laboratorio. La diferencia del líquido obtenido con lavado broncoalveolar se muestra en la tabla.
En el lavado broncoalveolar los fluidos que tengan un porcentaje del 5% de neutrófilos son sugestivos de ORVR, mientras que en los aspirados traqueales frecuentemente tiene que ser mayor al 90% de neu trófilos para considerarlo positivo.
Comparación entre ei l íquido obtenido con lavado transtraqueal y lavado broncoalveolar
Longitud endoscopio Sedación ¿La muestra recogida es representativa de todas las células de las vías aéreas? Calidad de las células obtenidas Ejercicio post-operación
Aspirado transtraqueal
Lavado broncoalveolar
Catéter 16G x 17 cm
160 cm
No
Sí No. Sólo se recoge muestra de una parte del pulmón Excelente Esperar 48 horas
Sí Variable Normal
Sistema cardiovascular
Exploración del sistema cardiovascular Inspección y palpación Percusión cardiaca Ausc ultac ió n Electrocardiografía Pruebas de resistencia Ecocardiografía Valoración del sistema vascular
El examen del corazón es una parte esencial dentro de la exploración clínica del caballo. Las manifestaciones clínicas de estas enfermedades son la intolerancia al ejercicio, debilidad, arritmias, coloración anormal de las mucosas, insuficiencia cardiaca congestiva y, en ocasiones, la muerte súbita. Debido a que en los caballos es frecuente hallarnos con soplos y arritmias cardiacas, a menudo es complicado diferenciar si lo encontrado se corresponde con una situación fisiológica o patológica. La información inicial comienza con una auscultación detallada y un electrocardiograma (ECG) y esto es en muchas ocasiones lo único que tiene el clínico para tomar una decisión en condiciones de campo. Otras téc nicas más avanzadas de exploración consisten en la ecocardiografía Doppler, la ECG con Holter y los tests de ejercicio funcionales que se pueden realizar en establecimientos de referencia. Debido al gran tamaño de los animales adultos, la radiografía del corazón carece de importancia.
Inspección y p alpación Además de apreciar la condición general del caballo hay que observar ambas yugulares y el pulso a la en trada del pecho con la cabeza a la altura de la cruz. Si el pulso se hace prominente y se extiende más allá del tercio inferior en el cuello suele estar asociado a insuficiencia de la válvula tricúspide o hipertrofia del ventrículo derecho. Si se observa sólo distensión de la yugular, sin pulso, es sugestivo de insuficiencia car diaca congestiva (ICC) derecha, de efusiones pericárdicas o calcificaciones de los vasos. Los edemas se aprecian a la altura del esternón, extendiéndose hacia atrás y es un signo frecuente en la ICC derecha. No hay que olvidarse de explorar el color de las mucosas, que deben ser rosadas y el tiempo de relleno capilar (TRC) menor de dos segundos. Un aumento de este tiempo suele indicar insuficiencia vascular periférica.
Adelantando la extremidad izquierda se puede apreciar el choque de la punta del corazón en animales jóvenes y delgados.
La palpación ofrece poca información y se centra en la exploración de la región precordial. Adelantare mos la extremidad anterior izquierda para apreciar y palpar el choque de la punta del corazón en animales muy delgados o en potros neonatos. Es posible pal parlo tras momentos de esfuerzo, en casos de hiper trofia cardiaca o de anemia grave. Yegua con ICC
Edema ventral e ingurgitación de la vena yugular.
Percusión cardiaca Actualmente tiene poco interés y ha sido desplazada por otras técnicas de exploración. Se adelanta la extremidad izquierda y con el martillo y el plesíme tro percutiremos de un modo radial desde la punta del codo. Primero se escucha una zona mate, es el
músculo cardíaco, y después una zona submate de bido a que es la zona del pulmón que cubre el co razón. En los équidos el área mate puede aparecer incrementada como consecuencia de una hipertrofia o dilatación cardiaca.
Para la percusión cardiaca el martillo ha de incidir perpendicularmente sobre el plesímetro.
Zona de percusión cardiaca de los équidos.
Auscultació n Es la base de la exploración cardiaca y se debe rea lizar antes de cualquier otra técnica. Permite detec tar los sonidos normales y también otros como los soplos cardiacos. En condiciones normales no hay ninguna dificultad en auscultar el corazón, pero la in tensidad puede disminuir por un excesivo desarrollo muscular, obesidad, pelo muy denso o presencia de fluidos en el saco pericárdico o en el tórax. Para auscultar bien al caballo conviene estar en un ambiente relajado y sin ruidos que nos distraigan, con el animal tranquilo. La campana del fonendoscopio se coloca entre el 3o y 5o espacio intercostal izquierdo para auscultar el sonido de las válvulas pulmonar, aór tica y mitral.
Un fonendoscopio y un reloj con segundero son la base de la exploración cardiaca.
Se escuchan dos tonos cardiacos: el primer tono (sistólico) (S1) se debe al cierre de las válvulas auriculoventriculares mitral y tricúspide cuando se contraen los ventrículos. Este tono es más largo y duradero que S2. Después viene un pequeño espacio de tiempo para continuar con el segundo tono (S2) (diastólico), de relajación de los ventrículos, menos intenso produ cido por el cierre de las válvulas semilunares pulmonar y aórtica. El ciclo continúa con un silencio más pro longado antes de comenzar un nuevo ciclo cardiaco. En ocasiones, en los caballos atléticos es posible aus cultar un sonido S3 opaco, sordo, justo después de S2 al final del comienzo del llenado de sangre de los ventrículos. Un cuarto sonido S4, a menudo conocido como “A” de contracción auricular, se produce justo antes que S1, puede ser difícil de diferenciarlo, se escucha al final de la diástole y marca la contracción atríal. Estos sonidos cardiacos suenan como una su cesión de lub-dup, lub-dup,...
Auscultación de las válvulas pulmonar, aórtica y mitral del corazón por el lado izquierdo.
La válvula tricúspide se ausculta por el lado derecho en el 4o espacio intercostal.
Representación esquemática de los sonidos cardiacos lub
lub
dup
b
I
I d
A
| S1
| S2
sístole
|
S3
diástole
dup
b
I
I d
A
| S1
■ S2
S3
sístole
A = S4
Frecuencia cardiaca Es el primer factor que debemos evaluar. Los caba llos presentan una frecuencia cardiaca baja en com paración con otras especies domésticas, estando el intervalo normal entre 24 y 40 latidos por minuto. Un aumento de la frecuencia cardiaca (taquicardia) se considera cuando la frecuencia cardiaca se sitúa por encima de 50 ppm. Esta situación se puede deber a una grave disminución del volumen de sangre (el corazón no bombea suficiente cantidad de sangre por latido) y aumenta su frecuencia para mantener el gasto cardiaco. En potros estas frecuencias son muy amplias y pueden variar de 80 hasta 240 ppm.
Ritmo Areas de auscultación cardiaca
Áreas de auscultación cardíaca vistas desde el lado izquierdo (A) y derecho (B).
El ciclo cardiaco tiene su origen en el nodulo sinusal. Desde aquí se transmite a la aurícula, se contrae y se produce la sístole auricular. El nodulo auriculoventricular recoge el impulso de la despolarización del músculo de la aurícula y lo conduce a los múscu los ventriculares por el fascículo de His y la red de Purkinje, produciéndose la sístole ventricular. Las alteraciones del ritmo cardiaco se dividen en dos: • Bloq ueos: se producen por la interrupción del impulso cardiaco. La arritmia más frecuente del caballo es el bloqueo auriculoventricular (AV) de segundo grado. • Arritm ias: son alteraciones del ritmo cardiaco y se producen por alteraciones en la formación o propagación de los impulsos del sistema nervioso autónomo. Las arritmias más frecuentes en équidos son: Bloqueo AV de segundo grado: hasta un 20% de los caballos en reposo lo presentan y se debe al alto tono vagal de los caballos en reposo. A la auscultación se aprecia que un latido se pierde, la frecuencia es lenta. Desaparece cuando el caba llo es sometido a esfuerzo o al aumentar el tono simpático que se produce durante la excitación. En general, no tiene significado patológico. Arritmia sinusal: está mediado por el nervio vago y se pueden presentar bradicardias en casos de vagotonías como el bloqueo AV de primer grado, pero lo más común son las ta quicardias sinusales que aparecen en estados de ansiedad, dolor, anemia, fiebre o shock.
Bloqueo AV de tercer grado: se produce cuando el impulso sinusal no puede pasar a tra vés del nodulo AV, por lo que los tejidos distales a este punto toman el papel de un marcapasos. Esta arritmia se considera patológica. Los caba llos presentan bradicardia y ésta no se corrige significativamente incrementando el ejercicio. Complejo prematuro atrial (CPA): se produce por la formación de un impulso anormal en la aurícula. La aparición de frecuentes CPAs in dica enfermedad miocárdica, desequilibrios electrolíticos, toxemia, septicemia, hipoxia o valvulopatía AV crónica. A la auscultación se reconoce porque hay un intervalo diastólico corto, generalmente sin pausa compensatoria. Taquicardia auricular: tiene una frecuencia alta y por lo común un ritmo regular. Puede ser paroxística o sostenida. Se origina porque un punto de la aurícula produce impulsos de forma rápida. Aparece en situaciones de intoxi caciones, simpaticotonías, hipertiroidísmo, etc. Fibrilación auricular: es el tipo de arritmias que más repercute en el rendimiento de los caballos
de deporte. Se puede confundir con un bloqueo AV de segundo grado, ya que se pueden pro ducir pausas prolongadas en los dos tipos de arritmias. Se debe a múltiples impulsos que se originan en la aurícula pero que no se transmiten a los ventrículos. A la auscultación se aprecia un ritmo irregular con una frecuencia normal, ele vada o disminuida, con pausas cortas o prolon gadas al azar. Estas pausas pueden ser de hasta ocho segundos seguidas por unas ráfagas de latidos de forma periódica. En esta arritmia no se escucha el componente S4 del ciclo cardiaco, a diferencia del bloqueo AV de segundo grado en el que sí está presente. No hay un ritmo regular, por lo que el ritmo es “irregularmente irregular”. Esta arritmia se puede acompañar o no de una enfermedad cardiaca subyacente. Complejo ventricular prematuro (CVP): se debe a la formación de un impulso en el músculo ventricular. La presencia de un CVP no tiene más significado patológico, pero si se acompaña de taquicardia o signos de ICC sí que es importante. A la auscultación se reconoce porque un ritmo
Representación esquemática del sistema de conducción cardiaca y su registro en el ECG
A) El latido comienza en el marcapasos situado en la aurícula derecha extendiéndose por todo el atrio, representado por la onda P; B) La conducción se retrasa en el nodulo AV, registrado como intervalo P-R; C) La onda de despolarización continúa por el haz de His y la red de Purkinje, siendo el complejo QRS del ECG. La repolarización ventricular viene representado por la onda T.
regular es interrumpido por un latido que ocurre más pronto de lo común. En la mayoría de los ca sos está seguido por una pausa prolongada. Taquicardia ventricular: ocurre cuando apare cen cuatro o más CVP. Pueden ser paroxísticos o sostenidos. Se escuchan a un ritmo rápido que es regular, pero si se produce una taquicar dia paroxística entonces se aprecia irregular. Fibrilación ventricular: es un evento terminal en el cual se producen despolarizaciones ventriculares no organizadas. El caballo entra en colapso, no puede tomarse el pulso y los lati dos no se escuchan claramente.
Soplos cardiacos Son sonidos con una duración superior al de los so nidos cardiacos y se escuchan durante el periodo de silencio del ciclo cardiaco. Los soplos se originan por las turbulencias del flujo de la sangre y se transmiten a la superficie corporal. Los que se relacionan con enfermedades cardiacas se denominan orgánicos,
Graduación de la intensidad de los soplos cardiacos en el caballo
1/6 Soplo casi imperceptible en un área pequeña de la pared costal. Soplo tenue audible después de unos pocos segundos 2/6 de auscultación. Soplo claramente audible al comienzo de la auscultación 3/6 y que puede irradiar en un área grande de la pared costal. 4/6 Igual que 3/6 y acompañado de frémitos. Soplo muy fuerte que se aprecia con apenas poner el fonendos copio en la pared costal. Se acompaña de frémitos precordial. Soplo muy fuerte que se escucha incluso cuando el fonendos 6/6 copio no está en contacto con la pared costal. Se acompaña de frémitos. 5/6
Causas de bradicardia y taquicardia en équidos
Bradicardia
Taquicardia
Bloqueo AV de segundo grado: fisiológico. Bradicardia sinusal. Bloqueo AV de tercer grado: patológico. T. sinusal: > 50 ppm, en ejercicio, miedo, ansiedad, shock, ICC. T. supraventricular (TSV): miocarditis, hipertrofia auricular, fibrilación auricular. T. ventricular fTV): miocarditis, septicemia, toxemia, intoxicación por quinidina.
mientras que los que se originan sin enfermedad car diaca se llaman funcionales, que suelen ser de corta duración e intensidad grado 1-2.
SopDos sistóSicos Se producen durante las contracciones de los ventrí culos, entre S1 y S2. Si acaban antes que el sonido S2 se trata de soplos de eyección y estos son comunes en los caballos y no suelen ser patológicos. Se escu chan mejor en la base del corazón, en las áreas de las válvulas aórtica y pulmonar. En ocasiones se escucha un soplo sistólico de grado 3/6 en el área de la válvula tricúspide. Estos soplos pueden desarrollarse durante una anemia grave, en la gestación o el cólico, pero suelen desaparecen cuando el caballo se recupera. Soplos diastólicos Se producen en la diástole entre el S2 de un latido y el S1 del siguiente. La mayoría se aprecian entre el inicio o el final de la diástole y menos frecuente es que ocupen toda la diástole. Pueden ser soplos de regurgitación por una apertura incompleta de las vál vulas aórtica y pulmonar, comunes en caballos viejos, o bien soplos debido al llenado de los ventrículos. Soplos cootinyos Empiezan en el S1 de un latido y llegan al S1 del si guiente. Esto es común en potros con conducto ar terioso permanente. En los casos de anemia grave se puede escuchar este soplo sobre la yugular, a la entrada del pecho.
Sitio de máxima intensidad y radiación del latido Esto ayuda a localizar el origen del soplo. Los so plos aórticos se escuchan en la base del corazón y se irradian por el cuello, gotera de la yugular y en ocasiones hasta la base de la oreja. El soplo sistólico por estenosis de la válvula pulmonar se escucha más fuerte en la base del corazón.
Frémito Es una vibración palpable que acompaña a un so plo intenso. Se puede sentir al colocar la palma de la mano en la pared torácica. Este sitio suele coincidir con el punto de máxima intensidad y tiene una signi ficación patológica.
Electrocardiografía Se trata de un método diagnóstico que permite la detección de trastornos de la conducción cardiaca. Su principal aplicación en el caballo es el diagnóstico de arritmias cardiacas. A diferencia de lo que ocurre en pequeños animales, el electrocardiograma (ECG) no es útil para la valoración del tamaño de las cáma ras cardiacas debido a que la despolarización entra en el músculo ventricular a través de la extensa red de Purkinje, lo que implica que la amplitud del com plejo QRS no se relaciona con su tamaño. La forma más sencilla de obtener un ECG en un caballo es utilizando el sistema base-ápex que ori gina un registro fácil de leer e interpretar. Para ello el electrodo negativo (rojo) se coloca en el tercio infe rior de la gotera yugular derecha, el electrodo posi tivo (verde) en el 5o espacio intercostal izquierdo y el electrodo neutro (negro) se sujeta en un punto ale jado del corazón, como es la espalda. No obstante, la posición precisa no es fundamental para obtener el registro. Sí que es importante mantener al caba llo en estación, que no se mueva, que esté tranquilo, pero sin administrar tranquilizantes. En ocasiones, la humedad de los cascos puede ser un problema ori ginando la presencia de artefactos. Para evitar este inconveniente, se puede poner al caballo un tiempo sobre un lecho de serrín para eliminar el exceso de humedad. Si el animal tiene el pelo largo, se separa
Electrocardiógrafo. Con modelos sencillos, monocales, se pueden tomar ECG en condiciones de campo.
con los dedos, se limpia con alcohol y se coloca gel de ecografía para colocar la pinza de cocodrilo de los electrodos. Las condiciones del aparato son: deriva ción II, 25 mm/s, 1mV=10 mm. En condiciones normales, en unos pocos segun dos se obtiene el ECG. El artefacto más común es el movimiento del caballo, que hace que la línea me dia se desplace mucho. A veces, el registro es malo debido al pobre contacto eléctrico de los electrodos con la piel. En este caso, asegurarse de que la pinza contacte con la piel o bien rasurar el pelo para tener mejor acceso a la piel.
Interpretación del ECG A la velocidad de 25 mm/s cada pequeño cuadradito supone 0,04 segundos. Lo primero que hay que ha cer es calcular la frecuencia cardiaca contando el nú mero de complejos QRS en un tiempo dado. Valorar si el ritmo es regular o no. Para ello nos fijaremos en la distancia de los intervalos R-R.
Análi sis de las ondas Onda P Es la primera onda del ECG. Representa la despola rización auricular. La morfología es variable y puede estar dividida (bífida) o presentar dos deflexiones se paradas (bifásica). Es una onda positiva.
Colocación de los electrodos en el sistema base-apex: electrodo negativo en el tercio inferior de la gotera yugular derecha, el electrodo positivo en el 5oespacio intercostal izquierdo y el electrodo neutro en la espalda.
Duración de las ondas del ECG del caballo en el sistema base -ápex a 25 mm/ s
Duración (s)
N° de cuadrados pequeños
Onda P ___________ < 0,16 ________________ <4 __________ Intervalo P-R <0,5 12,5
La auscultación del corazón con un fonendoscopio que registra los sonidos nos sirve para indicarnos la frecuencia cardiaca y para analizar en el ordenador la presencia de soplos cardiacos.
Complejo QRS ______ < 0,14 ________________ 3J5 __________ Intervalo QT <0,6 15
ECG normal de una burra. Se aprecia el ritmo regular a 38 latidos por minuto, onda P bífida.
Deflexiones de las ondas de los équidos en el sistema ba se-apex.
Taquicardia sinusal (60 Ipm). El ritmo es regular y se puede de ber a miedo, excitación, ejercicio o dolor.
Complejo QRS Es la onda más grande de todas, de 3-4 mV, y re presenta la despolarización ventricular. Comienza con una pequeña onda positiva y después una gran deflexión negativa.
Onda T Sigue al complejo QRS y representa la repolarización ventricular. Es muy variable de tamaño y de orienta ción, por lo que no se puede utilizar como indicador de enfermedad cardiaca o alteraciones de los electrolitos.
Fonocardiograma de un caballo con un ritmo sinusal. Los dos tonos más próximos corresponden a la sístole y el espacio más grande a la diástole.
Fonocardiograma de un potro en la que se aprecia taquicardia propia de animales jóvenes.
La radiotelemetría transmite la señal del ECG a una terminal y sirve para detectar arritmias que se pre sentan durante el ejercicio y que puede explicar un bajo rendimiento atlético en un caballo de deporte. La electrocardiografía continua ambulatoria [Holter) consiste en un dispositivo que recoge todo el registro en el transcurso de 24 horas. La fonocardiografía permite la representación grá fica de los tonos y soplos cardiacos. Se registra con un fonendoscopio que permite grabar el sonido para después analizarlo en un ordenador.
Pruebas de resist encia La exploración de los caballos después del ejercicio forma parte del examen precompra y se debería rea lizar como parte de la evaluación clínica cuando se sospecha de enfermedad cardiaca. En general, es mejor examinar a los caballos cuando están monta dos por un jinete y no cuando se les da cuerda. Lo primero que se hace es auscultar el corazón después de un ejercicio submáximo y luego otra vez cuando ya han alcanzado el nivel máximo de ejercicio.
Pruebas de resistencia y arritmias Se valora si persisten las arritmias y si éstas han sido de origen vagal (bloqueo AV de segundo grado, bradicardia sinusal) suelen desaparecer. También se pueden presentar arritmias a consecuencia de un ejercicio intenso, las cuales no se detectan en re poso. A continuación, realizar un ECG para examinar con más exactitud la arritmia.
Soplos cardi acos y ejerci cio Algunos soplos que se oyen en reposo, como los de eyección de las válvulas semilunares, no se aprecian después del ejercicio y, en caso contrario, se pueden escuchar soplos cardiacos justo después del ejerci cio. Cuando se ausculta en estas condiciones, hay que prestar especial atención para diferenciarlo de sonidos extraños o de sonidos respiratorios.
Recuperación después del ejercicio El retorno de la frecuencia cardiaca de reposo des pués del ejercicio puede sen/ir para valorar una enfer medad cardiaca en el caballo. Depende de muchas variables, pero por lo común la frecuencia cardiaca retorna dentro del 10% de lo normal a los 15 minutos después de un ejercicio moderado o a los 30 minu tos si el ejercicio ha sido intenso.
Uso de cintas rodantes Estas cintas permiten graduar la intensidad del ejer cicio controlando la velocidad y la inclinación de la plataforma. Generalmente se monitoriza la frecuencia cardiaca y se hace un ECG.
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Caballo en una cinta rodante.
Para evaluar la resistencia y el rendimiento en los caballos es mejor hacerlo con el jinete montado y n o a la cuerda.
Ecocardiografía La ecocardiografía es una técnica no invasiva que permite visualizar las estructuras intracardiacas. Es esencial en el diagnóstico de soplos asociados a de fectos cardiacos congénitos y derrames pericárdicos. En la ecografía Doppler, los ultrasonidos se reflejan en las células sanguíneas permitiendo calcular la velocidad y la dirección del flujo de sangre. Algunos modelos elaboran una imagen en color. Este método es especialmente útil para identificar las regurgitacio nes valvulares. En el examen ecocardiográfico en modo B se obtienen imágenes bidimensionales del plano ecografiado para estudiar los movimientos de las es tructuras del corazón. En este método es impor tante conseguir la máxima perpendicularidad entre el transductor y corazón. En el modo M se obtiene una imagen monodimensional del movimiento del corazón.
Para realizar una ecocardiografía con éxito hace falta un equipo con sondas de 2,5-3,5 MHz si vamos a examinar a un animal adulto. Si tenemos un potro o un poni con una sonda de 5 MHz alcanzaremos el corazón y obtendremos una mejor imagen. Las indicaciones de una ecocardiografía son: • Cuando se detecta un soplo que no sea funcional (de origen valvular o congénito). • Cuando se detectan arritmias. • Los sonidos del corazón se escuchan apagados. • Se aprecian signos clínícos de insuficiencia car diaca congestiva. • Caballos con fiebre de origen desconocido. • Caballos que disminuyen su rendimiento deportivo sin causa aparente.
La ecocardiografía permite a los veterinarios estudiar el corazón de los atletas que presentan bajo rendimiento deportivo.
Valoración del sistem a vascular Pulso arterial El pulso arterial está formado por la onda de presión sistólica que comienza en el corazón y viaja por las arterias hasta llegar a los capilares. Como todo el sis tema arterial está lleno de sangre, la sístole impulsa más sangre al sistema arterial notándose el pulso. Se trata de un indicador indirecto de la frecuencia car diaca. En los équidos, los lugares de elección para tomar el pulso son la arteria maxilar situando los de dos en el canal exterior de la mandíbula y la arteria temporal por encima del arco cigomático. También es posible en las arterias metacarpianas y metatarsianas en el hueco que hay entre la caña y los ten dones. En algunos animales también se aprecia en la arteria coccígea situada en la cara ventral de la cola. La frecuencia del pulso es el número de pulsa ciones (contracciones ventriculares) por minuto. En los caballos se sitúa en el intervalo 24-40 ppm. Los potros pueden tener hasta un 50% superior de pul saciones y aún más los animales recién nacidos. Se puede notar un pulso doble en las insuficiencias o es tenosis de la válvula aórtica. Sin embargo, un pulso dicrótico en los que se aprecia un primer pulso más fuerte que el segundo se puede encontrar en caba llos con frecuencias muy bajas. Las cualidades que se aprecian en el pulso son: • Fuerza del pulso: indica el choque máximo sis tólico. Un pulso fuerte indica una buena capaci dad de contracción del corazón y de elasticidad de las arterias. Lo presentan los caballos de com petición. Un pulso débil se debe a la debilidad cardiaca (hiposistolia) en la insuficiencia cardiaca izquierda o porque llega poca sangre al corazón (hemorragia, shock). • Am plitud del pulso: refleja el volumen de san gre que sale del ventrículo en cada sístole ventri cular. Podemos encontrarlo con un pulso amplio que aparece en los casos de hipertrofia cardiaca, mientras que un pulso pequeño indica vasocons tricción que se palpa en estados de ansiedad o estenosis de las válvulas cardiacas.
Punción arterial y análisis de gases sanguíneos La punción arterial está indicada en los análisis de gases sanguíneos para valorar el estado metabólíco
Puntos habituales donde se toma el pulso en el caballo, en la arteria maxilar y arteria temporal.
y respiratorio del caballo. Se utiliza la arteria carótida accesible desde el tercio inferior del cuello. Con una aguja de 20-25G se busca el pulso de la arteria carótida en la gotera de la yugular que se sitúa inmediatamente profunda a la vena yugular. Cuando se punciona la arteria, obtendremos rápidamente un flujo de sangre roja brillante en el cono de la aguja. Unir la jeringa, que llevará heparina de Na como an ticoagulante, y aspirar la muestra. Para el análisis de gases, retirar cualquier resto de aire de la jeringa y realizar el análisis lo antes posible o bien, guardar la muestra heparinizada en hielo picado. Se puede obtener sangre arterial de otros sitios como la arteria facial, arteria metatarsíana dorsal, ar teria transversa y arteria braquial recomendable en el caso de los potros.
Capilares
Venas y pulso venoso
Son tubos muy finos por los que discurre tan sólo una fila de eritrocitos. Estos pequeños vasos funcio nan como una membrana por la cual pasan agua, oxígeno y sustancias nutritivas. Clínicamente tienen importancia para la valoración del tiempo de relleno capilar (TRC). Para ello se aplica presión sobre las en cías hasta que ésta se vuelve blanca. Al levantar el dedo, se cuentan mentalmente los segundos trans curridos para que se recupere el color normal. Si la perfusión sanguínea es óptima, este tiempo es me nor de dos segundos. La prolongación del TRC es un indicador de deshidratación, shock o enfermedad vascular periférica.
Las venas más fáciles de explorar son las yugulares que se encuentran a la entrada del pecho. La inspec ción y palpación de estas venas se utiliza para valorar la función cardiaca. Cuando se encuentra aumen tado de tamaño es un signo de ICC derecha, origi nado por una insuficiencia de las válvulas tricúspide, cardiomiopatías o miocarditis. A la entrada del pecho se puede observar el “pulso yugular" cuando la cabeza del caballo se si túa la altura de la cruz. Se trata de un reflejo de la actividad cardiaca derecha. Es normal observarlo en animales sin ninguna patología, pero este pulso no debe sobrepasar un tercio de distancia desde la base del pecho. Los pulsos anómalos se producen cuando aumentan la resistencia al llenado ventricular derecho. El pulso venoso puede ser positivo o ne gativo. El negativo se produce por la sístole auricular y no coincide con el pulso arterial. Sin embargo, el pulso yugular positivo coincide con el arterial y con la sístole ventricular. Para comprobarlo, a la vez que observamos el pulso en la base del cuello, tomamos el pulso arterial en la arteria maxilar de la cabeza; si coinciden los dos pulsos es patológico y es indicativo de un aumento de la presión venosa central, ICC de recha o insuficiencia de la válvula tricúspide,
Comprobación del pulso arterial en la mandíbula y observación del pulso yugular en la base del pecho.
Realización del TRC en la mucosa gingival de un caballo.
Punción venosa y análisis de sangre
Vasos para la extr acción de sangre venosa y arterial en el caballo
La utilización de los análisis de sangre en los équidos es un apoyo importante y, en muchas ocasiones, esencial para llegar al diagnóstico de las enfermeda des. Muchas de estas pruebas requieren de sangre entera o bien sin anticoagulantes para la obtención de suero. La vena de elección para obtener sangre es la yugular, situada en la gotera de la yugular. El lugar para la punción se localiza entre el primer y segundo tercio medio del cuello. Para ello se presiona la base del cue llo para ingurgitar la yugular y se introduce la aguja con un ángulo de 45° respecto a la vena. De este modo se obtiene fácilmente la sangre utilizando aguja de 2025G o bien mediante tubos de vacío.
Extracción de sangre mediante aguja y jeringa.
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Otras venas que se utilizan es la vena facial trans versa situada en la cabeza, pero sólo para recoger muestras de sangre muy pequeñas. También se puede recurrir a la vena torácica superficial, vena ce fálica y vena safena medial. Las complicaciones que se obtienen a menudo son hematomas cuando se utiliza una aguja muy gruesa o se traumatiza mucho el vaso. Esto se puede minimizar levantando la ca beza y aplicando una presión directa sobre el lugar de la venopuncíón.
Tipos de muestras sanguíneas
Sangre Se recoge con anticoagulantes y se destinan al es tudio hematológico, la investigación de parásitos herméticos o la realización de hemocultivos. Las muestras recogidas con heparina se utilizan para de terminaciones de gases sanguíneos.
Suero El suero es la muestra de elección para la determi nación de pruebas bioquímicas y hormonales, y para la determinación de anticuerpos. Se obtiene tras la coagulación de la sangre y retracción del coágulo. Para obtenerlo, dejar el tubo durante 1-2 horas a temperatura ambiente para que se forme el coágulo. A continuación, se despega el coágulo de las pare des y se centrifuga a 3.000 rpm durante 10 minutos.
Extracción de sangre
Distintos tipos de tubos con o sin aditivos para la obtención de sangre.
La utilización de tubos de vacío favorece y ayuda la toma de sangre cuando se requieren varios tipos de muestras.
El suero se trasvasa a otro tubo limpio. Si no se va a analizar inmediatamente, lo mejor es congelar la muestra a -20 °C hasta su análisis. Hay que tener en cuenta que los sueros muy hemolizados o lipémicos interfieren en muchas determinaciones, especial mente en la actividad de diferentes enzimas. Plasma Se obtiene después de centrifugar la sangre recogida con un anticoagulante. Se recomienda separarlo de los eritrocitos lo antes posible para evitar la hemolisis, detener el consumo de glucosa y evitar la produc ción de lactato. Tiene los mismos componentes que
Lo mejor es trasvasar el suero a otro tubo o vial de plástico para enviarlo al laboratorio.
abundancia de fibrinogeno en la sangre de los caballos hace que en ocasiones el suero se coagule con temperaturas frías.
el suero, pero además presenta fibrinogeno. Para obtenerlo adecuadamente, se centrifuga la muestra de sangre a 3.000 rpm durante 10 minutos, se tras vasa el plasma a un tubo y, si no es posible el análi sis inmediato, se congela la muestra a -20 °C hasta su procesado. Las muestras de plasma, preferible mente heparinizado, se utilizan para determinaciones bioquímicas y hormonales y las de plasma citratado para pruebas de coagulación.
Análi sis li ematoDógi co Serie roja El análisis elemental de la serie roja incluye el número de glóbulos rojos, valor hematocrito y concentración de hemoglobina. Los modernos laboratorios de aná lisis suelen realizar estas determinaciones con unos aparatos denominados contadores celulares. Los re sultados que ofrecen son más rápidos y fiables que los de los métodos manuales. Hay dos tipos de sis temas: los semiautomáticos, que requieren la realiza ción de una preparación previa de la muestra (gene ralmente dilución), y los totalmente automáticos que realizan todas las operaciones necesarias. Para hallar el valor hematocrito se puede hacer con métodos semiautomáticos o mediante centrífu gas de microhematocrito. El valor hematocrito indica la relación entre el volumen de los eritrocitos y el de sangre total. Se define como el volumen ocupado por los eritrocitos contenidos en 100 mi de sangre y se ex presa en porcentaje (%) respecto al volumen de san gre total. El valor hematocrito proporciona una amplia información. Así, la disminución del hematocrito es in dicativa de anemia, el aumento se debe a deshidratación o eritrocitosis. Los cambios en el color del plasma
Después de centrifugar los capilares se observa la columna de plasma y el volumen de los eritrocitos. En los caballos es normal un color ligeramente amarillento del plasma.
permiten identificar ictericia (coloración amarillenta), lipemia (aspecto lechoso) o hemolisis (color rojizo). La concentración de hemoglobina se calcula habitualmente por medio de reacciones colorimétricas mediante los diferentes analizadores hematológicos automáticos. Se expresa en g/dl, su disminución indica la presencia de anemia y su aumento se debe a deshidratación o eritrocitosis.
Los modern os contadores celulares para veterinaria permiten realizar los análisis hematológicos para cada especie.
índices eritrocitarios El recuento de eritrocitos, la concentración de hemo globina y el valor hematocrito se relacionan entre sí mediante los llamados índices eritrocitarios, los cua les son de utilidad en el diagnóstico de las anemias. • Volumen corpuscu lar medio (VCM): es la me dida del tamaño de los eritrocitos y representa el volumen medio de un glóbulo rojo aislado. Hematocrito x 10 VCM (fl)
= -------------------------------------------n° eritrocitos
• Hemoglobina corpuscular media (HCM): es el contenido medio de hemoglobina en un glóbulo rojo. Concentración de hemoglobina x 10 HCM (pg) = ----------------------------------------------n° eritrocitos • Concentración media de hemoglobina corpus cular (CMHC): es la cantidad o porcentaje de he moglobina en 100 mi de glóbulos rojos. CMHC
Concentración de hemoglobina x 100
( /o o g/dl)
hematocrito
Serie blanca
Extensión de una capa fina de sangre. Se consigue arrastrando de manera suave y continuada una muestra de sangre con un porta sobre otro.
Serie blanca El recuento diferencial o fórmula leucocítaría per mite cuantificar cada uno de los tipos de glóbulos blancos existentes en la sangre, es decir, linfocitos, monocitos, neutrófilos, eosinófilos y basófilos. La fórmula leucocitaria se determina diferenciando y contando un número de leucocitos (100-200) en un frotis o extensión sanguínea teñida sobre un portaobjetos. Para realizar el frotis o extensión sanguínea se co loca una gota de sangre en uno de los extremos del portaobjetos. Se toma otro portaobjetos y se coloca sobre el primero formando un ángulo de unos 3045°, de manera que el borde contacte con la gota de sangre y esta se distribuya por dicho borde por capilaridad. A continuación se desplaza el segundo portaobjetos de manera rápida, suave y continuada, arrastrando y así extendiendo la gota de sangre so bre el primer portaobjetos. Es preciso que las ex tensiones sean finas y homogéneas, para evitar que aparezcan amontonados los eritrocitos y tapen a los leucocitos haciendo imposible su identificación. Una vez secada al aire la extensión, se procede a su tinción. Para realizar el recuento al MO debe seguirse un recorrido en vaivén por los bordes de la extensión de un extremo a otro de la misma ya que los leucocitos tienden a colocarse en la periferia del frotis. A medida que se van encontrando leucocitos, hay que identi ficar a qué tipo pertenecen y anotarlo. Se recorre la preparación hasta haber identificado un mínimo de 100 leucocitos (preferiblemente 200) y se calcula el porcentaje de cada uno de ellos: 100 x n° de cada tipo de leucocito Porcentaje = ----------------------------------------------n° total de leucocitos contados
A partir del porcentaje podremos calcular el nú mero absoluto de cada clase de leucocitos cono ciendo el recuento de glóbulos blancos totales:
A continuación se tiñe mediante un método de tinción rápida.
% x n° leucocitos totales N° absoluto = -------------------------------------------100
Tip os de tu bos para análisis de sangre
Color del tapón
Aditivo
Tipos de análisis
Rojo
Ninguno
Bioquímica clínica, anticuerpos, reacciones cruzadas
Violeta Verde Amarillo Azul
EDTA Na Heparina de Na Ácido cítrico dextrosado
Hematología completa Bioquímica clínica, gases sanguíneos Reacciones cruzadas, tipificación grupos sanguíneos
Citrato de Na
Estudios de coagulación
Gris
Fluoruros, oxalatos
Medición de glucosa
Cambios en la bioquímica sanguínea y el hemograma de algunas enfermedades cardiovasculares de los équidos
Enfermedad cardiovascular
Bioquímica sanguínea
Hemograma
Valvulopatías
í= AST, SDH, PT, globulinas, fibrinogeno, BUN, creatinina
GR, Hto f= GB, neutrófilos
Miocarditis, miocardiopatías
í= CK, AST, LDH, BUN, creatinina
U = GB,
Pericarditis
T= AST, SDH, PT, globulinas, fibrinogeno 1= Na, Cl
T= GB, neutrófilos
Enfermedades congénitas
í= AST, SDH, BUN, creatinina
T= GR, Hto
Vasculitis
T= CK, AST, PT, globulinas, fibrinogeno, BUN, creatinina J.= PT, albúmina
i= GR, Hto, GB, linfocitos, plaquetas T= GB, neutrófilos
neutrófilos
t aumento del nivel; i disminución del nivel; = nivel igual AST= aspartato aminotransferasa, CK= creatinin quinasa, SDH= sorbitol deshidrogenasa, PT= proteínas totales, BUN= nitrógeno ureico en sangre, GR= glóbulos rojos, GB= glóbulos blancos, Hto= hematocrito.
Intervalos de referencia en hematología equina
Parámetro
Caballo
Potro nacimiento
Potro > 7 días
Glóbulos rojos (1OVpl)
6,8-12,9
9-13
7,5-10,5
Hemoglobina (g/dl) Hematocrito (%) VCM (fl)
11-19 32-53 37-58,5 31-38,6
12-18 40-52
11,5-17,5 31-40
-
-
-
-
-
-
5,5-11,5 1,8-3
7-12 2-4
-
-
3,5-10
7-10
CMHC (g/dl) HCM (pg) Leucocitos (103/pl) Linfocitos (1 OVpl) Monocitos (103/|jl) Neutrófilos (103/[jl) Eosinófilos (103/pl) Basófilos (10'J/|jl) Plaquetas (1CP/pl)
12-18 5,4-14,3 1,5-7,7 0-1 2,3-8,6 0-1 0-0,29
-
-
-
-
100-350
100-250
100-400
Valores de referencia de bioquímica clínica en caballos adultos
Parámetro Ácidos biliares Alanino amonitransferasa (ALT) Amilasa Amoniaco Arginasa Aspartato aminotransferasa (AST) Bilirrubina conjugada Bilirrubina total BUN Calcio Cloro Colesterol Cortisol
Valores normales 5-15 pmol/l
Parámetros
Valores normales 7,32-7,44
3-23 Ul/I 75-150 Ul/I
pH (venosa y arterial) pCO?
38-46 mm Hg
13-108 pg/dl 0-14 Ul/I
pO? Bicarbonato Anión gap
34-50 mm Hg 20-34 mEq/l
226-336 Ul/I 0-0,4 mg/dl 1-2 mg/dl 10-24 mg/dl 11,2-13,6 mg/dl 99-109 mEq/l 75-150 mg/dl 36-81 mmol/l 119-287 Ul/I
Creatinin quinasa (CK) Creatinina Fosfatasa alcalina (FA)
0,9-1,9 mg/dl 138-251 Ul/I
Fósforo Gamma glutamiltransferasa (GGT)
3,1-5,6 mg/dl 4-44 Ul/I
Glucosa
75-115 mg/dl
Glutamato deshidrogenasa (GLDH) Lactato deshidrogenasa (LDH) Potasio
0-11,8 Ul/I 162-412 Ul/I
Selenio Sodio Sorbitol deshidrogenasa (SDH) Triglicéridos
Valores normales de parámetros que intervienen en el equilibri o ácido-base de los caballos adultos
2,4-4,7 mEq/l 15-25 mg/dl 132-147 mEq/l 1,9-5,8 Ul/I 4-44 mg/dl
Exceso de bases Lactato
10 mEq/l 1-10 mEq/l 10-16 mg/dl
Valores de proteínas sanguíneas y sus fracciones en el caballo adulto
Valores normales
Parámetro
52-70 g/l 26-37 g/l
Proteínas totales Albúmina Globulinas
26-40,4 g/l 0,6-7 g/l
Alfal -globulinas Alfa2-globulinas
3,1-13,1 g/l
Betal -globulinas Beta2-globulinas Gamma-globulinas Relación albúmina/globulinas (A/G) Fibrinogeno
Determinación de proteínas totales mediante reíractometría. Lo primero es colocar unas gotas de suero sobre el reíractómetro y a continuación se mide su valor.
4-15,8 g/l 2,9-8,9 g/l 5,5-19 g/l 0,62-1,46 1-4 g/l
Electroforesis
HYDRAGEL 7 pi -fi2
La separación por electroforesis de las proteínas sanguíneas permite el estudio de la albúmina y las globulinas para la investigación de posibles disproteinemias.
A p ar at o dig es tiv o
Exploración del Exploración de la boca Exploración de la faringe Exploración del esófago Exploración del estómago Exploración de la cavidad abdo minal Exploración del hígado Anam nesis e h isto ria c lín ica
El caballo es un animal monogástrico herbívoro ca racterizado por su especial capacidad para aprove char y digerir grandes cantidades de fibra vegetal, siendo junto con la cabra uno de los pocos animales que pueden digerir la lignina contenida en las partes más bastas de las plantas. La capacidad de ingestión de un caballo en con diciones naturales es casi constante ya que dedican de 12 a 14 horas al día a pastar al mismo tiempo que avanzan en su marcha sobre el pasto. Su dieta es
muy variada y rica en gramíneas y leguminosas, pero no les aporta muchas calorías. El proceso de domesticación ha implicado la intro ducción del caballo en cuadras, donde sus movimien tos se han limitado y se les ha ofrecido de comer dos a tres veces al día un alimento muy concentrado. Esta alimentación supone una sobrecarga estomacal y de calorías en poco tiempo. El resultado del desequilibrio de esta alimentación, junto con la falta de ejercicio den tro del box, provocan los trastornos gastrointestinales.
Sit uación anató mica de los órganos digestivos en el caballo Estómago Hígado
Colon descendente Flexura pélvica
Yeyuno
Ion dorsal izquierdo n ventral izquierdo
T ñ ñ t
Duodeno
v
Boca Faringe
Yeyuno
Colon dorsal derecho
Hígado
Colon ventral derecho
Flexura diafragmática
Exploración de la boca La captación y aprehensión de los alimentos se realiza por medio del labio superior, de los incisivos y de la len gua. El examen rutinario de la boca se hace para ob servar el estado de dientes y muelas en animales que muestran agitación reiterada de la cabeza, sialorrea, dificultades para masticar o disfagia. También, siempre que se observe una disminución en la ingestión de ali mentos o adelgazamiento crónico. Otras causas son la sobrecarga de arcadas dentarias por embocaduras agresivas y la presencia de úlceras y aftas.
Antes de examinar la boca nos fijaremos en los la bios y en la mucosa gingival que es húmeda y de color rosado. Aquí se pueden presentar petequias o equi mosis, lesiones indicativas de alteraciones en la coa gulación. En los équidos viejos, es normal encontrarse con el labio inferior caído. Hay que fijarse en el aspecto de los incisivos y si la oclusión de estos es correcta o no. Dentro de la boca se encuentra la lengua. En ocasiones aparece lesionada por traumatismos, heri das o cortes que provocan una glositis (inflamación de la lengua) o un aumento conocido como macroglosia.
Abuitamiento en la comisura de los labios debido a un absceso interno. El excesivo desgaste de los dientes puede dificultar la aprehensión y explicar la caquexia de un caballo.
Úlcera labial en el belfo superior.
Mucosa gingival congestionada.
Lesión de la lengua y su posterior sutura. Este traumatismo puede provocar macroglosia y dificultad de masticación del alimento.
Uso del abrebocas
Abertura de la boca sacando ia lengua y colocándola, con precaución, debajo de la arcada dentaria.
Para abrir la boca cuando se vayan a realizar exá menes odontológicos, muchas veces necesitamos, además de un abrebocas, sedar al caballo con un tranquilizante. Para abrir la boca se introducen los dedos por el diastema, cogiendo la lengua y lleván dola con precaución debajo de la arcada denta ria. Esto nos permite observar por un momento su interior. En la inspección de la boca hay que fijarse en el belfo superior e inferior. El superior tiene mayor ta maño. El paladar duro se extiende desde el borde lingual de los dientes hasta las fauces. La lengua se encuentra en el espacio intermandibular. Aquí mu chas veces nos podemos encontrar heridas o incluso arrancamiento, pues la lengua está sometida a fric ción con el filete y el bocado.
Abrebocas de Hausmann.
Dientes de leche en un potro.
Colocación del abrebocas.
Mal posicionamiento de los dientes que provocan lesiones en la mucosa oral.
Los dientes y las muelas se deben examinar para asegurarse de que la oclusión sea completa, ya que de lo contrario el animal engullirá el grano entero pro vocando alteraciones en la digestión estomacal que puede desarrollar cólicos. También para comprobar la presencia de remolones, que son crecimientos irre gulares y picudos en los molares debido al desgaste anormal que se produce por los desplazamientos
laterales de la mandíbula al masticar. Los remolones se comportan como cuerpos extraños lesionando la lengua y las encías. Las radiografías de la boca se realizan cuando nos encontramos con enfermedades dentales que se extienden al tejido periodontal. Con los modernos equipos portátiles y el desarrollo de la radiografía digital es fácil obtener buenas imágenes para el diagnóstico.
Extracción de un remolón
Extracción ele un remolón. Para ello el clínico utiliza un abrebocas de Hausmann, buena contención del animal e instrumentos de odontología.
Exploración de la faring e La faringe es un órgano muscular que comunica la boca con el cardias. Está implicada en el paso de aire a las fosas nasales pues el caballo no respira por la boca y únicamente lo hace por la nariz. El paladar blando situado al fondo de la cavidad bucal actúa como barrera para impedir el retorno de los alimen tos y el aire a la boca a través de la faringe. Debido a este mecanismo fisiológico, es por lo que los ca ballos raramente vomitan y si lo hacen el contenido aparece por la nariz y no por la boca.
Palpación de la faringe con las dos manos.
La exploración de la faringe sólo puede producirse por palpación. Para ello juntaremos las dos manos por encima del cuello para notar el carácter elástico del órgano y en condiciones normales se llega a to car con los dedos de una mano los dedos de la otra. Hay que comprobarins la ausencia de dolor a la pal pación o de algún alimento atascado. Las radiografías de la orofaringe se hacen para buscar lesiones del tipo masas retrofaríngeas o abultamientos de las bolsas guturales por gas, sangre o pus. La presencia de aire en la nasofaringe propor ciona un buen medio de contraste con los tejidos adyacentes.
Exploración del esófago El esófago es un órgano musculado que se extiende desde la faringe hasta el cardias. Su proyección ex terna se sitúa en la gotera de la yugular izquierda. Para explorar el esófago nos fijaremos en los movi mientos peristálticos que pasan por la gotera de la yugular del lado izquierdo. En caso de sospecha de disfagias debe observarse cómo bebe y come el caballo. Se puede palpar el esófago desplazando la punta de los dedos por la gotera de la yugular para apreciar, en el caso de espasmos musculares, un cordón duro en la gotera de la yugular. También es posible la palpación de cuerpos extraños.
Las radiografías se utilizan para comprobar la presencia de alimento en las compactaciones del órgano o bien de tejidos traslúcidos en el caso del megaesófago. Se puede intentar una radiografía de contraste con sulfato de bario introduciendo la papilla por sonda nasoesofágica. Sin embargo, es más co mún realizar una endoscopia del esófago. Para reali zar un examen completo se requiere un endoscopio de dos metros de longitud. El aspecto de la mucosa es rosáceo y húmedo.
Obstr ucción del esófago
c:
Obstrucción del esófago. Se aprecia un engrasamiento en la gotera de la yugular izquierda y también secreción nasal como consecuencia de los intentos de vómito o regurgitación.
Exploración del estómago El estómago de los caballos tiene una capacidad muy reducida, 8-15 litros, y normalmente sólo se lle nan los dos tercios de su volumen. El estómago se vacía de contenido y secreciones gástricas entre 6 y 8 veces al día. En el estómago se produce la diges tión ácida de los alimentos con ayuda del pH bajo de las secreciones gástricas. Este órgano se sitúa en la cavidad abdominal de bajo del arco costal sobre el plano medio abdominal izquierdo. Debido a su localización en la zona más profunda de la cavidad abdominal, su exploración clí nica es difícil y sólo se puede hacer mediante sonda nasogástrica, con un endoscopio largo o con ecografía abdominal. Úlcera gástrica en el estómago de un caballo.
Sólo mediante un endoscopio largo es posible observar la mucosa gástrica del caballo.
En la cavidad abdominal se encuentran los principa les órganos digestivos, además de los órganos ane jos que son el hígado y el páncreas.
° Cirugías previas en la cavidad abdominal (cólico, cesáreas). ° Cantidad y calidad del pienso y forraje ingerido. ° Desparasitaciones: cuándo y con qué productos se han realizado. ° Estado sanitario de la cuadra: limpieza de estiércol y desinfecciones. ° Aspecto del estiércol (presencia de cuerpos extra ños, arena, etc.).
A n am n es is Como en toda exploración, comenzaremos reali zando una anamnesis. Preguntaremos acerca de: ° Ambiente: regularidad de las comidas en canti dad, calidad y horario. ° Antecedentes clínicos: en animales con cólicos re petidos (tres meses o más). ° Especie: los asnos y mulos son animales más rústicos lo que les protege de ciertos procesos abdominales y presentan un umbral para el dolor más alto. ° Raza: la consanguinidad o razas muy selecciona das para ciertas disciplinas deportivas presentarán un descenso de la capacidad de adaptación y un mayor número de alteraciones abdominales. ° Sexo: en yeguas en los últimos meses de gesta ción el útero presiona sobre los órganos digesti vos. Los machos, en la época de reproducción, están más estresados.
[Inspección Muchos caballos con dolor abdominal presentan un cambio brusco en su comportamiento. Los caballos
Los caballos con cólico presentan sudoración profusa que hace que se adhiera la paja a su superficie.
Es muy probable que los caballos que han sido operados vuelvan a tener un cólico.
Con la inspección nos fijamos en el mal estado de carnes de este caballo.
Situarse detrás del caballo para inspeccionar si hay abultamientos en el contorno abdominal.
Examen clínico Empezaremos la exploración con los procedimientos clásicos, es decir, inspección, palpación, percusión y auscultación, siendo esta última la que más infor mación proporciona. Los métodos complementarios que se pueden utilizar para mejorar el diagnóstico son la búsqueda de sangre o parásitos en heces, análisis hematológicos y bioquímicos, endoscopias, ecografías y, en menor medida, radiografías.
son animales muy expresivos y su umbral para el do lor es bajo, por lo que el propietario enseguida ad vierte que se encuentra enfermo. Hay que fijarse en el aspecto general del animal, en las alteraciones de la capa y la piel y en si el animal está flaco o no. Si hay ausencia de heces sugiere algún tipo de obstrucción intestinal. Debemos fijarnos en la pre sencia de elementos extraños, como sangre, pará sitos, moco, arena, tierra o cuerdas de atar, etc. o de alimentos sin digerir, especialmente grano cuando el animal no mastica bien. La oliguria es un indicador de deshidratación grave, insuficiencia renal aguda o de shock. El dolor abdominal que sufre el caballo durante el síndrome cólico puede ser similar al que presenta un caballo con disuria. La falta de apetito puede ser un indicador más del dolor abdominal común con otras patologías. Pres tar atención a la distensión abdominal, observando al caballo por detrás, descartando en primer lugar una gestación avanzada en una yegua. Aparece distensión como consecuencia de timpanismos o, en casos más graves, torsiones del intestino grueso. En estos casos se apreciará una convexidad en la parte superior de los ¡jares. En raras ocasiones se presenta disnea y taquipnea cuando se produce distensión gástrica o del intestino anterior. En otras ocasiones, se puede ver un vientre recogido a la vez que lo endurece, conocido como “vientre en en tabla" debido debi do al dolor abdominal. abdominal.
Asno con abdomen abultado a consecuencia de una ascitis.
Las dificultades dificultades para beber agua por hielo, agua sucia o por comer c omer tierra favorecen la presentación de cólicos.
Auscult Auscult ación abdominal Los sonidos intestinales reflejan la actividad intes tinal y son de gran utilidad en la valoración clínica del cólico. La auscultación de la cavidad abdomi nal se debe realizar en un ambiente tranquilo para escuchar bien los sonidos. Hay que acercarse con precaución antes de tocar toc ar los ijares ijares del caballo. caballo. Co locaremos el fonendoscopio en las dos fosas paralumbares derecha e izquierda en la parte superior e inferior, auscultando en cuatro cuadrantes. Los sonidos se producen con regularidad de dos a cuatro veces por minuto. Los sonidos de progresión, conocidos como borborigmos, se oyen cada dos o cuatro minutos cuando el caballo no ha ingerido alimento. Con la ingesta, estos ruidos
aumentan en amplitud y frecuencia, escuchándose un gorgoteo del lado izquierdo (colon) y el lado de recho (ciego) cada 6-10 segundos. Los sonidos de propulsión se diferencian de los sonidos de mezcla por su modelo cíclico, mayor in tensidad y duración más larga. Los sonidos que se escuchan en el lado derecho reflejan la actividad de las válvulas válvulas ileocecal ileocecal y cecocólica. Los movimientos que realiza el colon son de mez cla del alimento y se oyen en cualquier zona de la superficie ventral del abdomen. La ausencia ausencia de sonidos o su disminución se asocian a peritonitis o hipoperfusión intestinal en el caso de es trangulaciones con o sin infarto. También es frecuente encontrarlo después de d e las operaciones de digestivo. digestivo.
Auscultaci ón de los cuatro cuatro cuadrantes del caballo caballo
La presencia de gas atrapado entre el intestino y la pared abdominal se puede identificar mediante percusión-auscultación simultánea. Para ello, se co loca la campana del fonendoscopio en el hueco del ijar y con la otra mano percutimos alrededor de la campana con los dedos o con el mango del martillo. La producción de un sonido fuerte, timpánico, indica gas atrapado en el órgano. En este caso, hay que tener en cuenta el gas expulsado por el recto cuando el caballo trota a la cuerda. Los aumentos de motilidad se deben a espasmos intestinales, irritación por parásitos, diarreas, etc. La arena se puede oír durante los movimientos del colon colocando el estetoscopio en el abdomen ventral, detrás de la apófisis xifoides. Se oye un so nido similar al roce de la arena dentro de una bolsa de papel.
Técnica de percusión-auscultación para determinar la presencia de gas atrapado en las visceras abdominales.
Palpación rectal Es una parte fundamental para alcanzar el diagnós tico de muchas enfermedades digestivas. Se tiene que realizar después de hacer el resto de la explora ción clínica. Existen limitaciones a la técnica. • El tamaño tama ño del del animal animal hace imposible imposibl e la explora explo ra ción en potros y ponis. ° En animales con reacciones peligrosas se nece sitará un torcedor y, en caso de no ser suficiente, levantando una mano o bien sedarlos. • Lo ideal es realizar la palpación palpaci ón en un un potro potr o de contención, pero si no hay uno disponible, hacerlo protegido tras la puerta del del box. • Sólo se puede acceder al tercio posterior de la ca vidad abdominal. abdominal. Una vez protegido de las reacciones del caballo, la palpación hay que realizarla con cuidado para no dañar el recto. Utilizar un guante lubrificado con gel e introducir los dedos despacio, dilatando el esfínter anal. Una vez introducida la mano, vaciar la ampolla rectal de heces. Las principales estructuras que se pueden palpar son: por el lado izquierdo, pegado a la pared ab dominal, se palpa la porción caudal del bazo como un borde carnoso y firme, y dorsocraneal a éste se encuentra el riñón izquierdo. Entre ambos se sitúa el espacio nefroesplénico limitado ventralmente por el ligamento nefroesplénico, donde pueden aparecer
Conviene realizar la palpación rectal detrás de un potro para protegerse de las coces de los caballos.
atrapamientos de asas intestinales que darán lugar a cólicos. En los machos pueden palparse en la zona ventral las aperturas vaginales que cubren los anillos vaginales internos. Dependiendo del contenido en el digestivo no siempre se puede palpar el colon ventral izquierdo, flexura pélvica y colon dorsal derecho. En la zona central es posible localizar la raíz del mesenterio alrededor de la arteria mesentérica cra neal, como una banda firme suspendida de la pared dorsal en la línea media.
Impactación por meconio en el intestino grueso de un potro.
Vólvulo de intestino de lgado. Esta lesión, si no se interviene pronto, lleva rápidamente a la muerte del animal.
En la palpación rectal debemos valorar: • Cantidad y consistencia de heces y estado de la mucosa rectal. ° Posición fisiológica de asas intestinales y órganos palpados. » Aumento del tamaño del intestino por impactación de heces. ° Distensiones intestinales en forma de gas o líquido. Grano sin digerir.
En el lado derecho se encuentra la base del ciego con un contenido semilíquido. Pueden palparse tam bién las tenias del ciego en la zona dorsal y ventral del órgano. Siguiendo ventralmente y un poco a la izquierda se palpa la flexura pélvica con un contenido blando. Después nos encontramos con el colon ven tral izquierdo que se reconoce por ser de gran diá metro y por sus bandas longitudinales.
Cuando la mucosa rectal está seca, pegajosa y con heces duras indica deshidratación. En caso de obs trucciones hay una falta de heces posterior al lugar de la obstrucción. Valorar el tamaño, naturaleza y consistencia de lo que se palpa. Las visceras distendidas por gas se localizan en el ciego o por contenido líquido en caso de enteritis proximales, o por sobrecargas intestinales. La tensión de las tenias del colon nos indican es tiramiento mesentérico, ya sea por sobrecarga, tor sión, vólvulo o invaginación intestinal.
Sondaje nasogástrico
Impactación de colon. El aumento de la presión llega a romper la pared intestinal.
B
Además de una aplicación terapéutica, la intubación nasogástrica se realiza para introducir glucosa o xilosa en los tests de absorción o para descomprimir el estómago cuando éste se encuentra lleno. El tubo nasogástrico debe poseer un diámetro lo suficientemente amplio y ser maleable a la tempera tura interna del caballo, con un sistema de apertura lateral, para evitar su taponamiento con partículas gruesas de comida. Se introduce por los ollares, buscando el meato ventral del caballo hasta la glo tis, donde el tubo debe dirigirse hacia el esófago sal vando la tráquea. En esta localización es importante disminuir, tirando de la cara del animal hacia el suelo, el ángulo que forma la cabeza con el cuello, con el fin de facilitar que la sonda entre al esófago y no a la trá quea. Por último llegaremos al cardias y entraremos en el estómago, donde debemos alcanzar el fundus. Aquí se acumula la ingesta y es donde se extrae el contenido estomacal o el líquido que contenga. Cuando haya gas, después de atravesar el cardias, se producirá una salida del mismo. Para que salga el líquido se coloca la sonda por debajo del nivel en que se encuentra el estómago del caballo para conseguir un efecto sifón. En caso de no conseguirlo deberemos utilizar una bomba ma nual de extracción realizando presión negativa en la boca de la sonda hasta exteriorizar su contenido.
Sondaje nasogástrico en el caballo
Esófago
Tráquea
Al pasar la sonda por el esófago se incrementa la resistencia Se ve cómo la sonda desciende por el lado izquierdo, al lado de la gotera de la yugular Al aspirar por la sonda, se colapsa el esófago y al soplar se puede distender Se palpa la sonda en potros y animales delgados cerca de la tráquea, notándose “2 tubos" Al entrar en el estómago se nota el olor de la ingesta y hay resistencia al pasar la sonda a la entrada del pecho
No hay resistencia, el caballo puede toser
El contenido del estómago es normalmente verde, tiene un olor dulzón y está compuesto predominan temente por partículas de alimento. El pH se mide mojando un papel indicador en el líquido. Los valores normales de pH se encuentran entre 3 y 6. El reflujo que proviene del intestino delgado es amarillo-marrón con olor fétido. Este líquido tiene un pH de 6 a 8 debido al efecto tampón del líquido del intestino delgado. La obtención de grandes cantidades de líquido estomacal sugiere obstrucción en el intestino del gado o enteritis proximal.
No se observa la sonda Al aspirar por la sonda se traga aire continua mente, al soplar no se produce distensión Sólo es posible palpar la tráquea No hay resistencia ni olor
Paracentesi s abdominal Los cambios en la composición del líquido peritoneal reflejan los cambios producidos en las superficies peritoneales de los órganos abdominales. El análisis es especialmente útil en el diagnóstico de cólicos graves y peritonitis. Método Lo primero es rasurar y desinfectar la zona. Utilizar material estéril y guantes para realizar la operación. La extracción de líquido peritoneal se realiza con una aguja o con un catéter. Se utiliza una aguja calibre 18 y de una pulgada y media de largo, la cual se inserta directamente sobre la línea alba, en la zona más caudal y ventral de la apófisis xifoides y penetra en la cavidad abdominal, debiendo te ner especial precaución de no puncionar ningún asa intestinal para no contaminar la muestra u ori ginar una peritonitis.
El contenido del estómago se recoge en un cubo para medir el volumen y las características del mismo.
Si no se puede obtener por la línea media, se puede intentar una punción por la línea paramedial, procurando evitar dirigirse hacia el colon y el ciego. En el caso de caballos obesos que tienen una cantidad considerable de grasa retroperitoneal, nos podemos ayudar con un catéter que penetre por la zona adiposa y el peritoneo. Recoger el líquido por gravedad, en dos tubos, uno con EDTA como anticoagulante y otro sin aditivos. Si no es posible recoger la muestra con una aguja, porque hay riesgo evidente de lesionar el intestino o de contaminación con sangre, se puede utilizar un catéter romo. Para ello es necesario realizar una incisión con un bisturí en la línea alba para in troducir el catéter. Evaluación de la muestra Las características que presenta este líquido abdo minal son: Volumen: lo normal es obtener 5-10 mi mediante goteo en 4-5 minutos. Aspecto macroscópico: es un líquido inodoro, claro o ligeramente amarillo, con menos de 5.000
Caballo con cólico tratado con fluldoterapia.
leucocitos/mm, concentración de proteínas tota les inferior a 2,5 g/dl. Realizar un frotis directo del líquido abdominal sobre un portaobjeto para observar las distintas clases de células, hacer un recuento diferencial de glóbulos blancos, evaluar la degeneración celular, y buscar bacterias y/o partículas de ingesta. En caso de extraer baja cantidad de muestra, se puede centrifugar el líquido y el sedimento exten derlo en un portaobjeto antes de teñirlo. La tinción más común es la Wright-Giemsa, aunque también se puede utilizar un panóptico rápido. A lter ac io n es m ás c o m u n es La turbidez se debe a la presencia de células, principalmente leucocitos. En las obstrucciones estranguladas, infartos no estrangulados y obstrucciones simples, el líquido presenta un color serohemorrágico indicativo de isquemia. En los casos de toxemia se observa un gran nú mero de eritrocitos, de leucocitos y un aumento en la concentración de proteínas de 3,5-6 g/dl. En las peritonitis el líquido contiene abundan tes bacterias libres y fagocitadas por leucocitos tóxicos, y que su número puede alcanzar los 100.000/mm. Este líquido es muy turbio, de mal olor y coagula. Si hay rotura de una viscera se observa un color verde-marrón en el líquido obtenido del contenido intestinal. En los casos de estrangulación sin infarto se pro duce un aumento de proteínas y glóbulos blancos de 300.000 a 400.000 células/mm. Una extravasación sanguínea o la punción acci dental del bazo durante la maniobra de la para centesis pueden provocar un hemoperitoneo. En la abdominocentesis de los potros recién na cidos con rotura vesical aparece un líquido con aumento de la creatinina y que llega a ser el doble que la de los niveles del plasma.
Exploración del hígado El hígado es una viscera que participa en una gran cantidad de funciones metabólicas necesarias para el adecuado funcionamiento fisiológico del animal. Interviene en el metabolismo de los hidratos de car bono, lípidos y proteínas, en el almacenamiento de vitaminas y minerales, la excreción de pigmentos biliares y en la síntesis de factores de coagulación. Además es un órgano muy importante en la detoxificación de sustancias extrañas. En los équidos, el hígado se localiza en la parte medial del abdomen, dentro de la bóveda diafragmática, sin contacto con la pared costal, por lo que en condiciones normales no puede ser explorado. En los casos de hepatomegalia, se podría apreciar un aumento del área de sonido mate en el lado derecho, por detrás del borde posterior del pulmón. Las enfer medades del hígado suelen presentar pocos sínto mas patognomónicos y por eso, cuando se sospe cha de un proceso hepático, se obtiene suero para realizar un estudio de su biopatología.
Biopsia hepática
1. La biopsia ele hígado se realiza por el lado derecho entre el 13 y 14 espacio intercostal. 2. Antes de hacer la biopsia, preparar una amplia zona del lado derecho para realizar una ecografía que ayudará a localizar el mejor lugar de la punción. 3. Imagen normal del parénquima hepático mediante ecografía. 4. Hígado con fibrosis de un caballo que padeció insuficiencia hepática.
La biopsia hepática sirve para definir histológica mente la lesión como infecciosa, tóxica, obstructiva o congestiva. La técnica se realiza de forma percutánea con agujas de biopsia de 14 G y 15 cm de longi tud. Realizar antes una ecografía por el lado derecho para localizar la mejor área de parénquima hepático. Una vez sedado el animal y rasurada y desinfectada un área del lado derecho entre el sexto y el quin ceavo espacio intercostal, se inyecta un anestésico local. Con un bisturí se hace una pequeña incisión y se introduce la aguja en el 14° espacio intercostal en una línea imaginaria que va desde el hombro hasta la tuberosidad coxal, en dirección craneoventral a través del pulmón y alcanzar el hígado. Avanzar más profundamente hasta penetrar en el hígado. Guardar la muestra en formol al 10%.
Variaciones en el hemograma y bioquímica clínica en algunas enfermedades gastrointestinales de los équidos
Enfermedad
Hemograma
Bioquímica clínica
Úlcera gástrica
GB, Neu T
GGT, BUN, Crea! Gluc, Na, K, Cl i
Duodenitis/yeyunitis proximal
GR, Hto, GB T GB, Neu =i
PT, Alb, BUN, Crea T Na, K, Cl i
Obstrucción No estrangulante del ID
GR, Hto T GB, Neu i
BUN, Crea T PT, Alb, Glob =T Ki
Obstrucción estrangulante del ID
GR, Hto, T GB, Neu =t GB, Neu i
AST, SDH, BUN, Crea T PT, Alb, Gluc =t
Obstrucción No estrangulante del IG
GR, Hto T GB =!
GGTt PT, Alb, Glob, BUN, Crea =T Ki
Obstrucción estrangulante del IG
GR, Hto T GB, Neu =¿
AST, SDH, GGT, BUN, Crea T PT, Alb, Glob =t Gluc =Ti
Peritonitis
GR, Hto, GB, Neu =ti
AST, SDH T BUN, Crea =T PT, Alb, Glob = ti
Diarrea
GR, Hto =T GB, Neu, =i
PT, Alb, BUN, Crea =í Gluc, Na, K, Cl =i
T aumento del nivel; i disminución del nivel; = nivel igual. GB = glóbulos blancos; GR = glóbulos rojos; Neu = neutrófilos; l-lto = hematocrito; GGT = gamma glutamil transferasas; AST = aspartato amino transferasa, SDH = sorbitol deshidrogenasa; PT = proteínas totales; Alb = albúmina; Glob = globulinas, BUN = nitrógeno de la urea; Crea = creatinina; Gluc = glucosa; Na = sodio, K = potasio; Cl = cloro.
Anamnesis e histo ria clínica Datos de anamnesis de interés en las enfermedades gastrointestinales de los équidos Datos generales Hábitat: estabulado o no______________________________________________________ Dieta: ¿ha ingerido una cantidad inusual de pasto o de ración, alguna sustancia o planta tóxica?
Rutina diaria _____________ Utilidad del animal _________ Historia médica: antecedentes
Controles parasitarios, desparasitaciones_________________________________________________________________ Datos clínicos recientes Duración del cólico _________________________________________________________________________________ Última vez que ha comido____________________________________________________________________________ Cambios recientes de la ingestión de alimentos, agua, medicación, estabulación, cama del box, viajes, rutina del ejercicio, cuidadores
Posibles cuerpos extraños ingeridos_____________________________________________________________________ Gestación
___________________________________________________________________________________
Parasitosis reciente_________________________________________________________________________________ Traumatismos recientes______________________________________________________________________________ Última vez que defecó, aspecto de las heces______________________________________________________________ Sudoración_______________________________________________________________________________________ Signos observados: escarba, rueda sobre sí, molestias abdominales, miradas hacia el flanco, permanece recostado, giros hacia atrás Datos de enfermedades anteriores Respuesta al tratamiento_____________________________________________________________________________ Episodios de cólicos previos o cirugía abdominal___________________________________________________________
Comportamiento y síntomas del caballo con cólico Escarbar en el suelo con las manos Mirarse repetidamente los flancos Cocearse con las patas traseras en el abdomen Agacharse como si quisiera sentarse Actitud de orinar durante un tiempo prolongado Permanecer echado en el suelo
Dejarse caer al suelo de manera súbita Sudar profusamente Temblar Gemir Jugar con en el agua Morderse el flanco
Genitorurinario
Exploración del sistema genitourinario Aparato genital Ap arato ur inario
Aparato genital
Aparato genital del semental (prepucio y escroto).
SViacho: el semental
Orntrodluccnóini El objetivo del examen clínico del sistema reproductor en caballos es asegurarnos de que no existan pato logías que puedan afectar a la fertilidad y, por tanto, a su capacidad reproductiva. La valoración del semental debe incluir una explo ración clínica o examen físico completo por sistemas y aparatos (digestivo, cardiorrespiratorio, músculo es quelético, etc.), empleando métodos de inspección directos o inmediatos y pruebas complementarias como electrocardiografías, ecografías, radiografías, etc. Este examen debe estar encaminado a la detec ción de problemas reproductivos que puedan causar infertilidad, subfertilidad y esterilidad en el semental. Es básico mantener un perfecto equilibrio metabólico para obtener una buena respuesta a nivel sexual. Pueden emplearse diversas pruebas laboratoriales con el fin de detectar enfermedades sistémicas o ve néreas en el semental. A partir de muestras de san gre, orina, semen, exudados, heces, etc., se pueden realizar pruebas citológicas, serológicas, inmunológicas, bioquímicas, histoquímicas y hormonales, así como análisis para detectar bacterias (MCE, Klebsie- ll a , Pseudomonas), virus (Herpesvirus, AVE, AIE.), y protozoos (Trypano soma equiperdu m), etc.
Patología peneana (balanopostítís).
El escroto, los testículos, el epídídímo, el pene y el prepucio se examinan de manera rutinaria mediante palpación. La ecografía y la endoscopia se utilizan habitualmente como exámenes complementarios. El examen del aparato genital externo se realiza me diante inspección, palpación y/o ecografía y debe englobar: ® Pene ° Prepucio ° Testículos ° Epidídimo ° Cordón espermático 0 Escroto
El examen del aparato genital interno se realiza por palpación rectal de forma manual y mediante ecogra fía o endoscopia por vía uretral; debe abarcar: ° Glándulas vesiculares o Glándula bulbouretral ° Próstata
HostoiriaD y anamnesis La historia clínica de un semental debe empezar con una identificación del mismo, que ha de incluir ios si guientes datos: • Nombre y edad • Raza • Número de registro • Microchip o tatuaje labial ® Marcas ocultas • Reseña A continuación debe realizarse el historial reproduc tivo, que debe incluir: • Fecundidad en su primera temporada reproductiva • Fertilidad del año • Libido • Comportamiento en la cubrición • Anomalías observadas durante la cubrición
Ecografía testicular en un semental en la estación.
Detalle de la sonda en ecografía testicular.
La anamnesis debe recoger los problemas mé dicos, lesiones, vacunaciones y tratamientos farma cológicos de los últimos seis meses, así como los datos de antecedentes deportivos, reproductivos y el actual uso del semental. Hay que tener en cuenta que una nutrición inadecuada o una enfermedad pueden producir, secundariamente, el deterioro de la calidad seminal. También deben reseñarse las posibles enfermedades hereditarias que el semental pueda transmitir (criptorquidia, síndrome de Wobbler, etc.), y que son motivos suficientes para descartar al caballo como semental.
Exploración directa
Esquema del aparato genit al externo
Genitales externos La exploración directa debe comenzar con un acer camiento al hombro del caballo; poco a poco se desliza la mano derecha medialmente a lo largo de la parte ventral de la pared abdominal hasta llegar al escroto. La mayoría de los sementales toleran bien la ex ploración, pero si el semental se muestra agresivo o tiene mal carácter puede realizarse la exploración en un potro de contención o, en su defecto, puede arrinconarse al caballo en una esquina con pacas. Testículos y escroto Se deben palpar los testículos para determinar su forma, tamaño, orientación y textura. El epidídimo se subdivide en cuerpo y cola. El cuerpo debe poseer una textura suave y esponjosa, sin tumefacción ni dolor a la palpación y sin nodulaciones; se apoya libremente sobre la superficie dorsolateral del testículo, con la cola localizada en su polo caudal. La bolsa que recoge el testículo es el escroto. Junto con la túnica dartos, el plexo pampiniforme y el músculo cremáster se encargan de mantener una correcta temperatura testicular. Las principales pa tologías de esta bolsa son la hernia y el hidrocele o hematocele (cuando la bolsa escrotal está llena de lí quidos o de sangre, respectivamente). Estas lesiones son debidas a traumatismos y pueden originar altera ciones del conducto epididimario, llegando a producir eyaculados sin espermatozoides. Pene y prepu cio La exploración correcta del pene se realiza fuera del prepucio, tras la estimulación del semental con una yegua o bien administrando acepromacina o detomidina. Antes de realizar el examen debe retirarse el esmegma de la fosa uretral en el glande con una gasa impregnada en suero. El pene se sujeta con la mano y debe observarse ausencia de: ° Cicatrices, heridas o hematomas que indican trau matismos. Éstos pueden estar causados por las patadas de la yegua durante la cubrición.
• Nodulos o pústulas cutáneas asociados con el exantema coital. ° Granulomas por Habronema spp. 0 Papilomas. ° Sarcoides. 0 Balanopostitis. « Carcinomas de células escamosas. Todas estas lesiones pueden dificultar la cópula y provocar hemospermia.
Genitales internos Debido al carácter excitable de los sementales, la exploración de los genitales internos mediante pal pación rectal implica un riesgo añadido. Para evitar este riesgo, se puede utilizar un fármaco alfa-ago nista (detomidina), que puede combinarse con otro fármaco opiáceo (butorfanol) para reducir la hiper sensibilidad del tercio posterior y la tendencia a cocear. La exploración de las glándulas accesorias se rea liza cuando existen evidencias de determinadas pa tologías, por la presencia de bacterias o de células inflamatorias en el eyaculado. Glándulas accesorias El semental posee cuatro glándulas sexuales accesorias: • Ampollas del conducto deferente ° Próstata
Ampollas del conducto deferente Vejiga de la orina Uréter
Glándulas vesiculares
Próstata
Glándulas bulbouretrales Uretra
0 Glándulas bulbouretrales • Glándulas vesiculares (vesículas seminales) La función de todas ellas es formar el eyaculado. Tienen una textura muy similar y son muy difíciles de diferenciar con exactitud por palpación rectal. Por ello, en .aso de presentarse alguna patología asociada a i stas glándulas, es preferible exami narlas mediante ecografía rectal con una sonda de 7,5 MHz. Ampolla del conducto deferente Las ampollas del conducto deferente se localizan dorsales a la vejiga de la orina. Son muy fáciles de localizar por palpación rectal. Se debe desplazar la mano cranealmente a lo largo de la uretra pélvica hasta localizar los conductos deferentes, a la altura dei cuello de la vejiga; las ampollas del conducto de ferente se encuentran en la parte distal del mismo. Próstata Se localiza dorsal a la intersección entre la uretra pél vica y el cuello de la vejiga, pero es una estructura completamente aislada de la uretra. Se compone de
un estrecho istmo central y dos lóbulos que acompa ñan lateralmente a la uretra pélvica. Su consistencia es blanda y es difícil de palpar por vía rectal, por lo que es preferible identificarla mediante ecografía. Su tamaño y la cantidad de su contenido líquido aumentan tras el recelado, sin embargo disminuyen tras la eyaculación, hasta alcanzar los valores de reposo sexual. Glándulas bu lbouretrales Son un par de glándulas tubulares que se ensanchan en la parte distal del conducto deferente. Por palpa ción rectal, se localizarán siguiendo cranealmente el recorrido de la uretra pélvica hasta encontrarlas pe gadas a los conductos deferentes, cerca del cuello de la vejiga. Glándulas vesiculares Se aprecian por palpación rectal si están llenas de líquido o inflamadas; en estado normal no se pue den palpar. Por ecografía se observa una forma irregular de las glándulas vesiculares con una zona central hipoecoica en los sementales durante el re poso sexual. Son como pequeñas bolsas aplanadas dorsoventralmente, con paredes musculares grises y una luz central oscura.
An il lo s inguinales La parte más superficial del anillo inguinal puede lo calizarse palpando la pared ventral del abdomen, en tre el pene y la parte medial del muslo. Normalmente, la abertura del anillo inguinal superficial tiene entre 2-3 cm de diámetro y el canal interno entre 10-12 cm de largo. El anillo discurre en dirección lateral, craneal y ligeramente ventral con respecto al eje del tendón prepúbico. La parte interna del anillo inguinal se localiza en el borde craneal de la pelvis. Se puede apreciar por palpación rectal, dirigiendo la mano ventral y lateral mente hasta tocar la pared abdominal. La criptorquidia es una patología que describe la falta de descenso de uno o de los dos testículos a la bolsa escrotal. Esto puede ser detectado por pal pación del escroto y del anillo inguinal externo. Si los testículos no se encuentran en el anillo inguinal, se pueden palpar vía rectal, pero su identificación es di ficultosa ya que son estructuras pequeñas y móviles en la cavidad abdominal.
Montaje de la vagina artificial.
Control del semental con “Chifney” en el momento de la cubrición.
En la extracción de semen con vagina artificial hay que tener especial cuidado con los movimientos del semental.
Extracción del semen en caballos Los métodos de extracción de semen más habitua les son la vagina artificial y el colector cervical. El manejo del semental y el recelo de la yegua son fundamentales para una buena cubrición o para la recogida del semen, ya que no sólo estimula a la yegua hacia la cubrición, sino que también favorece que el semental aumente su concentración espermática. El recelo debe empezar por un acercamiento del macho a la cabeza de la hembra y posteriormente ir dirigiéndolo hacia el tercio posterior y los genitales externos de la yegua. Se recomienda como emboca dura un hierro "Chifney”, que permite un control total sobre el semental. Durante la eyaculación se deben controlar los movimientos de contracción uretral del semental mediante la palpación de la uretra, y el control de los movimientos de la cola cuando termina la cubrición. Si la yegua no acepta al macho se debe contener con unos trabones y colocar un torcedor en el belfo. El maslo de la cola debe protegerse con un vendaje que evite que el pene del semental entre en contacto con zonas contaminadas.
Extracción de semen con “phantom" cuando no se tiene una yegua estrogenizada.
Pene del semental en erección jus to antes de la penetración en la yegua.
Vagina artificial La vagina artificial es uno de los métodos más utiliza dos. Se trata de un dispositivo compuesto de varias partes con las que se intenta reproducir las condicio nes fisiológicas de la vagina de una yegua (presión, temperatura y tacto). El dispositivo está atempe rado y tiene un mecanismo estanco para recoger el eyaculado. Existen diferentes modalidades de recogida, se gún utilicemos una yegua estrogenizada o un mani quí artificial (por ejemplo, tipo “phantom”). También se puede realizar la recogida con el caballo en estación sin necesidad de una yegua, pero esta recolección es mucho más dificultosa. La técnica de vagina artificial precisa de tres per sonas expertas para la recogida del semen: una atendiendo al caballo, otra a la yegua y una tercera con la vagina artificial. Esta técnica requiere personal especializado, ya que éste se ve expuesto a ciertos riesgos durante la recogida del semen. En el mo mento en el que el semental va a montar a la yegua se debe orientar el pene hacia la vagina artificial.
La extracción con vagina artificial también se puede realizar en burros.
Es necesario controlar los movimientos pelvianos del macho y favorecer que la eyaculación se realice a la mayor profundidad posible en la vagina artificial, para evitar el s h o c k térmico de los espermatozoides. En ocasiones, algunos sementales se muestran ca prichosos, pues la temperatura y la presión de la va gina artificial no son los adecuados y por lo tanto no eyaculan.
Secuencia del cortej o sexual y cubrición en un semental, acercamient o-refl ejo del Flehmen, contacto y monta
Colector cervical El colector cervical consiste en un recipiente de cris tal soplado de borosilicato, de un grosor constante de 2,2 a 3 mm, que se introduce en el cén/ix de una yegua en celo antes de la cubrición. Es muy impor tante que el colector sea de la medida del cérvix de la yegua, de esta manera se encuentra perfectamente sujeto por la boca del mismo. Una vez colocado en la yegua se acerca el semen tal para que comience su cortejo sexual. Cuando en tra en erección se le permite realizar una cópula natu ral. El caballo eyacula en el interior del colector cen/ical situado entre el cérvix y el útero. No existe posibilidad alguna de que pase semen al útero, si la técnica se sigue correctamente. Tras la extracción del colector, el semen se envía al laboratorio para su testaje. El colector presenta la ventaja de que el semen tal realiza una cópula natural, ésta no se encuentra inhibida por la utilización del utillaje, y se invierte mu cho menos tiempo. Es mucho más fácil de limpiar, esterilizar y preparar que la vagina artificial y requiere menos personal especializado para su utilización.
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Con el método del colector cervical, la penetración es totalmente natural, sin interferencias.
Colocación del colector cervical en el cérvix de una yegua.
Extracción del colector cervical con el eyaculado.
Características del semen Macroscópicas Microscópicas
Color, olor, volumen. Se puede detectar la presencia de sangre (hemospermia), orina (urospermia), etc. Motilidad total, motilidad progresiva, concentración, morfología, pH.
Anormalidades seminales que habitualmente encontramos en la morfología, concentración y motilidad espermáticas Oligospermia
Definición Pocos espermatozoides en el eyaculado Poca motilidad en el eyaculado
Atenozoospermia Teratospermia
Aumento de formas anormales Oligoatenozoospermia Oligoteratospermia Atenoteratospermia Oligoatenoteratospermia
Formas combinadas
Parámetros
Caballo
Volumen (mi)
60
Concentración de espermatozoides (x 10°) Total de espermatozoides (x 109)
15 9 70 70
Espermatozoides con motilidad (%) Espermatozoides morfológicamente normales (%) Eyaculaciones por semana pH del semen
3 7,0-7,8
Parámetros a valorar en un espermiograma
Volumen espermático Motilidad masal
Debe ser entre 40 y 100 mi. Se vlsiona la gota pendiente y se clasifican de 1 a 3 +.
| Motilidad total y motilidad progresiva La concentración ideal debe estar entre 25-50 x 106espermatozoides/ml. Motilidad objetiva Los sistemas informatizados permiten la evaluación espermática con precisión mediante medidas cuantitativas del movimiento individual de los espermatozoides. Test de resistencia térmica El semen diluido se coloca en un tubo a diferentes temperaturas hasta o supervivencia que la motilidad desciende a menos del 10%. Morfología espermática La presencia de una gran cantidad de formas anormales está relacionada con alteraciones de la espermatogénesis y espermiogénesis. Tinciones vitales Permiten detectar espermatozoides vivos y muertos de la muestra. Tinciones fluorescentes Hay múltiples tinciones y test basados en la observación del espermatozoide con el microscopio de fluorescencia, para el estudio de la fisiología espermática y los efectos de la congelación. Concentración espermática El número medio está entre los 100-300 x105espermatozoides/ml. Test de endósmosis HOST Se valora la entrada de agua del espacio extracelular al interior del espermatozoide para equilibrar las concentraciones de solutos dentro y fuera de éste.
Hembra: la yegua Irntroducción
Fisiología La yegua es una especie poliéstrica estacional de días largos, su estación reproductiva tiene lugar durante los meses de primavera y verano principal mente. En invierno tiene un anestro estacional y el otoño, básicamente, es un periodo de transición. El anestro invernal se denomina quiescencia re productiva y comienza en la última ovulación del año. En este periodo los niveles hormonales son muy ba jos y no hay actividad folicular. La transición primaveral se caracteriza principal mente por unos celos largos e irregulares que, en nuestras latitudes, comprenden los meses de marzo y abril. La estación reproductiva tiene su actividad máxima a finales de la primavera e inicios del verano, con unos celos largos, de hasta 7 días, coincidiendo con los días de más horas de luz, puesto que un fotoperiodo de más de doce horas estimula la acti vidad ovárica. En la transición otoñal, el desarrollo de los folículos y su crecimiento comienza a ser irregular y prolongado; se dan celos anovulatorios, debido a que los niveles de LH y de FSI-I comienzan un des censo progresivo.
Esquema hormonal de la yegua en el estro y en diestro.
Día 1-4
Día 6-10
Día 16-18
Ciclo estral El ciclo estral de la yegua se puede dividir en dos eta pas bien diferenciadas: 1. Estro: fase folicular El estro es el periodo en el que la yegua acepta al macho, debido a un nivel hormonal de estrógenos elevado. Este periodo tiene una duración variable de entre 4-7 días y se caracteriza por un edema vulvar, micción cuando se acerca el se mental, elevación de la cola y vulveo del clítoris. Este comportamiento estral continúa unas 24 horas tras la ovulación del folículo preovulatorio. 2. Diestro: fase luteínica En el diestro la yegua no está receptiva y la hor mona predominante es la progesterona. Tiene una duración de unos 14-16 días y la estructura predominante en el ovario es el cuerpo lúteo, que regresará si no hay gestación para comenzar de nuevo un ciclo.
Folículo ovulacio el día 7 del estro.
Historia clínica, Anamnesis La anamnesis de una yegua ha de ser completa y debe realizarse de manera rutinaria para un correcto examen clínico del animal. Es importante comenzar la historia clínica con una reseña básica del individuo: • Nombre • Edad ° Raza • Número de microchip Una vez obtenidos los datos identificativos se debe conseguir información más relevante en relación a su historial sanitario y reproductivo, que nos puedan orientar en el diagnóstico, como: • Vacunaciones desde los últimos 6 meses o el año anterior. • Última ecografía del aparato reproductor. Es impor tante reseñar si hubo algún hallazgo importante. • Última gestación. • Último parto. • Último aborto. Especificar en qué estadio de la gestación se produjo. • Historial de gestaciones gemelares. Por último, se debería revisar la localización del animal (box, campo, corraleta y box) y su alimenta ción, puesto que tanto un estado de carnes pobre como un exceso de grasa pueden condicionar su condición reproductora.
Clítoris de una yegua con una coloración normal.
Exploración Directa
Genitales externo s Vulva y región perianal La vulva es la estructura más externa del sistema re productor en las hembras. Está constituida por los labios y una comisura inferior en forma redondeada, en la cual se encuentra el clítoris, con una forma pro minente y una coloración oscura. Nos fijaremos en él cuando la yegua esté en celo, pues realiza un mo vimiento característico, conocido como “vulveo del clítoris". Para que cumplan una función óptima, los labios de la vulva deben estar en una posición vertical, o por lo menos tener una inclinación de craneal a cau dal de no más de 10° con respecto a la vertical. Es importante que ambos labios vulvares cierren correc tamente para evitar la contaminación con heces que puede provocar infecciones y afectar a la vida repro ductiva de la yegua. Genitales internos En el examen de la vagina se aprecian distintas par tes. Con la ayuda de un espéculo vaginal se puede realizar una buena inspección visual, pero también es posible realizar una exploración introduciendo la mano, por palpación.
Vulveo del clítoris de una yegua en estro.
Vestíbulo Comienza en el himen y termina en los labios vulvares. Es aquí donde se localiza la abertura de la uretra y además las paredes contienen glándulas vestibula res, que tienen la misión de lubrificar en el momento de la cópula. Vagina Es el órgano copulador de la yegua, y en su ex tremo caudal se encuentra el himen. Recibe al pene durante la cópula pero no acoge la descarga semi nal, ya que ésta se deposita directamente en el cue llo del útero. En ocasiones las yeguas tienen vaginitis. Para tratar este problema se recomienda tomar una muestra de la mucosa vaginal, realizar una citolo gía, un antibiograma y administrar el antibiótico de elección en cada caso. Útero Se sitúa en la cavidad abdominal y pelviana. Está constituido por el cuello, el cuerpo, los dos cuernos y las dos trompas uterinas. El cuello del útero o cérvix se une con la vagina, mide unos 5-8 cm de longitud y 3-4 cm de diámetro. En alguna ocasión el cérvix puede estar totalmente fibrosado debido a reacciones cicatriciales antiguas posparto o a que, simplemente, la yegua posee una edad avanzada y la función de relajación cervical no actúa como debería. Esta lesión dificulta la entrada
Vestíbulo vaginal donde se localiza la abertura de la uretra.
Desgarro pospa rto de la mucosa vaginal en proceso de cicatrización.
Útero de yegua en la que se observa el cuello, cuerpo, cuernos uterinos y ovarios con folículos.
extienden desde los cuernos uterinos hasta los ova rios. Su función es recoger al ovocito.
Edema de los pliegues endometriales de un útero en estro, llamado también "Rueda de carro”.
Útero en un estro temprano con edema y sin rueda de carro,
del semen y por lo tanto, en estos casos, es aconse jable realizar una inseminación artificial. El cuerpo del útero es cilindrico y está aplanado dorsoventralmente. Los cuernos uterinos están situa dos en la región abdominal. Sus bordes dorsales son algo cóncavos y están unidos a la región sublumbar por el ligamento ancho, los bordes ventrales son convexos y están libres, no están unidos a ningún ligamento. La presencia de endometritis o de quistes en es tas zonas puede interferir en la fertilidad, por ello es importante realizar un examen ecográfico exhaustivo para detectarlos lo antes posible. Las trompas uterinas son dos conductos que unen los ovarios al útero. Se trata de dos tu bos flexuosos de unos 30 cm de longitud que se
Ovarios Los ovarios de la yegua tienen forma arriñonada y miden unos 7-8 cm de longitud y 3-4 cm de grosor, con un peso de 70-90 g (cuando tienen actividad ovárica). Se encuentran localizados en la región sublumbar, aproximadamente debajo de la 4a-5avértebra lumbar y están en contacto con la pared muscular lumbar del abdomen. Dentro del ovario, los folículos comienzan su cre cimiento hasta alcanzar un tamaño de 45-55 mm, en función del tamaño y raza de la yegua, hasta adquirir una forma de “pera", que es el folículo preovulatorio. En las horas siguientes se producirá la ovulación, for mando un cuerpo hemorrágico que se transformará en un cuerpo lúteo.
Palpación rectal! Para realizar la palpación rectal adecuadamente hay que vaciar previamente el recto, utilizando un guante bien lubricado. Por lo general, las yeguas se dejan explorar sin necesidad de un potro de exploración, pero si se dispone de uno será mucho mejor para prevenir accidentes. En las yeguas con mal carác ter se puede levantar una de las manos falseando el apoyo y así evitar la coz, o pueden incluso emplearse medios coercitivos como es el torcedor en el belfo inferior o un pellizco supraescapular.
Estructuras anatómicas destacables en la palpación rectal
Anatomía Cuello del útero o cérvix Cuerpo del útero
5-8 cm de longitud y 3-4 cm de diámetro.
Cuernos uterinos
Se extienden lateralmente y dorsalmente hasta unirse a la región sublumbar por el ligamento ancho, sus bordes ventrales son convexos y están libres. Forma arriñonada, miden de 7-8 cm de longitud y 3-4 cm de grosor con un peso de 70-90 g en actividad ovárica.
Ovarios
Cilindrico y algo aplanado dorsoventralmente.
Palpación rectal Estro: relajado y edematoso. Diestro: pequeño, duro y tubular. Estro: edema de los pliegues endometriales (rueda de carro). Diestro: aumento del tono uterino, fácilmente palpable. Estro: edematizados, poco tono. Diestro: tono uterino, se palpa como unas estructuras tubulares. Estro: aumentan su tamaño debido al crecimiento de folículos. Anestro: pequeños, duros y acíclicos.
En el examen rectal se puede palpar el útero en una posición central y los ovarios suspendidos dorsalmente de la zona lumbar, el ovario derecho siempre se en cuentra en una situación más craneal que el izquierdo.
Pruebas compDementarsass ecografía Diagnóstico de gestación El diagnostico de gestación en las yeguas se realiza mediante exploración ecográfica con una sonda de 5 MHz. La primera imagen que se observa ventralmente es la vejiga de la orina, se visualiza como una man cha oscura (hipoecogénica), más o menos grande en función del tiempo transcurrido desde la última mic ción; a continuación se aprecia el cérvix y el cuerpo del útero. La visión de la vesícula embrionaria es rela tivamente precoz en el caso de las yeguas gestantes. Hacia el día 14-15 posovulación se puede observar
una estructura anecogénica con forma redondeada, de entre 0,5 y 1 cm de diámetro. Dicha estructura conservará su forma circular u ovoide y un contorno regular hasta aproximadamente el día 17-18, mo mento en el que comienza a tornarse irregular. Existen otros métodos de diagnóstico de gesta ción que, aunque no sean tan frecuentes, pueden ser igualmente válidos. Uno de ellos es la palpación rectal, método que requiere una cierta experiencia previa para la detección temprana de la gestación; se puede realizar alrededor del día 20 posovulación. Otro método para detectar la gestación es el empleo de un macho recela. Se comprueba "el no retorno al estro" de las yeguas, que puede ser con siderado como un signo de que la hembra está ges tante. Algunas hembras pueden entrar en estro aún estando gestantes, por lo que se debe tener mucho cuidado para no caer en el error de cubrir a la yegua nuevamente, pudiendo provocar un aborto.
Diagnóst ico de gestación por ecografía
1. Embrión de 16 dias poscubrición. 2. Gestación de 28 días. 3. Gestación de 75 días. 4. Aborto de 120 días. 5. Momento del parto al final de la gestación.
Por último, existen métodos de diagnóstico de gestación hormonales pero, hasta el momento, no son muy fiables y por ello su uso no es muy común.
Patologías más frecuentes detectadas con ecografía Ováricas En el examen ecográfico del ovario, las patologías más frecuentes son: ° Folículos anovulatorios por transición prima veral: en esta época es necesario inducir la ovula ción en la mayoría de las yeguas, ya que si estos folículos no llegan a ovular pueden alcanzar tama ños de hasta 9-10 cm de diámetro con el peligro de provocar un dolor agudo en la yegua que in cluso puede llegar a desencadenar un cólico. Un folículo de más de 70 mm es improbable que ovule, así que puede ser conveniente admi nistrar una inyección de hCG para hacer que ese folículo ovule en las primeras fases de su cre cimiento. El aspecto de estos folículos suele ser parecido al de un folículo normal, con la diferen cia de que van perdiendo esa ecogenicidad tan clara y en ocasiones comienzan a compartimentarse. Además, a la palpación resultan bastante dolorosos. ° El tumor más habitual que nos encontramos en el ovario es el tumor de las células de la granu losa, que presenta un aspecto duro y pequeño aunque en ocasiones pueda ser también grande. En su interior aparecen pequeña áreas oscuras que son cavidades llenas de líquido. ° Ninfomanía o celo continuo es un síndrome neuroendocrino que cursa con una constante actitud de celo. Este trastorno va unido a una degenera ción quístíca del ovario debido a la hipertrofia del folículo.
Folículo ovillando rodeado de dos folículos pequeños que no han llegado a desarrollarse.
Uterinas La ecografía del útero evidencia otras afecciones como: ° Endometritis aguda: cuando en la ecografía ute rina nos encontramos una cantidad determinada de líquido hipoecogénico intraluminal durante el diestro, probablemente estemos ante una en dometritis aguda. Para su diagnóstico definitivo
podemos realizar una biopsia uterina, en la cual hallaremos una infiltración de neutrófilos, desde las capas más superficiales hasta las más profundas. Como tratamiento se recomienda realizar la vados uterinos y a continuación introducir un antibiótico intrauterino, así se preparará el útero para la siguiente cubrición o inseminación.
° Quistes endo metriales: la presencia de estos quistes pueden interferir en la gestación de la ye gua, sobre todo debido a su tamaño, número y extensión en el útero. Estos quistes crean, mu chas veces, dudas o incluso errores en el diag nóstico de la gestación debido a que son prác ticamente iguales a un embrión de 15 días. La principal y gran diferencia con los embriones es que los quistes no crecen, no se mueven y, en ocasiones, están compartimentados.
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Vaginales Los trastornos vaginales más importantes son la neumovagina y la urovagina. ° La neumovagina consiste en una mala conforma ción entre el periné y el cierre de la vulva, de forma que entra aire dentro de la vagina. Esto puede provocar infecciones, reabsorciones embrionarias y placentitis. Suelen padecer este trastorno las ye guas viejas, los animales con extrema delgadez o simplemente aquellas hembras con una alteración en la conformación del periné. Su resolución es quirúrgica mediante la “técnica de Caslick".
Endometritis aguda en una potra de 4 años tras 15 días poscubrición.
° La urovagina se presenta con mayor frecuencia en yeguas viejas o en aquellas con una mala con formación vaginal, que origina que se quede siem pre una pequeña cantidad de orina en la vagina. Un análisis de la concentración de urea y creati nina nos confirmará que se trata de orina.
Lavado del útero tras una retención de placenta y una infección uterina posterior.
Aparato urinario Introducción El aparato urinario está formado por los riñones, los uréteres, la vejiga de la orina y la uretra. Las funciones del aparato urinario son la eliminación de productos de desecho a través de la orina y el mantenimiento de la homeostasis del medio interno. Estará indicada una exploración minuciosa cuando el animal pre sente cambios de comportamiento en el momento de orinar, o cambios evidentes en la calidad o volu men de la orina.
Para realizar una exploración completa de este aparato se debe realizar una historia clínica, obser var los genitales externos y la postura que adopta el animal durante la micción y finalmente realizar una palpación externa y/o una exploración rectal de las estructuras del aparato urinario. Finalmente, es nece sario tomar una muestra de orina para realizar una analítica. En algunos casos incluso se optaría por realizar alguna de las pruebas completarías descritas a continuación.
Detalle del aparato genitourinario del caballo 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
Riñones Uréteres Vejiga Vesícula seminal Glándula prostética Glandula bulbouretral Uretra Epididimo Testículos Escroto Prepucio Pene Cordón espermático Conducto espermático Base de la pelvis
Detal le del aparato genitouri nario de la yegua 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
Riñones Uréteres Cérvix Vagina Vulva Uretra Base de la pelvis Vejiga Cuerpo del útero Prolongación derecha del útero 11 Trompa de Falopio 12 Ovario
Historia cDíoica En la historia clínica deberán verse reflejadas, además de los datos relativos a la identificación del animal, las respuestas del propietario o cuidador del caballo a las preguntas clásicas de la anamnesis: ¿qué le pasa al animal? ¿desde cuándo? ¿a qué lo atribuye? Se debe prestar especial atención a todo aquello relacionado con las alteraciones en la micción del ca ballo, o si el animal bebe u orina más de lo habitual.
Exploración Darec ta
Inspección La micción es un acto reflejo que se produce por es tímulos mecánicos, debido a la distensión de la ve jiga de la orina, y por estímulos de tipo químico, a consecuencia de la composición de la orina, que son recogidos por los receptores del plexo nervioso de la pared de la vejiga. Los caballos orinan de 4 a 6 veces al día, elimi nando un total de 2 a 11 litros de orina, esto depende mucho de las condiciones ambientales de humedad y temperatura.
En los équidos, es posible palpar el riñón izquierdo mediante exploración rectal. Se puede alcanzar el polo caudal de dicho riñón en el techo del abdomen,
en la parte izquierda de la línea media; presenta un aspecto liso, es movible y, si está sano, no presenta dolor a la palpación. El riñón derecho sólo se puede palpar cuando está desplazado y es muy grande. Los uréteres no se suelen palpar, a no ser que estén engrosados debido a una obstrucción o una infección, en cuyo caso están tensos y dolorosos a la palpación. La vejiga de la orina, cuando se encuentra vacía, es difícil de explorar. En cambio, cuando está repleta se puede palpar fácilmente junto al borde de la pelvis. En caso de cistitis, la pared de la vejiga está engro sada y dolorosa a la palpación. Se pueden percibir los cálculos urinarios, pero esta patología es poco común en caballos. En las situaciones de parálisis u obstrucciones, la vejiga se encuentra distendida y con las paredes tensas. La palpación rectal de la porción pélvica de la ure tra es difícil y tan sólo es posible en machos que pre sentan cálculos en esta zona. La palpación externa de la uretra en el macho se inicia en el prepucio y acaba en el escroto. El objetivo es buscar zonas hinchadas o dolorosas a causa de la presencia de cálculos alojados en la zona peniana o perineal. Para facilitar esta maniobra se puede exteriorizar el pene administrando xilacina o acepromacina favoreciendo así su salida del prepu cio. En este momento se puede proceder a sondar la uretra del macho.
Variaciones en la emisión de orina
Modificación Poliuria (aumento del volumen de la orina)
Oliguria (disminución del volumen de la orina) Anuria (ausencia de orina) Polaquiuria (aumento de la frecuencia de micción) Disuria (micción dolorosa)
Causas Administración de diuréticos, insuficiencia renal crónica, hiperadrenocorticismo, diabetes insípida, polidipsia psicógena, etc. Deshidratación, insuficiencia renal aguda, etc. Cálculos, rotura de la vejiga o de la uretra. Cistitis, uretritis, etc. Urolitiasis, cistitis, acumulación de esmegma, decúbitos prolongados, neoplasias, etc. Síndrome de cauda equina con parálisis vesical.
Iscuria (retención de orina) Desgarros uretrales. Estranguria (expulsión lenta y dolorosa de la orina) Iscuria paradójica (salida de la orina por desbordamiento) Causas neurológicas que afectan a la médula espinal.
Pru ebas compQememtarias Análisis de orina La orina es el líquido orgánico de desecho elaborado por el riñón y almacenado en la vejiga. Su composi ción definitiva se ve alterada por cualquier afección del sistema urinario, pero también por trastornos en otros órganos del animal como corazón, hígado y páncreas. Hay que tener en cuenta que los riñones participan en la eliminación de muchas sustancias tóxicas y medicamentosas. Las muestras de orina se deben de recoger en un recipiente limpio y, a ser posible, estéril. Sí el análisis no va a ser inmediato, se puede conservar hasta 12 horas a 4 °C. El análisis de orina incluye: 0 Valoración macroscópica: color, olor, turbidez. ° Valoración física y química. ° Valoración microscópica del sedimento urinario. Cultivo y aislamiento bacteriano. Las tiras de orina proporcionan una información aproximada del pH, densidad o presencia de glu cosa, de cuerpos cetónicos, de sangre y/o hemoglo bina en la orina. La densidad urinaria se puede deter minar con más precisión con un refractómetro.
Sondas de distinto tamaño, vaselina y botes para recoger la orina en el sondaje vesical del caballo.
La orina obtenida se recoge en un bote para llevar al laboratorio y realizar el urianálisis.
La tira de orina de la muestra de orina de la yegua indica una reacción fuertemente positiva a presencia de eritrocitos, mioglobina/hemoglobina y proteína urinaria
Detalle del sondaje vesical en el macho. El pene se exterioriza aplicando un relajante muscular y al cabo de 15 minutos ya se puede introducir la sonda.
Interpretación de las tiras de orina
Asociación
Parámetro
Cuerpos cetónicos
pH <7 en acidosls metabólica, ejercicio prolongado, alimentación con concentrados; fisiológico en potros Proteinuria en lesiones glomerulares e inflamatorias, hemorragias; orinas alcalinas dan falsos positivos Potros lactantes tienen < 1.010 Isostenuria (1.008-1.017) en insuficiencias renales Síndrome de Cushing, estrés (liberación de glucocorticoides), diabetes mellitus Aumento del catabolismo proteico (raro)
Bilirrubina Hemoglobina
Hemolisis, ictericia obstructiva Hemolisis intravascular (el suero aparece hemolizado)*
Mioglobina
Rabdomiolisis por ejercicio (el suero aparece normal)*
pH (normal: 7,0-9,0) Proteínas (normal: <100 mg) Densidad (normal: 1.020-1.050) Glucosa
‘Una reacción positiva de la tira de orina no diferencia entre hematuria, mioglobinuria y hemoglobinuria. El cambio de color del suero (hemolizado) sólo aparece durante la hemolisis. Aspecto de la orina obtenida de una yegua que presentaba hematuria. Este color oscuro también se podría deber a una mioglobinuria.
Cit ología del sedim ento uri nario en el caballo
Sedimento urinario
Alteración
Eritrocitos (más de 5 por campo)
Hematuria, inflamación, traumatismos, cateterismos, coagulopatías
Leucocitos (más de 5 por campo)
Piuría, inflamaciones del tracto urinario
Bacterias Células epiteliales escamosas
Pielonefritis, cistitis
Células epiteliales de transición
Alteraciones de vejiga, uretra o vagina Alteraciones de pelvis renal, uréteres, vejiga o uretra
Células epiteliales renales
Pielonefritis, amiloidosis
Cilindros hialinos
Glomerulonefritis, nefrosis grave A veces se ven cilindros de mucoproteínas Carbonato cálcico y oxalato cálcico son comunes
Cristales
Pe rfil bio qu ím ico de la fu nc ió n ren al La azotemia es un término que define el incremento de sustancias nitrogenadas en la sangre y se caracteriza por la elevación de los niveles de urea y creatinina en el suero.
La creatinina es un indicador más sensible que la urea para detectar la enfermedad renal. Su concentración está influenciada por la masa muscular, por lo que suele estar incrementada en sementales y en individuos de razas muy musculosas.
En la insuficiencia renal, tanto aguda como crónica, se da un aumento de estos parámetros acompañado de isostenuria (densidad de la orina 1,008-1,017). En los casos de nefrolitiasis y cálculos uretrales, estas alteraciones vienen acompañadas de aumento de eritrocitos, leucocitos y cristales en el sedimento urinario. En situaciones de uroperitoneo, la azotemia se presenta junto con alteraciones en los niveles de electrolitos sanguíneos, con incremento de los niveles de sodio, cloro y descenso de los niveles de potasio. Las alteraciones en las proteínas séricas se ob servan cuando el caballo padece una insuficiencia renal crónica, con disminución de los valores de la albúmina y las globulinas, como consecuencia de la pérdida de proteínas debido a la grave lesión renal. Ecografía La ecografía percutánea se puede realizar con una sonda sectorial de 2,5-5 MHz. El riñón derecho se encuentra en posición ventral respecto a las apófisis espinosas transversas, en los espacios intercostales 14 a 16; el riñón izquierdo en el 17° espacio inter costal, en la fosa paralumbar izquierda coincidiendo con una línea horizontal imaginaria entre la tuberosi dad coxal y la isquiática. Este último se localiza un poco más centralmente que el derecho en la cavidad abdominal. Si el caballo tiene mucho pelo, se reco mienda afeit. .. la zona; si tiene poco pelo o es muy
Mediante ecografía percutánea se puede visualizar bien el riñón y tomar medidas del mismo para valorar una posible renomegalia.
fino, se puede apoyar firmemente el transductor so bre la piel para obtener distintos planos de la zona. La imagen de la cápsula renal es ecogénica y la cor teza renal es un área homogénea con finos ecos e hipoecoica, en relación con los tejidos que la rodean. La pelvis renal se identifica como una línea o banda ecogénica en el centro del riñón. Para visualizar la vejiga en un potro, se puede ha cer colocando la sonda del ecógrafo directamente sobre la piel. En los adultos, sin embargo, se debe hacer a través del recto con una sonda lineal de 5 MHz. La vejiga se visualiza como una estructura eco génica, de tamaño variable. Por vía transrectal, tam bién se puede apreciar el contorno y el grosor de la pared. Biopsia renal La biopsia renal está indicada en los casos de en fermedad renal difusa, masas renales o cuando se quiere conocer con exactitud el patrón histológico de la lesión. La técnica no está exenta de riesgos, por lo que hay que tomar precauciones. Es mejor reali zar una biopsia guiada por ecografía para precisar el punto de obtención de la muestra y evitar cualquier daño a los grandes vasos, al bazo o al intestino. En el caso del riñón izquierdo, se puede realizar una téc nica a ciegas, mediante palpación a través del recto, pero la técnica de elección es hacer una biopsia ecoguiada.
Para realizar una biopsia renal es mejor guiarse con ecografía para asegurarnos de no dañar ninguna estructura importante del riñón o de órganos adyacentes.
A p ar at o locom otor
Exploración del . aparato locomotor Examen g eneral Examen clínico del aparato muscular Examen clínico del aparato tendino so Examen clínico del aparato pod otr oclear Examen clínico del aparato osteoarticular
El aparato locomotor del caballo está conformado anatómicamente por diversas estructuras del sistema mús culo esquelético que sirven de sostén para todos los aparatos fisiológicos que permiten al animal realizar la locomoción. Huesos, articulaciones, músculos, tendones y ligamentos interactúan de manera armónica durante la loco moción y, tanto los tejidos blandos como el tejido óseo, están diseñados para resistir las fuerzas a las que se someten de manera repetitiva con la actividad normal, sin sufrir cambios en su estructura y funcionamiento. Sin embargo, cada tejido tiene una resistencia determinada que depende de su composición, ubicación ana tómica y función. Cuando este equilibrio se rompe se desencadenan las cojeras. La claudicación se define como la alteración de la marcha producida por dolor o restricción del movimiento.
Examen general
AmamimesDS Factores de riesgo o predisponentes: • Edad y raza. • Aplomos defectuosos. • Conformación defectuosa (ensillados). • Herrajes inadecuados para esa conformación. • Disciplina deportiva a la que se dedica. • Tipo de terreno sobre el que trabaja. « Medio donde vive el animal (box o prado). Exammemi en estacüón • Evaluar aplomos de frente, de perfil y desde la parte caudal; los defectos de aplomos predispo nen a patologías óseas, tropiezos, distensiones de ligamentos, etc. • Evaluar actitudes anormales de los miembros (posturas antialgidas o descansos constantes de uno de los miembros). • Evaluar dificultades funcionales (parálisis de neivio ra dial), problemas mecánicos (retracción de tendones). Conformación de los aplomos en estación y locomoción de los miembros del caballo El caballo debe aplomarse para compartir el peso en las cuatro extremidades con un descanso rotatorio en tres de ellas. Las alteraciones en los aplomos de ben ser valoradas como uno de los principales cau santes de las patologías de la locomoción.
Por otra parte, se valoran las alteraciones locomo toras que estas posibles malformaciones ocasionan, teniendo en cuenta la trascendencia que tienen tanto en la selección como en la cría del caballo. Un aplomo se considera correcto cuando los ra dios óseos de sus miembros anteriores y posteriores convergen adecuadamente en sus articulaciones, de tal modo que posibiliten la correcta transmisión de fuerzas y avances por los ejes de mayor densidad ósea, repartiendo el esfuerzo equitativamente entre sus estructuras. De este modo, ninguna estructura -hueso, liga mento o músculo- debería realizar sobreesfuerzos por sobrecargas adicionales, y la locomoción resulta fácil, adecuada y no debe salvar resistencias inapropiadas. En el examen de los aplomos se valoran las es tructuras (huesos, ligamentos o tendones) que re ciben sobrecargas adicionales de apoyo o tensión debido a una mala conformación, tanto en los miem bros torácicos como en los pelvianos. La observa ción debe realizarse craneal (de frente), lateral (de perfil) y caudalmente (por detrás) para examinar la disposición columnar de los miembros. En el caso de potros durante el crecimiento, los defectos de aplomos resultan más sencillos de corregir despalmando el casco de manera ade cuada hasta su completa corrección. Por ejemplo, cuando la situación del casco se produce hacia el exterior, se denomina izquierdo.
Carpus valgus y carpus varus que provocan sobrecarga en la articulación carpiana
Caballo con defecto de apoyo estaquillado.
La desviación se produce a partir del menúdillo izquierdo propiamente dicho. Este defecto puede ser uni o bilateral. En algunos casos la
trascendencia de este aplomo es mínima, aunque sí que va a provocar sobrecarga de ciertas estructuras óseas y ligamentosas.
Aplomos del tercio anterior
Normal
Remetido
Plantado
Corvo
Trascorvo
Aplomos tercio posterior y sobrecarga articular
Aplomos tercio posterior
Sobrecarga articular
Plantado Tracción ligamentosa debido a un aplomo incorrecto
Inspección regional Se realiza un examen clínico de todas las estructuras implicadas en el aparato locomotor como articula ciones, grupos musculares o tendinosos. Se evalúa la forma, el tamaño, la simetría, la integridad (p. ej. tumefacciones, abscesos, etc.) y la presencia o au sencia de soluciones de continuidad.
• Directa sup erficia l: se deben buscar inflama ciones, tumefacciones, edemas, callos, cambios de consistencia y de forma, pulsación de arterias
colaterales de la cuartilla o digitales (la única per cepción de pulso en condiciones fisiológicas es en ejercicio). También se busca el calor propio de procesos agudos (comparándolo con el lado sano, con la región simétrica). ° Directa profunda: se busca dolor, se hace a punta de dedos o por pellizcamiento de la piel, los músculos y los tendones; se evalúa consistencia, tono muscular y crepitaciones. © Indirecta: se hace con pinza de tentar o podálica, también con sondas rígidas o blandas para eva luar trayectos en el caso de fístulas.
Palpación
Examen por palpación del dorso.
Palpación de la corona y fibrocartílagos.
Toma de temperatura del casco.
Comprobación de caballo lunanco.
Palpación de la articulación carpiana.
Palpación de la bolsa tarsiana.
Prueba de f lexión
Pruebas: ° Movimientos de manipulación o pasivos. Se eva lúa la funcionalidad de músculos y articulaciones, se aprecia si dichas estructuras están normales o alteradas (por tumor, parálisis o problemas mecá nicos), también se puede apreciar dolor. • Prueba de flexión. Mantener la articulación flexionada durante 1 a 2 minutos, luego hacer trotar al animal, evaluando los primeros 6-7 pasos (si aumenta la claudicación es prueba positiva, hay afección en la articulación). ° Prueba de extensión o de la cuña de Lungwitz. Se coloca al animal sobre una rampa y se le levanta uno de los miembros por 1 a 2 minutos, luego hay que hacerle trotar.
Pronación-supinación de la articulación coxo-femoral. Prueba de extensión
32
Test de flexión en una mano.
Test de Wobbler. Se comprueba la falta de consistencia del tercio posterior.
Extensión de la articulación tarsiana (tercio posterior).
Percusión) Se percute el casco, con los dedos o martillo para encontrar oquedades. Ex am en d e Da m arc h a (8a claudicación se maniifiiesta más) Se procede a poner el caballo al paso en una su perficie lineal y despejada de al menos 30 m y a ob servarlo desde fuera de la línea de avance, desde ambos lados poniendo atención en cada una de las extremidades de una manera seriada. ° Debe examinarse en terreno duro y en terreno blando, de forma que permita al menudillo des cender lo suficiente para realizar su evaluación. Como norma general, las cojeras de origen óseo (artritis, osteítis podal) se manifestarán más agu das en terreno duro, mientras que las cojeras de tendones, músculos, ligamentos y cápsulas se manifestarán más claramente en terreno blando. ® También debe evaluarse en subida y bajada, al paso, al trote y al galope, ya que el aumento de tensión sobre las diferentes estructuras anatómi cas (sesamoideo distal y flexor superficial, en su bida, y codo con escápula, en bajada) favorece rán el diagnóstico de la patología que presenten. • Se debe hacer trotar al animal en círculos, con una cuerda larga dejando el miembro que claudica en la parte interior para que aumente la presión y se manifieste mejor la cojera. La longitud del cabo debe acortarse, dismi nuyendo el radio del círculo, para permitir que el animal aumente la presión sobre las estructuras anatómicas laterales y mediales y el trabajo sobre la escápula aumente. La claudicación se manifiesta por actitudes y movimientos anormales, por ejemplo mayor apoyo en un miembro que en el otro, apoyo en pinzas o talones, o sobre la zona medial o lateral del casco. Debe fijarse la atención de manera se riada en cada uno de los miembros del caballo, comenzando con el Al (anterior izquierdo), AD (an terior derecho), Pl (posterior izquierdo), PD (pos terior derecho) y se compara la locomoción del miembro examinado con el homólogo. También se compara si hay mayor o menor flexión en la ar ticulación examinada.
• Los movimientos de balancín (cabeza y cuello) también son útiles para determinar la claudicación: ante un problema del miembro anterior, la cabeza y el cuello se elevan al apoyar el miembro afec tado (en algunos casos inclina la cabeza hacia el lado sano), desplazando el centro de gravedad y disminuyendo presión en el miembro afectado. • Esta elevación se produce para colaborar con el movimiento frente a la dificultad funcional y para no distender músculos del miembro afectado. • También tiene valor diagnóstico examinar el caba llo montado en cada uno de sus aires (paso, trote y galope) ya que el peso del jinete aumenta la pre sión sobre el dorso del caballo y el descenso del menudillo aumenta en cada tranco, por lo que nos permitirá un examen clínico más completo. ° Trabajo del caballo en el caminador (¡t readmill ): lo que nos permite evaluar su locomoción de una ma nera precisa, repetitiva y sin estar sujeta a alteracio nes de la marcha debidas al terreno.
Cuando se da a la cuerda en círculos evaluamos la extremidad de la parte interior que soporta más presión y manifestará mejor la cojera.
Caballo en un caminador para evaluar la locomoción.
Si se sospecha de un esguince del pie, se realiza la torsión de la articulación interfalángica distal. Se toma la cuartilla y se fija, y se mueve el pie hacia ambos lados para comprobar si existe dolor. Prueba de flexión del tarso. También se flexiona la articulación femorotibiorrotuliana. Aunque no es patognomónica de tarso nos sin/e para la detec ción de esparaván. Prueba de la fijación patelar: sirve para evaluar la movilidad de la rótula dentro de la articulación femorotibiorrotuliana. Se toma la rótula y se sube sobre la tróclea medial del fémur, se levanta la ró tula y al mismo tiempo, para que se enganchen los ligamentos, se lleva hacia fuera. Cuando existe fijación patelar se hace lo contrario.
Claudicación o cojera
Síntoma clínico, que se presenta en marcha o estación, de un trastorno estructural o funcional en uno o más miembros. Es el resultado de una sincronización inapropiada de algunos compo nentes del sistema locomotor (R o o n e y ) . La pér dida de sincronía puede ser estructural, funcional o ambas a la vez.
Cuando el problema se presenta en los miem bros posteriores, la grupa se eleva en apoyo-elevación para desplazar el peso del cuerpo al miembro homólogo y colaborar en la elevación; la cabeza y
Movimientos de cabeza de un caballo cojo
Normal
Balancín
cuello pueden dirigirse de manera leve hacia delante a fin de no recargar el miembro que claudica. Esta elevación provoca un movimiento anormal de todo el cuerpo.
Marcha rígida-envarada (p.ej. tétanos, envaradura por rabdomiolisis generalizada, ataxias nerviosas en atrofias cerebelosas).
Tipos de cojeras en caballos
Locomoción del caballo
Inclinación hacia un bípedo: se produce en patologías que impliquen la claudicación del bípedo opuesto (infosunas, mialgias de dorso).
Según el momento metabólico del animal ° En frío • En caliente • Continua Huella del caballo al paso.
Según el momento de la cojera » De apoyo ° Elevación • Mixta Según la evolución • Aguda ° Crónica ° Intermitente • Compensatoria Según el grado de dificultad ° De primer a cuarto grado ® Leves-moderadas-intensas Según la etiopatogenia • Por dolor • Dificultad funcional (paresia-parálisis) ® Dificultad mecánica (ejemplo anquilosis, retracción de flexores)
Apoyo de lumbres en la mano de un caballo.
Pruebas diagnósticas complementarias Bloqueo nervioso diagnóstico Consiste en insensibilizar, mediante anestesia local (lidocaína o mepivacaína) comenzando desde la parte distal de las manos, los nervios cuyo trayecto pasa por esas localizaciones para valorar la remisión de la cojera tras la insensibilización. Se realizará siguiendo los siguientes pasos: Valorar el caballo al trote sobre terreno duro y de terminar las características de la cojera. Inocular el anestésico en la zona sospechosa de ser el origen de la patología. Hacerlo andar durante 5 minutos para difundir el anestésico y posteriormente ponerlo al trote sobre suelo duro para valorar la cojera. Valorar el grado de remisión de la cojera. En caso de no remitir la cojera o tener una mejoría casi inapreciable, repetir la anestesia de conduc ción en el siguiente punto de inoculación (se rea liza de distal a proximal). Ejemplo de estructuras desensíbilizadas en el blo queo del nervio digital palmar bajo: • El hueso navicular. La bolsa navicular. Los ligamentos sesamoideos distales. La porción distal de los tendones flexores. El corion de la ranilla y la suela. < El tercio palmar y la cara solear de la falange distal. La anestesia de bloqueo intra-articular comple menta la anterior y es de muchísima ayuda en el diag nóstico por bloqueo de la articulación afectada. Radiología Permite evaluar el sistema osteoarticular, las super ficies internas de las articulaciones y los reflejos de lesiones que dejan estructuras como los tendones sobre el hueso, como por ejemplo en caso de es guince del tendón extensor digital del dedo.
Bloqueo anestésico palmar
Hueso IV metacarpiano (metatarsiano) —
Nervio lateral palmar (plantar) metacarpial (metatarsa!)-----
Ecografía Es una técnica no invasiva que permite el examen de vainas, tendones, músculos, cápsulas sinoviales y en general todas las estructuras blandas del caballo. Las ecografías más habituales realizadas como diag nóstico son las del miembro anterior, en los tendones flexores, suspensor del menudillo, ligamento anular, codo y encuentro. En el miembro posterior se realizarían ecografías de babilla y tarso; y axiales como las realizadas en el miembro anterior. Se utiliza también para examinar el músculo dorsal y la grupa para determinar las zonas a infiltrar o para determinar inyecciones enquistadas. A n al ít ic as lab o rat o rial es Enzimas musculares: CK, LDH, AST, perfiles bioquímicos que evalúan el estado del músculo, (ejemplo relación calcio-fósforo). La extracción de sangre debe hacerse de la yugular y deben ex traerse dos muestras, una para conservarla con EDTA, y otra muestra sin conservantes (suero). Análisis de liquido sinovial: se obtiene mediante punción de la cápsula y es muy importante sobre todo para determinar la presencia de neutrófilos y bacterias en el interior de la articulación y, de esta manera, diferenciar el proceso séptico. Cultivo microbiológico: consiste en realizar un antibiograma de líquido sinovial en aquellos procesos que provoquen alteraciones infececciosas en el interior de la articulación. A rt ro s c o p ia d e la ar t ic u lac ió n La artroscopia se lleva a cabo cuando se quiere rea lizar una inspección microscópica de los tejidos blan dos, tales como ligamentos y tendones y para eva luar el grado o daño de degeneración del cartílago de la superficie flexora del hueso navicular.
Termografía La termografía permite detectar los cambios de tem peratura que se producen en una zona determinada de una extremidad, por alteraciones en su circulación sanguínea (proceso inflamatorio o séptico). Gamm agrafía ósea c o n t e c n e c i o - 99 m Consiste en la utilización de radioisótopos que son captados por los tejidos que están sufriendo un pro ceso degenerativo o inflamatorio. Posteriormente se mide la emisión de rayos gamma. Proporciona infor mación respecto a la vascularización relativa y la velo cidad del metabolismo tisular. Resonancia magnética nuclear Es una técnica de alto coste económico. Permite to mar imágenes detalladas de los tejidos mediante un fuerte campo magnético. El alto contraste del tejido blando ofrecido por resonancia magnética hace que esta técnica sea ideal para valorar el cartílago articular, ligamientos, tendones, capsula articular, sinovial. Tomografía computarizada Permite evaluar cambios patológicos en los huesos de una manera más precisa que la simple radiografía.
Resonancia magnética nuclear del casco de un caballo con podotrocleítis.
Examen El examen del aparato muscular del caballo, debido a su gran extensión, es complejo pero lo basaremos en lo siguiente:
Inspección • Evaluar la presencia de tejido blando subcutáneo y lesiones que pueden no ser aparentes (por ejemplo, atrofia de músculos escapulares-lesiones nerviosas). ° Distensión de cápsulas articulares. Palpación y manipulación o Mediante el tacto se pretenden localizar zonas ca lientes, dolorosas, endurecidas, etc. Pruebas de extensión, flexión y abducció n ° Pruebas de flexión y extensión del tarso (prueba de esparaván): casi siempre diagnóstica, aunque afecta a otras estructuras (menudillo, rodilla, anca).
Examen de la espalda y el mi embro anteri or Se evaluará toda anomalía que provoque alteración tanto morfológica como fisiológica de la extremidad. En la zona del antebrazo (radio, codo, húmero y hom bro) puede detectarse: • atrofia de los músculos escapulares (lesión nerviosa). • ligamentos colaterales del codo, fractura de olécranon. o hombro (artritis, bursitis, fractura del surco bicipital).
Exámen del dorso • Palpación y manipulación: palpación fuerte con los dedos para detectar dolor o hipersensibilidad en la zona dorsal de apoyo de la silla.
o Pruebas de movilidad dorso-lomo: rigidez, re chazo a moverse o a flexionar el dorso.
Exámen de la grupa Se debe evaluar la presencia de dolor crónico y atro fia por desuso. Luxación coxofemoral (lunanca). ° Palpación y manipulación del trocánter mayor para detectar crepitación y desplazamiento. Com parar las distancias entre el sacro y los coxales. ° Dorso, lomo y pelvis: debe evaluarse el eje axial completo a ambos lados (atrofias, desviaciones la terales, fracturas, nodulos, pérdida de pelo, asime tría coxal). Debe realizarse una palpación fuerte con los dedos para detectar dolor o hipersensibilidad. ° Pruebas de movilidad dorso-lomo: rigidez, re chazo a moverse o flexionar el dorso. • Examen rectal: estructuras pélvicas internas.
Principales patologías musculares en el caballo
Miositis. Es la inflamación del músculo por dife rentes causas. La miositis degenerativa llegaría a producir necrosis muscular. Miopatías en el caballo. Las más importantes son: • Rabdomiolisis: como consecuencia de ejercicios extenuantes o intensos. Nutricionales: deficiencias de vitamina E y Se. ° Tóxicas: en alto porcentaje por endotoxemia (también en caso de tétanos, botulismo). • Traumáticas.
Examen clínico del aparato tendinoso Los tendones son el elemento de sostén del sistema óseo. En el caballo, debido a las múltiples disciplinas que puede realizar con un jinete encima, se produce un incremento en el peso natural del caballo que hace descender sus articulaciones hasta el suelo.
característica, aliviando el peso en los talones. Du rante la palpación se aprecia dolor, calor y edema, por lo que en el examen conviene realizar esta ma niobra en apoyo, y luego en elevación, donde los ten dones se relajan y es posible palpar mejor todas las estructuras.
En el examen clínico de los tendones en un animal sano, tanto los tendones flexores como el ligamento suspensorio deben ser perfectamente identificables y sus bordes han de estar perfectamente definidos. A la palpación presentan cierta sensibilidad al tacto, por lo que a veces conviene comparar con el miembro opuesto. La presencia de dolor sólo es representativa cuando es constante, en la zona que se palpan y en intensidad. Deben recorrerse desde la zona articular proximal a la distal intentando delimitar engrasamien tos, tumefacciones, edematizaciones, crepitaciones y dolor asociado. Si el caballo o yegua presentan dolor muy acen tuado, el animal adopta una posición antiálgica
Ecografía La ecografía es una técnica diagnóstica no inva siva que permite determinar la localización, exten sión y naturaleza del traumatismo del tendón en los equinos. Es necesario el conocimiento exacto de las es tructuras anatómicas para realizar una buena inter pretación del estado de las vainas sinoviales, las cáp sulas y los tendones. Para realizar la técnica, el caballo debe aplomarse. Hay que rasurar la zona que se va a examinar y des infectarla posteriormente con alcohol. Tras ello se impregna la piel de la zona con 0,5 cm de gel de ecografía. El ecógrafo debe tener una sonda lineal o
III metacarpiano 0
IV metacarpiano
Ligamento accesorio inferior (ICL) Tendón digital flexor profundo (DDF)
Ligamento suspensor (SL)
Tención digital flexor superficial (SDF)
Ecografía de tendones.
sectorial de 7,5 MHz y el contacto con el gel de ecografía debe ser el máximo posible. En algunos casos los propietarios se niegan a rasurar la zona para que su caballo no denote una lesión tendinosa, pero hay que advertir que realizar así una expíe, ación ecográfica provocará muy baja o nula calidad c'o la imagen obtenida. Los tendones tienen propiedades (impedancia acústica, reflexión, refracción y atenuación) que de penden de su estructura y que determinan la ecogenicidad de estos permitiendo la división de las estructuras a estudiar en ecogénicas, hiperecoicas, y anecoicas. Por ejemplo: una rotura fibrilar aguda de los tendones aparece como un espacio anecoico o con una ecogenicidad difusa en el tendón o liga mento afectado (estas lesiones son frecuentes en el tendón flexor digital superficial y en el ligamento sus pensorio del menudillo).
La ecografía de los tendones flexores en eS miemb ro ant erior Debido a su capacidad de extensión y contracción máxima cuando se realiza una actividad deportiva,
los tendones flexores soportan unas presiones ma yores que el resto de los tendones del cuerpo del ca ballo, por lo que su examen clínico es muy habitual a la vez que imprescindible. El examen de los tendones flexores debe referirse a las zonas anatómicas del hueso metacarpiano III o metatarsiano III (hueso de la caña), de tal forma que los hallazgos ecográficos y en la palpación los denominaremos: 1. Lesiones altas (tercio superior de la caña). 2. Lesiones medias (tercio medio de la caña). 3. Lesiones bajas (tercio inferior de la caña). 4. Vientre de trucha (se denomina así cuando afecta a los tres tercios de la caña y el tendón lesionado es el flexor superficial). En el caso de tendinitis crónicas, pueden provo car formación de fibrina que llegará a producir defor maciones (muchas veces sin tumefacción en la zona y con aparición o no de dolor). En el caso de lesión tendinosa de flexores, la cojera provocada es de tipo mecánico a causa de la restricción del movimiento.
Examen clínico del aparato podotroclear Diagnóstico clínico El examen clínico puede dividirse en tres grupos: 1. Examen en la estación y al paso 2. Procedimientos diagnósticos 3. Anestesia de conducción
Observación • Ac titu d postural: cuando la dolencia se encuen tre en los talones, el caballo evitará apoyarlos, vol cando el peso en las lumbares: de la misma ma nera que lo volcará en los talones cuando la lesión se encuentre en lumbares. ° Aplom ado: cuando el caballo se encuentra mal aplomado o herrado incorrectamente, el peso del mismo se transmitirá de manera desequi librada al casco, provocando sobrecargas y desgastes irregulares en el mismo, con lo que el aplomado del mismo debe hacerse corrigiendo este factor. • Examen al paso: en caso de cojera se producirá la sobrecarga del casco y el animal levantará la cabeza de la extremidad afectada. • Examen en círculo: el animal presentará un in cremento de cojera cuando la cuerda se dé a la mano que presenta alguna patología. En caso de encontrarse la patología en la zona lateral aumentará por el desplazamiento de la presión lateral.
• Manual: realizando presión con ambos pulgares en la fosa de chenot (fosa navicular). * Presión con la pinza de casco: se realiza tomando un diámetro longitudinal con la muralla opuesta, presionando el surco central con la pinza y abar cando ambos talones.
Exámen de las lumbres del caballo con la pinza podal.
Despalmado de casco,
Prue ba de Da cuña de Lungwitz La cuña de Lungwitz es una pieza longitudinal de madera cuyas caras forman un ángulo de 20° y per mite, mediante su elevación desde el suelo, tensar el tendón flexor profundo y aumentar la presión sobre los talones del casco y sobre la bolsa podotroclear. Debe mantenerse así durante 60 segundos mientras se mantiene en el aire el miembro opuesto, y poste riormente se saca al animal al trote.
Prueba de Lundwing.
Examen clínico del aparato osteoarticular Las patologías articulares en el caballo de silla están condicionadas en gran medida por el régimen de en trenamiento y por la competencia a la que son some tidos estos ejemplares. El carpo es la articulación que mayor incidencia de patologías presenta, aunque el resto de articulaciones pueden presentar lesiones que se determinarán con un examen adecuado. Los componentes que encontramos en una articula ción son los siguientes: 8 Los huesos. Cubiertos en su parte final por el car tílago articular. • El cartílago articular. Es un tipo de tejido conec tivo que ayuda a reducir la fricción que producen los movimientos. ® La membrana sinovial. Es un tejido que reviste a la articulación y que secreta el líquido sinovial, protector de la articulación. • El líquido sinovia l. Líquido transparente que ayuda a la lubricación y disminuye el roce entre los cartílagos. • Ligamentos. Son bandas de tejido conectivo duro y elástico que le dan sostén y limitan el movi miento de la articulación. • Tendones. Tejido conectivo duro que sujeta a los músculos que controlan los movimientos de las articulaciones. • Bursas. Son bolsas llenas de líquido localizadas entre huesos, ligamentos u otras estructuras ad yacentes que ayudan a amortiguar la fricción en una articulación. • Meniscos. Cartílagos amortiguadores que se en cuentran en la rodilla y en otras articulaciones. • Cápsula articular. Tejido fibroso que encapsula toda la articulación.
Elaboración de una herradura para casco.
8 Radiología: se utilizan aparatos portátiles para la clíníca de campo con una emisión de 60 a 90 kV y un amperaje de 15-30 mA. Las proyecciones más habituales son: la dorso-palmar, la lateromedial oblicua y la proyección del navicular (cuña de 60°). 8 Artros copia: nos permite el examen quirúrgico de la articulación en su parte interna, pudiendo valorar el estado del cartílago articular y de frag mentos de éste que con radiología no se pueden detectar.
Lesiones óseas y articulares más f recuentes encontradas en el caballo O
El examen clínico
O
La exploración del aparato osteoarticular debe incluir: • Examen extemo: se determinarán las modificacio nes que el soporte óseo presenta sobre la aparien cia normal del miembro afectado mediante la pal pación seriada de todas las articulaciones y huesos que las comunican (p. ej. sobrehueso en cañas). • Examen dinám ico: detectar en movimiento las alteraciones que la patología ósea provoca sobre la locomoción. 8 Anestesia seriada: descrita anteriormente.
o o o o
o o o
Fracturas de ratón de la primera falange (chips) Fractura conminuta de la primera falange Constricción del ligamento anular palmar Fractura de los sesamoideos proximales Sesamoíditis Enfermedad metacarpiana dorsal [ b u c k e d shins). Sobrecañas Fracturas (chips) OCD (osteocondrosis disecante) Osteoartritis o enfermedad articular degenerativa
Osteomielitis/artritis séptica
PT, Alb, Glob, Fibri = T
GB, Neu = T GR, Hto = i
Rabdomiolisis por ejercicio
CK, AST, PT, Alb, Glob T BUN, Crea = T K, Cl = i
GR, Hto = T
Miodegeneración nutricional
CK, AST t BUN, Crea t , K=T Na, Cl 1
Mionecrosis bacteriana
CK, AST T BUN, Crea - T
Color, sangre, proteínas, cilindros T Color, sangre, proteínas, cilindros = T
GR, Hto T GB, Neu = Ti
T aumento del nivel; I disminución del nivel; = nivel igual GB= glóbulos blancos; GR= glóbulos rojos; Neu= neutrófilos; Hto= hematocrito; AST= aspartato amino transferasa; PT= proteínas totales; Alb= albúmina; Glob= globulinas; Rbri=fibrinógeno; BUN= nitrógeno de la urea; Crea= creatinina; Na= sodio, K= potasio; Cl= cloro
Después de un ejercicio intenso, la ducha reduce el calor metabólico y las lesiones del aparato locomotor.
Sistema nervioso
Exploración del sistema nervioso Historia clínica Exploración neurológica de la cabeza Exploración de la postura y la marcha Exploración del cuello y extremidades anteriores Exploración del tro nco y extremidades post eriores Exploración d e cola y ano Exploración de caballos en decúbito Obtención de líquido cefalorraquídeo Otras técnicas exploratorias Ficha de examen neurológico del caballo
El diagnóstico de las enfermedades neurológicas de los équidos puede suponer un importante reto para el clínico, pues a menudo estos animales presentan múltiples alteraciones de la conducta, problemas mentales o de la marcha como ataxia, paresia, espasticidad, hipermetría y que pueden ser difíciles de localizar. Para llevar a cabo una exploración neurológica es esencial un conocimiento básico de la es tructura y función del sistema nervioso (SN). No obs tante, un simple pero ordenado examen neurológico puede darnos suficiente información para localizar la lesión. Para realizar la exploración no se necesita un equipamiento especial y, por lo tanto, está al alcance de todos los clínicos. Hay que seguir una sistemática, empezando por la cabeza y acabando por la cola.
El sistema nen/ioso se encarga de la relación funcio nal del organismo con el mundo exterior y coordina la función de sus diversas partes. Se puede dividir en cinco partes: • Cerebro: telencéfalo y diencéfalo • Cerebelo • Tronco encefálico: mesencéfalo, metencéfalo (o puente) y mielencéfalo (bulbo raquídeo o médula oblongada) • Médula espinal • Nen/ios periféricos (pares craneales, nervios espi nales y sistema nervioso autónomo).
Representación del sistema nervioso del caballo
Encéfalo
Medula espinal
Arco reflejo: Corte de la médula espinal y órganos y células implicados en un arco reflejo
Receptor Sustancia gris
Sustancia blanca
Médula
Neurona sensitiva
Nervio espinal
Efector
Cerebro, cerebelo, tronco encefálico y médula es pinal forman el sistema nervioso central (SNC), y los nervios periféricos el sistema nervioso periférico (SNP). La función del telencéfalo o corteza cerebral es la del comportamiento, la consciencia o estado mental y carácter del caballo. El diencéfalo o tálamo y el hipotálamo controlan el sistema neuroendocrino y sistema nervioso autónomo. El cerebelo es el en cargado de la coordinación motora. Por el tronco encefálico pasan las vías sensitivas y motoras; aquí se originan los pares craneales y el sistema reticu lar encargado de mantener el estado mental y la
consciencia. También se localizan centros vitales tan importantes como el de la respiración, cardiaco y movimientos intestinales. La médula espinal se divide en distintos segmen tos medulares, de donde parte un nervio medular. En los caballos hay 8 segmentos cervicales (C8), 18 torácicos (T18), 6 lumbares (L6) y 2 o 3 sacros (S2-3). La médula espinal se conecta con los mús culos a través de la neurona motora inferior (NMI) que es la unidad efectora del SNC regulada a su vez por la neurona motora superior (NMS), situada en el área motora de la corteza cerebral. Para que se produzca una respuesta consciente a un estímulo se debe transmitir hasta la corteza ce rebral por una vía sensitiva aferente por la raíz dorsal medular. La NMS lleva la respuesta por la raíz ven tral medular, donde conecta con la NMI y ésta con el músculo efector y actuará de forma consciente. Por lo tanto, la percepción de un estímulo y su respuesta necesita una vía ascendente y otra descendente in tactas. Otra respuesta diferente es la del arco reflejo. Aquí el estímulo viaja por una neurona sensitiva, entra en la médula por la raíz dorsal, luego una interneurona se conecta a la raíz ventral, donde la NMI actúa sobre el músculo efector produciendo la respuesta inconsciente. Los centros nerviosos reciben información sensi tiva a estímulos dolorosos y temperatura: esto es co nocido como nocicepción. La propiocepción, proce dente del aparato locomotor, informa de la posición de las diferentes partes del organismo en el espacio. De este modo, los animales tienen noción de la si tuación y postura de las diferentes partes del cuerpo sin intervención del sentido de la vista. Las vías propioceptivas llevan información al tálamo y al cerebro (propiocepción consciente) o al cerebelo (propiocep ción inconsciente).
Historia clínic a Es esencial en el diagnóstico de las enfermedades neurológicas. Además de los datos generales de edad, raza, sexo, aptitud, se necesita recoger los si guientes datos: • Síntomas observados, inicio y progresión. Los traumatismos y lesiones vasculares suelen te ner un inicio rápido, mientras que inflamaciones, neoplasias o degeneraciones suelen ser procesos crónicos y progresivos. • Cambios en el comportamiento. • Historia de traumatismos. • Otras enfermedades como abortos o síntomas respiratorios puede sugerir infección por Herpesvirus equino 1. • Antecedentes familiares, problemas congénitos. • Número de caballos afectados. • Medio ambiente del caballo (establo, parque). • Cambios en el manejo, incluyendo la dieta, ac ceso a plantas tóxicas... • Vacunaciones y desparasitaciones. • Medicamentos administrados.
Es conveniente disponer de un registro de los datos para apuntar todos los signos que obtenemos del examen neurológico y que nos servirá como ficha clínica del paciente. Además de la exploración neurológica, no se debe olvidar una exploración de la mar cha, del sistema musculoesquelético y de la toma de las constantes vitales para evaluar la gravedad de la lesión neurológica.
Hay que tener en cuenta los problemas de comportamiento en los caballos cuando se realiza una exploración neurológica.
Exploración neurológica de la cabeza N„ óptico (par DO )
En primer lugar hay que fijarse en el comportamiento del caballo. Los animales con lesión cerebral suelen girar de forma compulsiva la cabeza hacia el lado de la lesión. También apreciar el estado mental del ca ballo para evaluar su nivel de consciencia, valorando su respuesta a estímulos visuales, auditivos o dolo rosos. Según la gravedad de la falta de estímulos, el animal se muestra depresivo, en situación de estupor o en coma cuando hay una falta total de respuesta. La posición de la cabeza nos indica la localización de la lesión. Las lesiones cerebrales producen un giro la teral de la cabeza y cuello hacia el lado de la lesión sin afectar a la nuca. En las lesiones vestibulares se produce el giro lateral de la nuca hacia el lado de la lesión pero sin afectar al cuello. Estos síntomas se in crementan al tapar los ojos al caballo. (Ver ficha examen neurológica).
lnen/a los músculos constrictores de la pupila regu lando el diámetro pupilar. Hay que apreciar el tamaño de las pupilas en relación a la luz ambiental y su si metría. También la respuesta a la luz, evaluando los reflejos fotomotores directo e indirecto. Para ello nos situamos en un lugar en penumbra e iluminamos el ojo del caballo con una linterna. La respuesta normal es la contracción de la pupila (miosis); la lesión pro duce el efecto contrario (midriasis).
Exploración de pares craneales
N. troclear (par BV)
Se realiza explorando la cara y la cabeza, los ojos y sus reflejos, anejos oculares, ollares, boca, laringe y faringe.
Junto con el par VI o N. abducens son los responsa bles de la posición del globo ocular dentro de la ór bita y de sus movimientos. Por lo tanto, tenemos que observar la posición de los ojos y sus movimientos, moviendo la cabeza con la mano. Las lesiones de los pares III, IV y VI produce estrabismo lateroventral, dorsomedial y medial, respectivamente.
N„ olf atori o (par I) Tapando los ojos, se le ofrece para oler alimentos, al cohol, etc. Hay que observar la respuesta del animal. La falta de respuesta se llama anosmia.
Responsable de la visión. Hacer el reflejo de amenaza acercando la mano al caballo. Tiene que responder cerrando los párpados. Los potros no lo presentan de una forma completa hasta los 7-14 días. La respuesta anormal indica lesión de las vías aferentes o eferentes.
No oculomotor (par DDO )
Evaluación de la simetría de la cara. Con ello evaluamos posición de los ojos, estrabismos y otras alteraciones en las que se ven implicados los pares craneales. Reflejo de amenaza. Al acercar el dedo al ojo, el caballo responde cerrando los párpados y apartando la cara.
Reflejo pupilar. Con esta prueba se evalúan el N. óptico y el N. oculomotor.
o s o i v r e n a m e t s i s l e d n ó i c a r o l p x E
No tri gémi no (par V)
Nervio trigémino
Tiene fibras motoras encargadas de inervar los mús culos de la masticación y otras fibras sensitivas que recogen la sensibilidad de la cabeza mediante las ramas maxilar, mandibular y oftálmica. La lesión pro voca parálisis con caída de la mandíbula y salida de la lengua con sialorrea. Para evaluar la función sensitiva se pellizca la piel en las regiones inervadas por cada una de las tres ramas. La rama oftálmica se evalúa mediante el reflejo corneal, es decir, tocando ligera mente la córnea con el dedo o con un objeto romo.
INL afoducems (par VI) Se valora la capacidad de retraer el globo ocular apli cando una ligera presión digital sobre el globo por encima del párpado cerrado y notando el reflejo de retracción.
Ramas oftálmica, maxilar y mandibular del N. trigémino.
Proyección externa de las tres ramas del N. trigémino.
Rama oftálmica Rama maxilar Rama mandibular
Presionando encima del párpado para comprobar la capacidad de retracción del globo ocular que regula el N. abducens.
INLfacial (par Vil) Inerva los músculos de la expresión de la cara y las glándulas lacrimales y salivares y por lo tanto controla los movimientos de párpados, orejas, labios y olla res. Se explora mediante el test de amenaza, reflejo palpebral y corneal. Por lo tanto, para detectar una lesión de este nervio es necesario determinar la si metría de la cara y comprobar que no hay caída de la oreja, labios o salida de saliva. El reflejo corneal nos indica el correcto funcionamiento del N. facial.
N. vesf ibu loc oc lear (par VIH) Presenta una rama auditiva que es responsable de la audición y otra rama vestibular responsable del equi librio que controla la posición de la cabeza, cuello, cuerpo y extremidades en relación con la gravedad y el movimiento. Las lesiones vestibulares provocan alteraciones en el equilibrio, giros de la cabeza hacia el lado de la lesión o nistagmos con la fase rápida hacia el lado contrario de la lesión. Los signos de la enfermedad vestibular se agravan tapando los ojos al caballo.
Evaluar la capacidad auditiva de un caballo es difícil. Podemos dar una palmada fuerte y observar la reacción del caballo.
N. glosofaríngeo (par IX), N. vago (par X), N. esp in al ac ces or io (par XI!) Estos pares inervan la faringe y la laringe con ramas motoras y sensitivas. Estos nervios se exploran com probando la deglución normal de alimentos o de agua, o bien, al realizar el sondaje nasogástrico cómo se produce el reflejo de deglución. El síntoma más importante es la parálisis laríngea. La parálisis del N. accesorio espinal provoca atrofia de los músculos del cuello, pero esto es difícil de detectar. N. hipogfloso (p ar XAH) Es el nervio motor de los músculos linguales. Se ex plora intentando extraer la lengua, a lo que el caballo se resiste con fuerza. La lesión bilateral interfiere con la aprehensión y deglución de alimentos.
o s o i v r e n a m e t s i s l e d
La valoración del N. hipogloso se realiza intentando extraer la lengua.
n ó i c a r o l p x E 181
La forma de evaluar el N. glosofaríngeo es observando a los caballos cuando comen y beben.
Exploración de la postura y la marcha Con esta exploración podemos detectar lesiones en el cerebelo, tronco encefálico, médula espinal, ner vios periféricos y músculos. Las alteraciones de la marcha dan lugar a debilidad, ataxia, hipometría o hipermetría. Esto se puede evaluar de 0 a 5 depen diendo de la gravedad, siendo el 0 lo normal y 5 es tando el animal en decúbito.
Caminando al paso con la cabeza y el cuello en extensión. Caminando al paso tirando de la crin y de la cola. Obligando al caballo a giros amplios y cerrados. Andando hacia atrás. Subiendo y bajando planos inclinados. Caminar al paso con los ojos tapados.
Lo primero es observar cuál de los dos miembros presenta una marcha o postura anormal y si hay evi dencias de anormalidades musculoesqueléticas. Por lo tanto observar al animal: • Caminando al paso, andando en paralelo o detrás del caballo para detectar asimetrías.
Distintas maniobras para explorar la postura y la marcha en un caballo.
Si queremos estudiar la posición propioceptiva hay que: • Andar al caballo entre obstáculos. • Obligar a subir escalones o frenar de repente. • Cruzar las extremidades anteriores o forzar un aplomo de base amplia para que corrija su postura.
Evaluación de la debilidad o paresia En los caballos se manifiesta porque arrastran las ex tremidades con desgaste del casco en las lumbres, tropiezan y se muestran torpes, presentan un arco más bajo en la fase del paso. Ai cargar más peso so bre la extremidad más débil, se producen temblores y el animal puede caerse por falta de soporte. Los animales empeoran con los movimientos en círculo y andando sobre planos inclinados con la cabeza elevada. Para comprobar la debilidad de las extremi dades anteriores se tira fuertemente de la crin y la de bilidad de las posteriores se hace tirando fuertemente de la cola. Si encontramos paresia indica lesión de NMS localizada en el tronco encefálico o médula es pinal, nervios periféricos y/o músculos. Sin embargo, la lesión de la NMI produce una parálisis flácida.
Evaluación de la incoordinación o ataxia
Encéfalo de un potro que mostraba ataxia. Las lesiones que presentaban no fueron muy graves.
Se produce por un déficit propioceptivo. Se mani fiesta con marcha inestable y balanceo de la pelvis, tronco o de todo el cuerpo, se les cruzan las piernas, pueden pisarse y tropezarse. Si se les hace caminar en círculos cerrados el miembro afectado pivotea a su alrededor y empeoran los síntomas. Al caminar con la cabeza elevada por un plano inclinado se acentúan los signos de ataxia sobre todo de las ex tremidades posteriores.
Cruzando las extremidades anteriores o realizando la prueba del saco evaluamos la posición propioceptiva del caballo.
Para comprobar el posicionamiento propioceptivo se realizan las siguientes pruebas exploratorias: • Cruzar las extremidades anteriores: el caballo sano corrige enseguida la posición. • Prueba del saco: con las extremidades posterio res. Colocar debajo de una extremidad un saco resistente y estirar de él. El caballo siente que se desplaza su extremidad y corregirá inmediata mente la posición.
Hipermetría Es un movimiento exagerado y sin dirección de las articulaciones. Se observa un sobreestiramiento de los miembros. Puede originar un paso más corto o más largo. Esta dismetría sin paresia es típica de las enfermedades cerebelares.
Hipometría También conocida como espasticidad, rigidez o mar cha envarada. Produce un movimiento rígido y corto de las extremidades. Cuando se presenta sugiere lesión de la NMS o de las vías vestibulares. Como mejor se observa es caminando con el caballo ha cia atrás o subiendo una pendiente con la cabeza elevada.
Exploración del cuello y extremidades anteriores Mediante inspección y palpación podemos apreciar: • Defectos esqueléticos. • Atrofias y asimetrías musculares. • Sudoración local: implica alteración de los tractos simpáticos descendentes de la médula espinal. • Palpación de la musculatura axial y de las vérte bras para comprobar deformidades o dolor. Para realizar la exploración manipularemos el cuello con las manos para comprobar la movilidad normal o bien rigidez o incluso la negativa del caballo a flexionar el cuello. Para estimular el músculo cutáneo to caremos con unas pinzas distintas partes del cuello
para observar la “respuesta cervical” que responde contrayendo los músculos. La exploración propioceptiva se realiza empujando lateralmente al caballo al nivel de la espalda cuando está en estación o caminando. El caballo tiene que mantener el equilibrio y corregir la posición. Si tiramos simultáneamente de la cabezada y de la cola pode mos comprobar la fuerza de cada lado del cuerpo. El animal atáxico tropieza o se equivoca con las extre midades anteriores. También podemos provocar un movimiento ventral o lordosis al pellizcar con los dedos en la reglón de la cruz. Un animal débil arquea más el dorso o incluso dobla las extremidades anteriores.
Exploración del tro nco y extrem idades p osteriores Lo primero es observar y palpar las malformaciones o defectos esqueléticos, asimetrías musculares provo cadas por lesiones en la sustancia gris toracolumbar de la médula espinal o puntos de sudoración local. El reflejo cutáneo o panicular se realiza al pinchar en la cara lateral del tronco, provocando la contrac ción del músculo cutáneo y observando cómo el ca ballo sacude la piel. El estímulo sensitivo viaja a los segmentos medulares C8-T1. Las lesiones que se encuentren en esta vía no permitirán la respuesta. La evaluación de la propiocepclón se lleva a cabo presionando lateralmente en la pelvis y tirando fuerte de la cola cuando el animal está en marcha. El reflejo panicular se realiza pellizcando la piel del tronco y observando la respuesta del músculo subcutáneo.
Exploración de co la y ano Con esta exploración se evalúan las estructuras iner vadas por los nervios de los segmentos medulares sacros y coccígeos. Lo primero es determinar el “tono de la cola". Al levantar la cola siempre se siente que el animal quiere bajarla. Si está ílácida, sin movi mientos voluntarios, indica lesión en los segmentos sacrococcígeos. Para comprobar el reflejo perineal se pellizca la piel del periné con unas pinzas notando la flexión de la cola cuando la sostenemos con la mano. En el reflejo anal se nota la contracción del esfínter anal al pellizcar el ano o simplemente al to carlo con la punta del termómetro. Estos reflejos es tán mediados por el nervio pudendo y por los nervios sacrococcígeos.
Ano dilatado por lesión de los nervios sacrococcígeos.
Cuando introducimos el termómetro en el recto podemos comprobar el reflejo anal.
Exploración de caballos en decúb ito Dependiendo de si el caballo se puede levantar o no de un decúbito nos indica a qué nivel se produce una lesión. Si puede utilizar las manos para levantarse sugiere que la lesión está por detrás de T2. Si sólo puede levantar la cabeza, la lesión se localiza muy craneal en la médula cervical. Los reflejos de las extremidades se evalúan me jor en potros neonatos. Los reflejos espinales que se pueden evaluar son conocidos como reflejo flexor. Para ello se utilizan unas pinzas, con las que se
pellizca la parte distal de la extremidad consiguiendo la flexión del menudillo, rodilla, codo y hombro. Aquí intervienen los nervios de los segmentos medulares C6-T2. En las extremidades posteriores se explora el re flejo flexor pellizcando la piel más distal de la extre midad y observando su flexión. El reflejo patelar se realiza sosteniendo la extremidad parcialmente flexionada y percutiendo con el martillo debajo de la rótula lo que origina la extensión de la rodilla.
Obtenció n d e líquido c efalorraquídeo La recogida del liquido cefalorraquídeo (LCR) esta indicada en los casos de confirmación del diagnós tico presuntivo de una enfermedad neurológica. Su interpretación tiene limitaciones, pues si el LCR se toma lejos de la lesión, probablemente no mostrará alteraciones. En el caballo se puede recoger a nivel lumbosacro con el animal de pie y sedado, o bien en la región atlantooccipital con el animal tumbado o anestesiado. Con la muestra se hace un análisis visual para comprobar que el liquido es claro, sin color y no coa gula. La turbidez representa hipercelularidad y un color rojizo indica la presencia de sangre. Un color amarillento se atribuye a la bilirrubina que se define como xantocromía. El examen completo del LCR, con cultivo microbiológico incluido se lleva a cabo en laboratorios especializados. En la tabla 2 se mues tran los valores de referencia para el LCR del caballo.
^^^^^^Puncjór^tlantoocciDital • Se necesita una sedación profunda y colocar al caballo en decú bito lateral. • Depilar y desinfectar bien la piel antes de proceder a la punción. • Utilizar una aguja de 19G y 7,5 cm de longitud. La aguja se in serta perpendicularmente al eje de la médula espinal y paralelo al suelo en el punto medio del triángulo formado por la protuberan cia occipital externa y los bordes craneales del ala del atlas. • Al Insertar la aguja se aprecia una ligera resistencia al penetrar en la duramadre. • Después de este punto la resistencia disminuye, y la profundidad a la que se encuentra el líquido ya se ha alcanzado. • Aspirar con la jeringa con precaución para obtener un líquido acuoso y claro. • Si se alcanza una profundidad de 10 cm y se toca el hueso sin obtener LCR, se puede redirigir la aguja para intentar obtener el líquido. • Recoger el líquido en tubos con EDTA y sin aditivos para citología y bioquímica respectivamente.
Valores de referencia del LCR en caballos
Punc'ón lumbosacra
(Green, Constantinescu y Kroll, 1993)
Punción atlantooccipital
Punción lumbosacra
1,004-1,008
1,004-1,008
Leucocitos (pl)
0-7
0-7
Eritrocitos (pl)
<600
<600
Proteínas totales (mg/dl)
10-120
10-120
Albúmina (mg/dl)
24-51
24-56
3-8
3-10,5
30-70 35%-75% valores del plasma
40-75 45%-75% valores del plasma
CK (Ul)
0-8
0-8
LDH (Ul)
0-8
0-8
1,92±0,12
2,3±0,21
Sodio (mEq/l)
140-150
140-150
Potasio (mEq/l)
2,5-3,5
2,5-3,5
Cloro (mEq/l)
95-123
95-123
Calcio (mg/dl)
2,5-6
2,5-6
Fósforo (mg/dl)
0,5-1,5
0,5-1,5
5-20
5-20
Parámetro Densidad
IgG (mg/dl) Glucosa (mg/dl)
Lactato (mg/dl)
Urea (mg/dl)
• Se realiza con el animal de pie y ligeramente sedado. • Preparar quirúrgicamente un área de 30x30 cm sobre el espacio lumbosacro. • El lugar de inserción de la aguja es la línea media inmediatamente caudal a la apófisis es pinosa de L6. • Infiltrar un anestésico y con un bisturí hacer una pequeña incisión en la piel. Se utiliza una aguja de 18G y 15 cm de longitud. • Insertar la aguja con las manos verticalmente, decididamente y con precaución por si se pro duce un movimiento inesperado del caballo. • Se traspasa el ligamento lumbosacro y al pe netrar en la duramadre y espacio aracnoides produce una ligera respuesta local. • Si aquí tropezamos con el hueso, entonces retirar la aguja antes de redirigirla. • Una vez que se ha penetrado en el espacio aracnoides, que se nota por la reacción del animal, el cono de la aguja se llena de líquido y entonces ya se puede aspirar.
Otras técnic as exploratorias No son de rutina y se realizan en hospitales de refe rencia donde se encuentran los aparatos para obte ner las imágenes. Las angiografías se utilizan para detectar neoplasias que ocupan el interior del crá neo; las venografías utilizan un medio de contraste que permiten ver el seno cavernoso de la base del cráneo y que es capaz de detectar hemorragias en
la región. Las mielografías se utilizan para buscar puntos de compresión medular producidas por luxa ciones o fracturas. La tomografía axial computarizada (TAC) ha desplazado a las anteriores pues per mite obtener imágenes de gran resolución útiles en el diagnóstico de neoplasias, hidrocefalia, abscesos cerebrales y hemorragias.
Ficha de examen neurológico del caballo [
(adaptado de Matthews y Andrews, 1990)
Datos generales Nombre del propietario
Población
Nombre del caballo
Edad
Raza
Sexo
Aptitud
Peso
Historia clínica
Postura/apariencia
Evaluación nervios craneales Izquierdo N. olfatorio (I) N. óptico (II) respuesta de amenaza, tamaño pupilar, reflejo pupilar N. oculomotor (III) tamaño y simetría pupilar, reflejo pupilar, posición ocular N. troclear (IV) posición ocular N. trigémino (V) simetría cara, reflejo palpebral, retracción ocular N. abducens (VI) posición y retracción ocular N. facial (VII) expresión facial, simetría músculos, reflejo palpebral N. vestibulococlear (VIII) posición ocular N. glosofaríngeo (IX) reflejo de deglución N. vago (X) reflejo deglución, disfagia N. accesorio espinal (XI) atrofia músculo del cuello N. hipogloso (XII) tono de la lengua Simetría de la cabeza, cuello, cuerpo: Manipulación de la cabeza y el cuello: __________________ Derecha-izquierda: ___________________________________ Arriba-abajo:________________________________________ Movimientos involuntarios espontáneos (trémor, mioclonias): Descripción de la marcha al paso y al trote:
Derecho
Realización de círculos:
Grandes, a la izquierda Pequeños, a la izquierda Con ojos vendados Plano inclinado arriba-abajo
Grandes, a la derecha Pequeños, a la derecha Con obstáculos Cabeza elevada Marcha y postura {grado de 0 a 5) 0= sin déficits en la marcha 1= déficit escasamente perceptibles, em peoran al levantar la cabeza 2= déficit que se nota al paso 3= déficit en descanso y al paso; casi se cae con la cabeza levantada 4= se cae o casi en una marcha normal 5= en decúbito
Bamboleo: Delante: Propiocepción: EAI EPI Miembros anteriores
EAD EPD Miembros posteriores Motor Espasticidad
Debilidad
Sensitivo Ataxia
Hipermetría
EAI EAD EPI EPD Reflejos Patelar Extensor digital Tríceps Flexor miembro torácico Flexor miembro pélvico Anal Respuesta nociceptiva:
Hiperreflexia
Normal
Hiporreflexia
Exagerada: ____________________ Normal: ______________ Disminuida:
Tono de la cola: Sistema autónomo: Incontinencia urinaria:
Incontinencia fecal:
Sudoración:
Sensibilidad cutánea: Valoración/comentarios: Localización de la lesión: Diagnóstico presuntivo: Análisis de LCR: Células
Proteínas
Cultivo
Andrews
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