1
LAPORAN PRAKTIKUM ILMU KESEHATAN TERNAK
Disusun Oleh:
Kelompok VIID M. Yusuf Eko Santoso Yulianti Puji Astuti Latifatul Basiroh Diky Trizana Rosalia Greta H. Muhammad Fahim R.
23010112130185 23010112140209 23010112130205 23010112130182 23010112140208 23010112130186
FAKULTAS PETERNAKAN DAN PERTANIAN UNIVERSITAS DIPONEGORO SEMARANG 2014
2
LEMBAR PENGESAHAN
Judul
: LAPORAN PRAKTIKUM ILMU KESEHATAN TERNAK
Kelompok
: VIID (TUJUH D)
Fakultas
: PETERNAKAN DAN PERTANIAN
Tanggal Pengesahan :
DESEMBER 2014
Menyetujui,
Asisten Pembimbing
Asisten Koordinator Praktikum
-----Vinda Armalani----NIM. 23010111140216
----Dela Ayu Lestari----NIM. 23010111140247
Mengetahui,
Koordinator Umum
Koordinator Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak
---Imam Azis Setiawan--NIM. 23010111120052
-----drh. Siti Susanti, Ph.D----NIP. 19780605 200501 2 003
3
RINGKASAN KELOMPOK VIID. 2014. Laporan Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak. (Asisten : VINDA ARMALANI). Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan materi Anamnesa dilaksanakan pada hari kamis tanggal 6 November 2014, pukul 09.00 – 11.00 di peternakan milik Bapak Saryanto Desa Kalisidi, Gunung Pati, Semarang. Materi Pemeriksaan Parasit dilaksanakan pada hari Senin tanggal 22 November 2014 pukul 11.00 WIB dan dengan materi Nekropsi yang dilaksanakan pada hari Minggu tanggal 30 November 2014 pukul 09.00-11.00 WIB di Laboratorium Fakultas Peternakan dan Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang. Materi yang digunakan dalam Praktikum Pemeriksaan Kesehatan Ternak Ruminansia (domba indukan dan anakan, termometer, stetoskop, wearpack dan sepatu boot). Metode yang digunakan adalah anamnesa dengan cara wawancara kepada peternak. Praktikum Pemeriksaan Mikroskopis Feses dan Preparat Awetan Parasit (mortar, tabung sentrifuse, gelas objek, kaca penutup, mikroskop, dan awetan parasit ektoparasit dan endoparasit). Metode yang digunakan pada pemeriksaan mikroskopis feses adalah metode natif dan sentrifuse. Praktikum Pengambilan Serum dan Pengamatan Kesehatan Ternak Unggas (ayam broiler, spuit, gunting bedah, pisau bedah). Hasil yang diperoleh dari Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak mengenai Pemeriksaan Kesehatan Ternak yang menggunakan metode anamnesa adalah ternak dalam keadaan sehat dengan kondisi kandang yang mendukung. Pemeriksaan Mikroskopis Feses tidak ditemukan adanya telur cacing pada feses domba sentrifuse. Pengamatan Awetan Parasit, terdapat jenis/macam ektoparasit dan endoparasit. Pengambilan Serum dan Kesehatan Ternak Unggas, pengambilan darah dan memisahkan serumnya. Kesehatan Ternak Unggas kurang baik dikarenakan pada usus timbul bintik-bintik merah yang disebabkan oleh peradangan. Kata Kunci : Anamnesa, parasit, nekropsi
4
KATA PENGANTAR
Puji syukur kita panjatkan kepada Allah SWT karena hanya dengan rahmat dan hidayahNya kami kelompok VIID dapat menyelesaikan Laporan Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan baik Penulis mengucapkan banyak terima kasih atas terselesaikanya Laporan ini kepada drh. Siti Susanti, Ph.D selaku koordinator praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dan kepada Vinda Armalani selaku asisten pembimbing yang telah banyak memberikan bimbingan dan pembelajaran yang sangat membantu hingga laporan ini selesai. Tidak lupa Penulis mengucapkan terima kasih terhadap teman-teman dan semua pihak yang atas kerjasamanya dalam penyusunan sehingga laporan ini dapat terselesaikan tepat pada waktunya. Kami harap, dengan membaca laporan ini dapat memberi manfaat bagi kita semua, dalam hal ini dapat menambah wawasan kita mengenai mata kuliah Ilmu kesehatan Ternak. Memang laporan ini masih jauh dari sempurna, maka kami mengharapkan kritik dan saran dari pembaca demi perbaikan menuju arah yang lebih baik.
Semarang,
Desember 2014
Penulis
5
DAFTAR ISI Halaman RINGKASAN ............................................................................................................i KATA PENGANTAR ...............................................................................................ii DAFTAR ISI ..............................................................................................................iii DAFTAR ILUSTRASI ..............................................................................................vi DAFTAR LAMPIRAN ..............................................................................................vii
ACARA 1. ANAMNESA BAB I PENDAHULUAN ..........................................................................................2 BAB II MATERI DAN METODE ............................................................................3 2.1 Materi .....................................................................................................3 2.2 Metode ...................................................................................................3 2.2.1 Analisis Kondisi Peternakan Rakyat ..............................................3 2.2.2 Pemeriksaan Kesehatan Ternak Ruminansia .................................4 BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN....................................................................5 3.1 Analisis Kondisi Peternakan Rakyat ......................................................5 3.1.1 Pengamatan Kondisi Lingkungan dan Kandang Ternak ................6 3.1.2 Tatalaksana .....................................................................................8 3.2 Pemeriksaan Kesehatan Ternak .............................................................11 3.2.1 Pemeriksaan Tingkah Laku ............................................................11 3.2.2 Pemeriksaan Fisik Tubuh Ternak ...................................................12 BAB IV SIMPULAN DAN SARAN.........................................................................14 4.1 Simpulan ................................................................................................14 4.2 Saran ......................................................................................................14 DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................15 ACARA 2. PEMERIKSAAN PARASIT BAB I PENDAHULUAN ..........................................................................................18 BAB II MATERI DAN METODE ............................................................................19 2.1 Materi .....................................................................................................19
6
2.2 Metode ...................................................................................................19 2.2.1. Pemeriksaan Feses Metode Natif ..................................................19 2.2.2. Pemeriksaan Feses Metode Sentrifuse ..........................................20 2.2.3. Pengamatan Preparat Parasit .........................................................20 BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN....................................................................21 3.1 Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Feses...................................................21 3.1.1 Metode Natif ..................................................................................21 3.1.2 Metode Sentrifuse ..........................................................................22 3.2 Pengamatan Preparat Parasit ..................................................................23 3.2.1 Ektoparasit ......................................................................................23 3.2.1.1 Boophilus microplus ..........................................................23 3.2.1.2 Cteno cephalides canis ......................................................24 3.2.1.3 Bovicola bovis ....................................................................26 3.2.2 Endoparasit .....................................................................................27 3.2.2.1 Moniezia sp. .......................................................................27 3.2.2.2 Fasciola gigantica .............................................................28 3.2.2.3 Raillietina sp. .....................................................................30 BAB IV SIMPULAN DAN SARAN.........................................................................32 4.1 Simpulan ................................................................................................32 4.2 Saran ......................................................................................................32 DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................33 ACARA 3. NEKROPSI BAB I PENDAHULUAN ..........................................................................................36 BAB II MATERI DAN METODE ............................................................................37 2.1 Materi .....................................................................................................37 2.1 Metode ...................................................................................................37 2.2.1. Pemeriksaan Kesehatan Unggas (Broiler).....................................37 2.2.2. Pengambilan Darah .......................................................................38 2.2.3. Nekropsi ........................................................................................38 BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN....................................................................39 3.1 Pengamatan Perfomans Unggas .............................................................39 3.2 Pengambilan Darah ................................................................................40 3.3 Nekropsi .................................................................................................42 3.3.1 Pemeriksaan Permukaan Kulit Ayam ............................................42 3.3.2 Pemeriksaan Kondisi Warna dan Jaringan dibawah Kulit .............43 3.3.3 Pemeriksaan Semua yang Nampak setelah Otot Dada dan Perut -------------di buka...........................................................................................44 3.3.4 Pemeriksaan Saluran Pencernaan ...................................................45 3.3.5 Pemeriksaan Hati............................................................................47
7
3.3.6 Pemeriksaan Jantung ......................................................................48 3.3.7 Pemeriksaan Ginjal ........................................................................49 3.3.8 Pemeriksaan Pancreas ...................................................................50 3.3.9 Pemeriksaan Trachea .....................................................................51 3.3.10 Pemeriksaan Paru – paru ..............................................................52 3.3.12 Pemeriksaan Syaraf ......................................................................53 BAB IV SIMPULAN DAN SARAN.........................................................................54 4.1 Simpulan ................................................................................................54 4.2 Saran ......................................................................................................54 DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................55 LAMPIRAN ...............................................................................................................57
8
DAFTAR ILUSTRASI
No.
Halaman
1. Wawancara dengan peternak..................................................................................5 2. Kondisi Lingkungan dan Kandang Ternak ............................................................6 3. Kondisi ternak domba ............................................................................................8 4. Pengamatan Jarak Jauh dan Jarak Dekat ................................................................11 5. Pemeriksaan Fisik Tubuh Ternak...........................................................................12 6. Boophilus microplus ..............................................................................................23 7. Cteno cephalides canis...........................................................................................24 8. Bovicola bovis ........................................................................................................26 9. Moniezia sp. ...........................................................................................................27 10. Fasciola gigantica................................................................................................28 11. Raillietina sp. .......................................................................................................30 12. Pengamatan Perfomans Unggas ...........................................................................39 13. Sampel Darah Ayam Broiler ................................................................................40 14. Kondisi Kulit Ayam Broiler .................................................................................42 15. Kondisi Warna dan Jaringan dibawah Kulit ........................................................42 16. Semua yang Nampak setelah Otot Dada dan Perut Dibuka .................................44 17. Saluran Pencernaan ..............................................................................................45 18. Hati .......................................................................................................................47 19. Jantung .................................................................................................................48 20. Ginjal ....................................................................................................................49
9
21. Pancreas ...............................................................................................................50 22. Trachea ................................................................................................................51 23. Paru-paru ..............................................................................................................52 24. Syaraf ...................................................................................................................53
10
DAFTAR LAMPIRAN No.
Halaman
1. Pemeriksaan Kesehatan Ternak Ruminansia .........................................................57 2. Pemeriksaan Feses dan Pengamatan Preparat Parasit ............................................60 3. Pemeriksaan Kesehatan Ternak Unggas ................................................................65
11
ACARA 1 ANAMNESA
12
BAB I
PENDAHULUAN
Anamnesa adalah upaya mencari tahu dengan bertanya kepada pemilik hewan, mengenai segala sesuatu yang berhubungan dengan penyakit yang diderita oleh hewan yang diperiksa (sejarah hewan sebelum sakit, dan keadaan hewan pada saat sakit). Kegiatan ini sangat efektif untuk memahami kondisi yang ada dalam peternakan khususnya peternakan ruminansia terutama dalam hal kesehatan ternak. Pemeriksaan kesehatan ternak yang dapat dilakukan bisa berupa pengamatan tingkah laku, kemudian dapat dilanjutkan dengan pemeriksaan fisik. Pemeriksaan kesehatan yang dilakukan merupakan modal penting untuk memajukan sebuah usaha peternakan. Praktikum ini bertujuan untuk menganalisis kondisi peternakan dan kesehatan ternak yang ada. Adapun manfaat dari praktikum ini adalah untuk meningkatkan daya analisa mahasiswa khususnya dalam hal kondisi peternakan dan kesehatan ternak yang terjadi di peternakan secara langsung.
13
BAB II
MATERI DAN METODE
Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan materi Pemeriksaan Kesehatan Ternak Ruminansia, dilaksanakan pada hari kamis tanggal 6 November 2014, pukul 09.00 – 11.00 di peternakan milik Bapak Saryanto Desa Kalisidi, Gunung Pati, Semarang.
2.1. Materi
Alat yang digunakan dalam praktikum ini yaitu termometer untuk mengukur suhu rektal, stetoskop untuk mendengarkan frekuensi denyut nadi dan gerak rumen, stopwatch untuk mengukur waktu, catatan dan alat tulis untuk mencatat hasil wawancara. Bahan yang digunakan dalam praktikum ini yaitu domba induk dan anakan.
2.2. Metode
2.2.1. Analisis Kondisi Peternakan Rakyat
Untuk analisis kondisi peternakan rakyat, kegiatan wawancara dilakukan dengan tanya jawab dengan pemilik peternakan seperti pendidikan peternak, asal mula beternak, pemilik, alamat, tahun berdiri, ilmu otodidak atau belajar, jumlah ternak, penyakit yang pernah ada, gejala dan cara menangani, pencegahan penyakit, jenis pakan dan pemberian pakan, dan cara membersihkan kotoran.
14
2.2.2. Pemeriksaan Kesehatan Ternak Ruminansia
Untuk pengamatan kondisi lingkungan, dilakukan pengamatan meliputi jarak kandang, sumber air, suhu udara, tiupan angin, tempat pakan dan minum, bangunan kandang dan kebersihan kandang. Sedangkan kegiatan pemeriksaan kesehatan ternak, dilakukan pemeriksaan seperti aktivitas ternak, nafsu makan, pemeriksaan fisik (suhu rektal, gerakan pernafasan, kecepatan pulsus, gerak usus, gerak rumen, kondisi feses dan urin), dan pengambilan sampel feses.
15
BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN 3.1. Analisis Kondisi Peternakan Rakyat
Berdasarkan hasil praktikum didapatkan hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 1. Wawancara dengan peternak
Peternakan domba milik Bapak Suryanto berada di Desa Kalisidi, Gunung Pati. Beliau mendapat ilmu peternakan dari pendidikannya di D3 MUP. Peternakan domba ini mulai berdiri pada tahun 2013. Jumlah ternak domba yang dipelihara sekarang ada 8 ekor jantan, 1 betina dan 1 ekor cempe. Penyakit yang biasanya menyerang ternak domba adalah pilek. Identifikasi penyakit dilakukan dengan cara melihat menurunnya nafsu makan ternak dan keluarnya lendir pada hidung ternak, penanganan dilakukan dengan melakukan exercise. Ternak terserang pilek kemungkinan dikarenakan suhu udara sekitar
16
yang dingin serta kandang yang kurang tertutup. Menurut Subronto (2003) bahwa faktor-faktor yang dapat mempengaruhi kesehatan hewan antara lain faktor mekanis, termis, nutrisi, pengaruh zat kimia, keturunan, dan sebagainya. Pencegahan penyakit dilakukan dengan cara vaksin, pemberian obat cacing (Vermi parasol) , obat kutu ( Subkutan ), setiap sebulan sekali. Jenis pakan yang diberikan pada ternak adalah hijauan berupa rumput lapang dan rumput gajah serta diberi konsentrat. Bapak Suryanto member pakan dombanya dua kali sehari, waktu pemberian pakan pada pukul 08.00 dan 22.00 malam. Pagi hari pukul 08.00 domba di beri konsentrat 400 gram/ekor setelah konsentrat habis diberi hijauan berupa rumput lapang dan rumput gajah. Malam hari pukul 22.00 domba hanya diberi pakan hijauan.
3.1.1. Pengamatan Kondisi Lingkungan dan Kandang Ternak
Berdasarkan hasil praktikum didapatkan hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 2. Kondisi Lingkungan dan Kandang Ternak
17
Jarak kandang dengan rumah sekitar 50 meter, jarak kandang tersebut sudah cukup baik karena tidak terlalu dekat dengan rumah atau pemukiman. Selain ternak domba terdapat ternak kambing dan ayam di area kandang tersebut. Sumber air didapat dari jet pom, suhu lingkungan kandang 29ᵒC dan kecepatan angin 7 mphMw. Menurut pendapat Suprijatna,et.al (2008 ) yang menyatakan bahwa lokasi kandang sebaiknya agak jauh minimal 10 m dari rumah penduduk. Banyak tanaman yang tumbuh di sekitar kandang seperti sayuran, rempahrempah, pohon durian dan rumput lapangan. Sehingga membuat sejuk dan nyaman pada lingkungan peternakan. Kondisi lingkungan sangatlah mendukung karena memenuhi syarat. Jahi (2005) yang menambahkan bahwa disekitar kandang sebaiknya ditanami beberapa pohon-pohon atau hijauan agar mudah dalam mencari pakan dan menambahkan oksigen untuk ternak. Sifat bangunan semi permanen, kandang dibuat panggung dengan dinding setengah terbuat dari bambu, alas dari bilah kayu. Kondisi kandang yang bersih, tidak lembab dan tidak becek membuat ternak nyaman berada di dalam kandang. Menurut pendapat Zaida et al (2008) menyatakan bahwa kandang domba ada dua tipe yaitu tipe permanen dan semi permanen. Sebaiknya dalam pembuatan tempat pakan dan tempat minum bagi ternak domba adalah permanen. Pada sekitar kandang domba terdapat kandang kambing dan unggas.
Zaida et al (2008)
menambahkan bahwa tidak ada masalah apabila di sekitar peternakan domba ada peternakan lain asalkan tidak saling menggangu dan tidak membahayakan.
18
3.1.2. Tatalaksana Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diperoleh data sebagai berikut:
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 3. Kondisi ternak domba
Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diketahui bahwa kebersihan ternak domba dan kandang selalu terjaga yaitu ditandai dengan bulu pada domba bersih, tidak terdapat kutu (ektoparasit), kondisinya sehat, serta kandang yang cukup bersih ditandai dengan tidak ada timbulnya bau yang tidak sedap atau menyengat. Hal tersebut dikarenakan ternak domba selalu dimandikan secara rutin yaitu 1 minggu sekali dan pembersihan kotoran atau feses domba tersebut yaitu dengan cara disiram menggunakan air yang bertekanan tinggi agar dapat langsung mengalir ke selokan. Berdasarkan pendapat Rismayanti (2010) bahwa domba sebaiknya dimandikan secara rutin seminggu sekali agar tubuhnya
19
tidak kotor dan tidak menjadi sarang penyakit. Berdasarkan pendapat Nugroho (2011) bahwa kebersihan kandang harus terjaga yaitu dengan membersihkan kandang dua kali sehari pada pagi dan sore hari, kegiatan kebersihan kandang ini termasuk kegiatan sanitasi yang meliputi sanitasi kandang, sanitasi lingkungan, sanitasi peralatan, sanitasi lingkungan perkandangan, dan sanitasi pekerja. Pakan yang diberikan pada ternak domba yaitu konsentrat sebanyak 400 g/ekor/hari yang diberikan pada pukul 08.00 WIB, dan hijuan yaitu rumput lapangan dan rumput gajah diberikan setelah konsentrat tersebut telah habis, kemudian pada pukul 22.00 WIB ternak domba diberikan pakan tambahan yaitu hijauan. Berdasarkan pendapat Rismayanti (2010) bahwa pemberian pakan yang baik adalah sesuai dengan kebutuhan nutrisi ternak dan jumlahnya disesuaikan dengan status fisiologis ternaknya, serta domba memerlukan bahan pakan berupa hijauan dalam jumlah besar yaitu sekitar 90 %. Menurut pendapat Hudallah (2007) bahwa pemberian konsentrat diberikan 2 jam sebelum pemberian pakan kasar dengan tujuan untuk meningkatkan kecernaan BK dan bahann organik ransum, selain itu pola pemberian pakan tersebut dapat merangsang aktivitas mikroba rumen sehingga dapat meningkatkan daya cerna dan konsumsi hijauan. Penyakit yang sering terjadi pada ternak domba yaitu influenza (flu) ditandai dengan adanya lendir yang sering keluar pada hidung domba dan nafsu makan juga menurun. Cara penanganan penyakit influenza (pilek) pada ternak domba yang terkena penyakit tersebut yaitu ternak domba dijemur dengan cara diumbarkan (exercise) agar ternak domba dapat memperoleh sinar matahari secara langsung dan aktif untuk bergerak. Pencegahan penyakit pada ternak domba yaitu
20
setiap bulan domba diberikan vaksin, obat cacing (vermin prazoi), obat kutu dengan metode subkutan, dan selalu diberikan vitamin. Berdasarkan pendapat Rismayanti (2010) bahwa kesehatan menentukan tingkat keberhasilan usaha ternak domba, oleh karena itu ternak domba harus sehat, kandang harus bersih, air minum diberikan teratur dan bersih, dan penyakit yang sering terjadi pada ternak domba yaitu bloat (kembung), cacing, dan kudis (kurap, scabies). Darmono dan Hardiman (2011) menyatakan bahwa faktor yang menyebabkan terjadinya penyakit pada ternak domba yaitu a). manajemen pemeliharaan meliputi sistem perkandangan, pakan, dan kontrol kesehatan ternak, b). kualitas lingkungan meliputi kebersihan, dan c). wabah (outbreak), selain itu pencegahan yang dapat dilakukan yaitu manajemen pemeliharaan yang baik, sistem perkandangan yang selalu dibersihkan, cukup ventilasi, tidak lembab dan populasinya tidak terlalu padat.
21
3.2. Pemeriksaan Kesehatan Ternak 3.2.1. Pemeriksaan Tingkah Laku Berdasarkan hasil praktikum didapatkan hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 4. Pengamatan Jarak Jauh dan Jarak Dekat
Pengamatan jarak jauh dapat dilihat bahwa ternak domba baik induk maupun anakan memiliki kondisi tubuh yang sehat dan bobot badan yang memenuhi, hal ini dapat diketahui dengan melihat bentuk kaki yang simetris antara depan dan belakang, bulu yang halus dan bersih, nafsu makan yang tinggi, punggung lurus dan memiliki proporsi tubuh yang baik. Menurut pendapat Bambang (1990) yang menyatakan bahwa domba yang baik memiliki punggung lurus, dada dalam dan lebar serta tidak cacat, kaki lurus dan alat kelamin normal. Dijelaskan lebih lanjut oleh pendapat Mulyono (2011) yang menyatakan bahwa domba yang baik memiliki ciri-ciri yaitu ukuran badan besar, perut normal, dada dalam dan lebar, kaki kokoh dan alat kelamin simetris.
22
Pengamatan jarak dekat dapat diketahui dengan melihat ternak memiliki kesehatan yang baik, hal ini ditunjukkan dari ternak yang memiliki sikap tanggap yang cepat ketika peternak datang, ternak tidak memiliki kelainan tubuh, kondisi lubang tubuh seperti mulut, telinga, mata, anus, alat kelamin, dan putting bersih. Hal ini sesuai dengan pendapat Bambang (1998) yang menyatakan bahwa ternak yang memiliki kesehatan yang baik ditandai dengan bagian mulutya tidak mengeluarkan lendir, kaki simetris, dan mata besinar. Ditambahkan oleh Santosa (2010) menyatakan bahwa struktur kaki yang lurus dan simetris akan lebih kuat menopang berat badan ternak daripada kaki yang tidak lurus dan simetris, karena beban berat tubuh akan ditahan dengan seimbang oleh kedua kaki.
3.2.2. Pemeriksaan Fisik Tubuh Ternak
Berdasarkan hasil praktikum didapatkan hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 5. Pemeriksaan Fisik Tubuh Ternak
23
Berdasarkan hasil praktikum menunjukkan bahwa kondisi domba secara umum dalam keadaan sehat. Untuk domba induk, frekuensi nafas 40/menit, suhu rektal 38,10C, denyut nadi 72/menit, dan gerak rumen 1/menit. Sedangkan domba anakan, frekuensi nafas 60/menit, suhu rektal 38,20C, denyut nadi 75/menit, dan gerak rumen 2/menit. Kondisi ini menunjukkan domba dalam kondisi normal karena pemeliharaan domba dari peternak maupun kondisi lingkungan yang dilakukan secara umum sudah baik. Hal ini sesuai dengan hasil penelitian Tajiddudin (2006) bahwa rata-rata frekuensi nafas domba antara 20,00 - 43,96, rata-rata suhu rektal 38,35-40,68, dan rata-rata denyut nadi 60,58-89,42. Sedangkan untuk gerak rumen menurut (Widiyono et al., 2003) mulai dapat terdeteksi pada umur 4 minggu (28-33) dengan frekuensi sebesar 0,63 kali/menit dan cenderung meningkat seiring bertabahnya umur menjadi
1,75 kali/menit
(umur 84-90 hari). peningkatan aktivitas gerak rumen berkaitan dengan aktivitas konsumsi pakan padat (rumput/hijauan) dan peningkatan aktivitas metabolik rumen yang telah dimulai dan semakin meningkat sejak umur 4 minggu.
24
BAB IV
SIMPULAN DAN SARAN 4.1. Simpulan
Secara umum kondisi peternakan dan kesehatan ternak dalam kondisi yang baik, hal ini karena memang peternak sangat memperhatikan kesehatan ternaknya. Ini terlihat dari pemberian obat cacing dan kutu yang diberikan setiap sebulan sekali.
4.2. Saran
Praktikum sebaiknya dilakukan di peternakan yang sudah besar, agar lebih memahami penanganan kesehatan ternak.
25
DAFTAR PUSTAKA
Bambang, A.M. 1990. Ternak Potong Seri Budidaya. Kanisius, Yogyakarta. Bambang, C. 1998. Beternak Domba dan Kambing. Penerbit Kanisius. Yogyakarta. Darmono dan Hardiman. 2011. Penyakit Utama yang Sering Ditemukan pada Ruminansia Kecil (Kambing dan Domba). Workshop Nasional, Bogor. Hudallah, C. M. S. Lestari dan E. Purbowati. 2007. Persentase Karkas dan Non Karkas Domba Lokal Jantan dengan Metode Pemberian Pakan yang Berbeda. Seminar Nasional Teknologi Peternakan dan Veteriner, Semarang. Jahi, A. (2005). Bagaimana Respon Petani Miskin di dua Desa Tepi Hutan, di Kecamatan Ujung Jaya Kabupaten Sumedang, Sumedang. Ludgate, P. J. 2006. Sukses Beternak Kambing dan Domba. Agro Inovasi, Jakarta. Mulyono. 2011. Penggemukan Kambing Potong. Penebar Swadaya, Jakarta. Nugroho, H. 2011. Manajemen Pemeliharaan Kambing Peranakan Etawa di Peternakan Bumiku Hijau Yogyakarta. Tugas Akhir : Universitas Sebelas Maret, Surakarta. Rismayanti, Y. 2010. Petunjuk Teknis Budidaya Ternak Domba. Balai Pengkajian Teknologi Pertanian (BPTP), Bandung. Santosa, U. 2010. Mengelola Peternakan Sapi secara Profesional. Penebar Swadaya, Jakarta. Subronto. 2003. Ilmu Penyakit Ternak (Mammalia) I. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta. Supriajatna, E., U. Atmarsono, dan Ruhyat K. 2008. Ilmu Dasar Ternak Unggas. Penebar Swadaya. Jakarta. Tajiddudin Mukhamad. 2006. Pengaruh Pemberian Anti Stres terhadap Pemulihan Konsumsi Pakan dan Kondisi Fisiologis Domba Lokal Setelah Pengangkutan. Fakultas Petemakan Universitas Diponegoro Semarang.
26
Widiyono I., H. Wuryastuti, S. Indarjulianto, dan H. Purnamaningsih. 2003. Frekuensi Nafas, Pulsus, dan Gerak Rumen serta Suhu Tubuh pada Kambing Peranakan Ettawa Selama 3 Bulan Pertama Kehidupan Pasca Lahir. Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Gajah Mada. Zaida, Handarto dan Natari. 2008. Analisis Pengubahan Iklim Mikro didalam Kandang Domba Garut dengan Metode Pengendalian Pasif. Garut.
27
ACARA 2 PEMERIKSAAN PARASIT
28
BAB I
PENDAHULUAN
Parasit adalah hewan renik yang dapat menurunkan produktivitas hewan yang ditumpanginya. Parasit dapat menyerang manusia dan hewan, seperti menyerang kulit manusia. Jenis parasit dibagi menjadi 2 yaitu ektoparasit dan endoparasit. Ektoparasit adalah parasit yang hidup di permukaan tubuh dari suatu organismel. Sedangkan endoparasit adalah Parasit yang hidup di dalam tubuh organisme atau inang. Maka dari itu sangat penting untuk memahami tentang parasit mengingat sangat pentingnya kesehatan bagi ternak. Pemeriksaan parasit salah satunya dapat dilakukan dengan pemeriksaan mikroskopis pada feses. Praktikum ini bertujuan untuk mengetahui secara ternis pemeriksaan mikroskopis pada feses dan lebih memahami karakteristik dari ektoparasit dan endoparasit. Adapun manfaat yang diperoleh dari praktikum ini adalah untuk menambah pengetahuan mengenai parasit dan ternis pemeriksaanya dalam laboratorium.
29
BAB II
MATERI DAN METODE
Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan materi Pemeriksaan Feses dan Pengamatan Preparat Parasit dilaksanakan pada hari Senin tanggal 22 November 2014 pukul 11.00 WIB di Laboratorium Ilmu Kesehatan Ternak, Fakultas Peternakan dan Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang. 2.1.
Materi
Bahan yang digunakan adalah feses domba ekor gemuk induk dan anakan. Alat-alat yang digunakan yaitu mortar untuk menghaluskan feses, pipet tetes untuk mengambil bahan cair, mikroskop untuk mengamati objek, tabung sentifuse untuk wadah feses, larutan gula jenuh untuk memisahkan pertikel padat dan cair, preparat awetan parasit untuk pengamatan karakteristik fisik parasit, dan gelas objek untuk menaruh sampel mikroskop. 2.2.
Metode
2.2.1. Pemeriksaan Feses Metode Natif
Mengambil feses induk sebanyak 1-2 gram, meletakkan kedalam mortal dan menambahkan air sampai cair kemudian mengaduk hingga rata. Mengambil larutan feses tersebut dengan pipet tetes dan meletakkan di gelas objek lalu menutup menggunakan kaca penutup. Mengamati preparat dibawah mikroskop
30
dengan perbesaran 10 x 10. Kemudian mencatat hasil dalam lembar yang tersedia. Melakukan hal tersebut juga pada feses anakan. 2.2.2. Pemeriksaan Feses Metode Sentrifuse
Mengambil
sebanyak
2
gram
feses,
masukkan
kedalam
mortar,
menambahkan sedikit air, mengaduk hingga homogen. Menuangkan ke dalam tabung sentrifuse hingga tiga per empat bagian tabung. Putar tabung sentrifuse selama 5 menit. Menuangkan air pada bagian atas, kemudian tambahkan air gula jenuh sampai ¾ tabung, mengaduk secara homogen. Memutar sentrifuse selama 5 menit. Setelah itu meletakkan tabung tegak lurus pada rak tabung reaksi. Menetesi kembali dengan cairan gulan jenuh sampai penuh dan permukaan tabung menjadi cembung karena zat dalam tabung reaksi penuh hampir luber. Menempelkan gelas objek pada permukaan tabung tersebut secara rapat. Lalu membalik tabung dengan cepat dan balik lagi ke posisi semula secara hati-hati. menutup bagian gelas objek yang terkena zat dalam tabung dengan menggunakan kaca penutup. Melakukan pengambilan data secara duplo. Setelah itu mengamati gelas objek menggunakan mikroskop dengan perbesaran 10x10. 2.2.3. Pengamatan Preparat Parasit
Mengamati parasit awetan yang ada kemudian mencatat ciri-ciri parasit awetan tersebut, menggolongkan parasit awetan yang ada menjadi dua yaitu endoparasit dan ektoparasit, lalu mencatat dan menggambarnya pada lembaran yang telah tersedia.
31
BAB III
HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1. Hasil Pemeriksaan Mikroskopis Feses
3.1.1. Metode Natif
Berdasarkan hasil praktikum didapatkan hasil bahwa pengamatan pada feses domba induk dan anakan dengan metode natif tidak ditemukan adanya telur cacing. Hal ini dapat disimpulkan bahwa ternak tersebut sehat dan tidak terserang penyakit cacingan. Ternak yang sehat tidak terlepas dari manajemen kesehatan ternak yang diterapkan oleh peternak, misalnya kebersihan kandang, pakan, dan pemberian obat cacing setiap periode tertentu. Menurut pendapat Soejoto dan Soebari (1996) menyatakan bahwa tidak ditemukannya telur cacing karena feses diperoleh dari ternak sehat. Ternak yang sehat biasanya dipelihara dengan manajemen yang baik seperti perkandangan yang selalu bersih dan kepadatan dalam kandang yang ideal serta diberi pakan yang cukup dan berkualitas. Selain itu juga dilakukan pencegahan penyaki cacing secara rutin sehingga ternak tidak terserang penyakit cacingan. Menurut Darmono dan Hardiman (2011) bahwa penyakit parasit saluran pencernaan atau cacingan dapat dicegah dengan pemberian obat cacing pada ternak secara rutin.
32
3.1.2. Metode Sentrifuse
Berdasarkan hasil praktikum pengamatan pemeriksaan feses domba indukan dan anakan dengan metode sentrifus dapat diketahui bahwa kedua ternak domba tersebut sehat. Hal ini ditunjukkan dengan tidak ditemukannya telur cacing pada kedua sampel feses domba tersebut. Faktor utama tidak adanya telur cacing pada feses yaitu lingkungan yang bersih, pakan, dan iklim. Lingkungan yang bersih dapat dilakukan misalnya dengan sanitasi kandang dan lingkungan sekitar kandang, dan memandikan ternak. Pakan juga harus dibebaskan dari parasit, misalnya dengan melayukan dahulu pakan hijauan yang akan diberikan pada ternak. Iklim juga sangat berpengaruh dalam fluktuasi suhu dan kelembapan yang mana akan berpengaruh pada perkembangbiakan cacing. Menurut pendapat Akhira et al. (2013) yang menyatakan bahwa kesesuaian suhu dan kelembaban serta ketersedian oksigen memungkinkan telur-telur cacing yang keluar bersama feses menetas dan menjadi larva infektif yang akan menginfestasi inang, hal ini menujukkan bahwa semakin ideal kondisi lingkungan semakin banyak munculnya kasus cacingan pada ternak. Ditambahkan oleh Reinecke (1983) yang menyatakan bahwa sanitasi yang buruk, khususnya jika feses tidak dibersihkan secara teratur, dapat menjadikan sumber infeksi ulang yang berkelanjutan dan cacingan pada ternak. Penyakit cacingan dapat diobati atau dicegah dengan pemberian obat cacing sesuai parasit atau cacing yang tumbuh. Menurut pendapat Tan dan Rahardja (2007) yang menyatakan bahwa pengobatan infeksi parasit dapat diantisipasi dengan pemberian obat cacing. Pengobatan dilakukan apabila ternak menujukkan gejala klinis terinfeksi parasit dan pengobatan diberikan dengan cara
33
interval berkelajutan serta menjaga lingkungan yang bersih. Ditambahkan oleh Harjopranjoto et al. (1998) yang menyatakan bahwa proses penularan cacing dapat melalui tanah dan pakan berupa hijauan yang terkontaminasi.
3.2. Pengamatan Preparat Parasit
3.2.1. Ektoparasit
Berdasarkan preparat yang diamati didapatkan hasil pengamatan dari ektoparasit yaitu Boophilus microplus, Cteno cephalides canis, dan Bovicola bovis.
3.2.1.1. Boophilus microplus, berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: http://parasite.org.au Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 6. Boophilus microplus
Berdasarkan hasil pengamatan dapat diketahui bahwa Boophilus microplus yaitu memiliki bentuk yang sama seperti caplak karena bentuknya seperti
34
serangga kecil berwarna hitam dan bersifat parasit yang biasa hidup pada ternak yaitu berkaki empat seperti kutu pada umumnya. Berdasarkan pendapat Ahmad (2004) menyatakan bahwa boophilus microplus atau caplak memiliki kulit yang keras dan berumah satu (hidup pada satu ekor hewan. Selain itu, daur hidupnya Boophilus microplus terdiri dari telur, larva, nimfa, dan dewasa. Daur hidup Boophilus microplus dari larva sampai dewasa dapat menempel pada satu individu induk semang yang sepanjang waktu terus menghisap darah. Selain itu gejala klinis yang nampak pada ternak yaitu kerusakan pada kulit, ternak menjadi tidak tenang karena gatal, berat badan menurun, penurunan kondisi umum dan produksi.
Manurung
dan
Ahmad
(2003)
menambahkan
bahwa
cara
penanggulangan sementara yang dapat dilakukan yaitu dengan akarisidam ivermectin, dan yang masih dalam taraf penelitian ialah obat yang berasal dari tanaman tradisional.
3.2.1.2 Cteno cephalides canis, berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Sumber : www.agefotostock.com Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 7. Cteno cephalides canis
35
Berdasarkan praktikum dapat diperoleh bahwa hasil pengamatan yang telah dilakukan yaitu, Cteno cephalides canis mempunyai ciri-ciri fisik berbentuk seperti lebah, memiliki warna kuning kecoklatan, dan mempunyai sayap. Priyanto et al (2006) menyatakan bahwa morfologi Cteno cephalides canis berkepala bundar, gigi satu dan dua tidak mempunyai panjang yang sama. Menurut Dobler dan Peffer (2011) bahwa Cteno cephalides canis termasuk serangga holometabolaus atau metamorphosis sempurna karena daur hidupnya melalui 4 stadium yaitu telur, larva, pupa, dewasa. Cteno cephalides canis betina bertelur diantara rambut inang. Jumlah telur yang dikeluarkan pinjal betina berkisar antara 3-18 butir. Cteno cephalides canis betina dapat bertelur 2-6 kali sebanyak 400500 butir selama hidupnya Menurut Wall (1997) Cteno cephalides canis berkembangbiak dengan cara bertelur, telur tersebut kemudian menetas yang menjadi larva dan tumbuh menjadi dewasa. Parasit ini ditualarkan melalui sentuhan antara hewan.
36
3.2.1.3. Bovicola bovis, berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: http://zoodoc.blogspot.com Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 8. Bovicola bovis
Berdasarkan hasil pengamatan praktikum Bovicola bovis memiliki bentuk tubuh pipih. Bovicola bovis sering disebut juga kutu penggigit sapi yang menyebabkan flek atau bercak pada kulit sapi. Hal ini sesuai dengan pendapat Ako (2011) selain Haematopinus eurysternus dan Lignognathus vituli, parasit luar seperti Bovicola bovis termasuk caplak yang sering menyerang pada ternak perah yang menyebabkan penyakit kulit. Johnson (2010) menambahkan bahwa kutu Bovicola bovis memiliki 4 tahapan siklus hidup mulai dari telur, larva, nimfa dan dewasa dan salah satu spesies yang paling umum ditemukan pada sapi di Montana. Bovicola bovis memiliki kepala kemerahan dan perut cokelat pucat dengan garis-garis cokelat agak gelap. Betina dewasa panjangnya sekitar 1-16 inci. Spesies ini memperoleh makanan untuk energi dan produksi telur dengan makan pada kulit, ketombe dan rambut hewan. Kutu menggigit sering ditemukan
37
di bagian atas belakang, terutama daerah layu dan akan menyebar ke tubuh bagian belakang seperti pangkal ekor.
3.2.2 Endoparasit
Berdasarkan preparat yang diamati didapatkan hasil pengamatan dari ektoparasit yaitu Moniezia sp., Fasciola gigantica, dan Raillietina sp.
3.2.2.1 Moniezia sp. berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Sumber: http://cal.vet.upenn.edu Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 9. Moniezia sp.
Berdasarkan hasil pengamatan praktikum Moniezia sp. memiliki bentuk yang pipih memanjang, strukturnya elastis, dan berwarna putih. Menurut Suwandi (2001) Moniezia sp. termasuk dalam cacing kelas cestoda (cacing pita) yang mempunyai ciri-ciri tubuh bersegmen, mempunyai scolex leher, proglotida (telur berembrio), hermaprodit, reproduksi ovipar dan kadang-kadang berbiak dalam
38
bentuk larva, infeksi umumnya oleh larva dalam kista yang hidup dalam usus kecil pada sapi dan kerbau. Menurut Adiwinata dan Sukarsih (1992) siklus hidup Moniezia sp. dimulai dari telur atau proglotid akan keluar bersama feses dan akan mencemari rumput yang ada pada lapangan, telur yang berada pada feses akan termakan oleh tungau dari jenis galumna, orbatid. Didalam tubuh tungau telur yang ermakan akan berkembang menjadi L4 dan tungau akan termakan bersama rumput pada saat sapi atau domba, kambing merumput dan pada usus halus ternak cacing akan berkembang menjadi cacing dewasa yang akan menempel pada mukosa usus ternak. Menurut Anyaegbunam et al. (2013) Moniezia sp. meskipun sedikit, tetapi rentan ditemukan pada kambing. Tempat kegemaran yang lebih dari daerah perut, dada, kaki dan punggung, yang mungkin yang memiliki lebih sedikit bulu yang menutupi dan kulit.
3.2.2.2. Fasciola gigantica, berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: http://id.wikipedia.org Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 10. Fasciola gigantica
39
Berdasarkan hasil pengamatan praktikum, Fasciola gigantica memiliki bentuk pipih menyerupai daun dan berwarna abu-abu serta di tengahnya terdapat warna kekuningan atau lebih terang. Hal ini sesuai dengan pendapat Tabbu (2002) yang menyatakan bahwa Fasciola gigantica memiliki bentuk tubuh menyerupai daun, pipih dorsoventral, tidak memiliki bentuk bahu yang jelas, tidak bersegmen, dan tidak memiliki rongga badan. Menurut Budianto et al., (2005) Siklus hidup cacing Fasciola gigantica terdiri atas 2 fase, yaitu aseksual dan seksual. Daur hidup aseksual berlangsung pada dua hospes, yaitu siput dan tanaman air, sedangkan daur hidup seksual terjadi dalam hospes definitif. Hospes definitif berupa ternak ruminansia akan terinfeksi oleh metaserkaria apabila menelan makanan atau minuman yang mengandung metaserkaria. Metaserkaria akan mengalami ekskistasi dan segera menembus mukosa usus untuk menuju ke hati. Peristiwa ini akan menyebabkan haemorrhagi dan fibrosis pada jaringan hospes yang selanjutnya akan memicu pengerahan sel-sel leukosit, termasuk eosinofil, pada jaringan terluka. Ditambahkan oleh Guntoro (2012) yang menyatakan bentuk tubuh Fasciola gigantica adalah segi tiga, pipih dan terlihat seperti daun, berwarna abu-abu kehijau-hijauan sampai kecokelat-cokelatan,panjangnya dapat mencapai 2-3 cm.
40
3.2.2.3. Raillietina sp., berdasarkan pengamatan praktikum diperoleh hasil sebagai berikut.
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: 3.bp.blogspot.com Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 11. Raillietina sp.
Berdasarkan hasil dari pengamatan bahwa Raillietina sp memiliki tubuh pipih, memanjang seperti pita, dan bersegmen-segmen. Parasit ini sering menyerang ayam maupun unggas lainnya. Biasanya parasit ini menyebar melalui kotoran ayam. Hal ini Sesuai dengan pendapat Levine dan Norman (2001) yang menyatakan bahwa Cestodosis menyerang ayam pada semua umur dan penyebarannya melalui kotoran ayam yang sakit atau alat-alat yang digunakan. Hadi (2004) menyatakan siklus hidup cacing pita umumnya melewati inang antara seperti serangga (lalat dan kumbang), serta cacing tanah. Peran inang antara itu pula yang menjadikan cacing pita mudah tersebar luas. Telur yang keluar bersama feses akan bersifat aktif di lingkungan, sehingga kemudian dapat termakan dan berkembang di dalam tubuh inang. Cacing Raillietina spp tergolong dalam
41
phylum
Platyhelmintes,
Class
Cestoidea,
Sub
Class
Cyclophyllidea, Genus Railietina dan Spesies Raillietina sp.
Cestoda,
Ordo
42
BAB IV
SIMPULAN DAN SARAN
4.1. Simpulan
Pemeriksaan parasit pada sampel feses tidak ditemukan adanya cacing, hal ini menunjukkan ternak dalam kondisi sehat. Pengamatan parasit pada preparat ektoparasit dan endoparasit berguna untuk lebih memahami karakteristik dari masing-masing dari parasit tersebut.
4.2. Saran
Sebaiknya dalam praktikum perlu dijelaskan lebih detail mengenai parasitparasit yang menyerang pada ternak supaya praktikan lebih paham.
43
DAFTAR PUSTAKA
Adiwinata, G Dan Sukarsih. 1992. Gambaran Darah Domba yang Terinfeksi Cacing Nematoda Saluran Pencemaan Secara Alami di Kab. Bogor (Kec. Cijeruk, Jasinga dan Rumpin) . Penyakit Hewan 24 (43) : 13-16. Ahmad, R. Z. 2004. Cendawan Metarhizium anisopliae sebagai pengendalian hayati ektoparasit caplak dan tungau pada ternak. Wartazoa. Vol. 14 (2). 73-78. Akhira, D., Yudha, F., dan Hasan, M. 2013. Indentifikasi parasit nematoda saluran pencernaan anjing pemburu (Canis familiaris) Di Kecamatan Lareh Sago Halaban Provinsi Sumatra Barat. Jurnal Medika Veterinaria. Vol 7 No (1). Ako Ambo. 2011. Buku Ajar Produksi Ternak Perah. Fakultas Peternakan Universitas Hasanuddin, Makassar. Anyaegbunam, Lucy C., Obi, Zita. C., dan Ezeoke Chinasa M. 2013. Ectoparasitosis and Endoparasites in Local Goats (Capra hircus) In Onitsha, Anambra State, Nigeria. International Journal of Fauna and Biological Studies; 1 (2): 1-3 Budianto, B., Subadrah S, Riwidiharso E, Kusmintarsih E. 2005. Kemampuan Metaserkaria Fasciola gigantica yang Diiradiasi Ultra Violet (254 NM) dalam Reinfeksinya terhadap Mencit (Mus musculus). Fakultas Biologi Unsoed. Purwokerto. Darmono Dan Hardiman. 2011. Penyakit Utama Yang Sering Ditemukan Pada Ruminansia Kecil (Kambing Dan Domba). Workshop Nasional Diversifikasi Pangan Daging Ruminansia Kecil Balai. Besar Penelitian Veteriner, Bogor. Dobler, G., dan Peffer. 2011. Fleas as Parasites of The Family Canidae. Biomed Central. 4 : 139 Guntoro, S. 2012. Membudidayakan Sapi Bali. Kanisius, Yogyakarta. Hadi, U. K dan Saviana, S. 2000. Ektoparasit: Pengenalan, Diagnosis, dan Pengendaliannya. Institute Pertanian Bogor, Bogor. Harjopranjoto, S., R.S. Sasmita, Partosoewignjo, M. Hariadi, R.B. Soejoko, dan Sarmanu.1988. Prosiding Simposium Nasional Penyakit Satwa Liar. Fakultas Kedokteran Hewan Airlangga dan Kabun Binatang Surabaya. Johnson Gregor. 2010. Management of Lice on Livestock. Montana State University. MSU Extention.
44
Levine, D. N. dan W. Norman. 2001. Veteriner. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta. Manurung, J. dan R. Z. Ahmad. 2003. Pengobatan Caplak Boophilus microplus pada Sapi Peranakan Ongole (PO) di Ciracap Sukabumi dengan Ekstrak Biji Srikaya (Annona squamosa). Pros. Seminar Nasional Teknologi Peternakan dan Veteriner. Puslitbangnak Bogor 29-30 Sept 2003. Hlm. 205-210. Prianto, J. L. A., P. U. Tjahaya., dan Darwanto. 2006. Atlas Parasitologi Kedok Cetakan ke-9. PT Gramedia Pustaka Utama, Jakarta. Reinecke, R.K. 1983. Veterinary Heminthology. Butterworths. Durban. Soejoto dan Soebari. 1996. Parasitologi Medik Jilid 3 Protozoologi dan Helmintologi. EGC, Solo. Suwandi. 2001. Mengenal Berbagai Penyakit Parasitik Pada Ternak. Balai Penelitian Ternak. PO BOX 221 Bogor 16002. Tabbu, C. R. 2002. Penyakit Ayam dan Penanggulangannya.Penerbit Kanisius, Yogyakarta. Tan, H.T. dan K. Rahardja. 2007. Obat-Obat Penting: Khasiat Penggunaan dan Efek Sampingnya. Edisi ke-6. PT. Elex Media Komputindo, Jakarta. Wall, R., Shaw S.E., Penaliggon J. 1997. The Prevalence Of Flea Species On Cats And Dogs In Ireland. Medical And Veterinary Entomology 11: 404-406.
45
ACARA 3 NEKROPSI
46
BAB I
PENDAHULUAN
Nekropsi merupakan pemeriksaan kondisi jaringan tubuh ternak yang dilakukan dengan cara membedah atau membuka rongga tubuh sehingga fisik organ dalam ternak dapat diamati. Dalam penggunaanya, nekropsi banyak digunakan dalam hal pemeriksaan unggas yang diduga telah terjangkit penyakit. Hal ini dilakukan agar dapat diketahui penyakit yang diderita oleh unggas sehingga dapat ditentukan penanganan yang tepat untuk menanggulangi penyakit tersebut agar peternakan terhindar dari kerugian finansial yang lebih besar. Maka dari itu nekropsi sangat penting untuk dipelajari, mengingat pentingnya menjaga kesehatan unggas dalam keberlangsungan usaha peternakan. Tujuan dari praktikum ini adalah agar praktikan lebih terlatih dalam melakukan nekropsi pada unggas dan mampu menganalisa penyakit yang diderita oleh unggas. Manfaat dari praktikum ini adalah agar praktikan lebih memahami secara mendalam mengenai karakteristik penampilan luar dan organ dalam unggas yang terkena penyakit.
47
BAB II
MATERI DAN METODE
Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak dengan Materi Pemeriksaan Kesehatan Unggas yang dilaksanakan pada hari Minggu tanggal 30 November 2014 pukul 09.00-11.00 WIB di Laboratorium Fakultas Peternakan dan Pertanian, Universitas Diponegoro, Semarang. 2.1.
Materi
Alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah pisau dan untuk mematikan serta membedah ayam, gunting untuk membedah organ dalam ayam, plastik untuk alas mengamati organ dalam ayam, spuit untuk mengambil darah ayam, alat tulis untuk mencatat hasil pengamatan. Sedangkan bahan yang digunakan adalah ternak ayam broiler (pedaging) serta darah sebanyak 3 cc.
2.2.
Metode
2.2.1.
Pemeriksaan Kesehatan Unggas (Broiler)
Melakukan pengamatan meliputi penampilan luar ayam seperti jenis unggas, jenis kelamin, umur, kepala, kaki, bulu, dan organ-organ dalam ayam seperti jantung, paru-paru, hati, organ pencernaan, dan lain-lain.
48
2.2.2.
Pengambilan Darah
Mengambil darah unggas ayam broiler melalui vena bracialis (vena di bagian sayap sebelah dalam) menggunakan spuit sebanyak 3 cc, darah dimasukkan dalam tabung gelas secara hati-hati, darah dialirkan lambat melalui dinding tabung. Tabung penampung tanpa antikoagulan, biarkan selama 30 menit, amati perubahan tersebut. Mencatat perubahan yang terjadi apakah terbentuk serum atau hanya menggumpal.
2.2.3.
Nekropsi
Mematikan ayam dengan cara disembelih dengan pisau tajam. Kemudian ayam tersebut terus direst-in hingga sampai benar-benar sudah mati. Meletakkan ayam tersebut pada alas plastik dengan posisi punggung di atas. Memaksakan tekan kedua paha kearah bawah (arah lateral) agar lebih leluasa dalam melakukan nekropsi.
49
BAB III
HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1. Pengamatan Perfomans Unggas
Sumber : Data Primer Praktikum Sumber: Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. muhammadeko58.wordpress.com Ilustrasi 12. Pengamatan Perfomans Unggas
Berdasarkan pengamatan yang telah dilakukan dapat diketahui bahwa ayam broiler dalam kondisi lemah, mata tidak cerah, warna jengger merah muda, dubur bersih dan bulu ayam bersih. Menurut Fadilah dan Agustin (2004) ciri ayam broiler yang sehat yaitu ayam aktif, lincah, mata dan muka cerah (tidak mengantuk), bulu cerah berminyak, tidak kusam, kaki kokoh, berdiri tegak, dan bentuk tubuh proporsional. Krista dan Bagus (2010) menambahkan bahwa ayam yang sehat memiliki anus yang bulat, lebar dan basah, kulit terlihat tegar dan mengkilap, sayap terlihat kokoh, tidak nampak lemah dan menggantung.
50
3.2. Pengambilan Darah
Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diperoleh data sebagai berikut :
Sumber : Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: http://article.wn.com Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 13. Sampel Darah Ayam Broiler
Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diketahui bahwa pengambilan darah pada resimen ayam pedaging sebagai objek pengamatan, yaitu pengambilan darah dilakukan pada saluran darah vena brachialis yang terdapat pada bagian bawah sayap menggunakan spuit (alat suntik). Pengambilan darah tersebut dilakukan untuk menguji adanya antibodi yang terkandung dalam darah tersebut dengan cara darah tersebut dijadikan serum. Berdasarkan pengamatan hasil serum yang telah dilakukan dapat diketahui bahwa darah pada ayam pedaging tersebut memiliki antibodi, yaitu ditandai dengan adanya cairan berwarna kekuningan yang dihasilkan pada bagian atas darah yang telah mengendap pada bagian bawah. Hal ini sesuai dengan pendapat Sianita et al. (2011) yang menyatakan bahwa cara pengambilan serum, yaitu dengan cara pengambilan darah menggunakan spuit secara aseptik melalui pembuluh darah
51
yang ada di sayap (vena brachialis), lalu darah yang ada didalam spuit tersebut didiamkan hingga terjadi pemisahan serum (diberikan sedikit ruangan udara pada spuit). Ernawati et al. (2008) yang menyatakan bahwa pengambilan darah ayam dilakukan untuk mengetahui titer antibodi yang ditimbulkan, selain itu semakin tingginya titer antibodi yang dihasilkan maka menunjukan bahwa semakin tinggi tingkat kekebalan suatu individu terhadap antigen. Pengambilan darah pada resimen ayam sebagai objek pengamatan memiliki fungsi yang sangat banyak salah satunya yaitu untuk mendekteksi adanya antibody yang terkandung didalamnya. Hal ini sesuai dengan pendapat Sianita et al. (2011) yang menyatakan bahwa gambaran darah merupakan salah satu parameter dari status kesehatan hewan karena darah mempunyai fungsi penting dalam pengaturan fisiologis tubuh. Satyaningtijas et al. (2010) menambahkan bahwa fungsi darah secara umum berkaitan dengan transportasi komponen di dalam tubuh seperti nutrisim oksigen, karbondioksida, metabolit, hormon, panas, dan imun tubuh maupun berkaitan dengan keseimbangan cairan dan pH tubuh.
52
3.3. Nekropsi
Nekropsi yang dilakukan terlebih dahulu dengan melakukan pemeriksaan kulit ayam, kemudian jaringan dibawah kulit dan dilanjutkan dengan pembedahan ayam untuk dilakukan pemeriksaan organ-organ dalam pada ayam.
3.3.1. Pemeriksaan Permukaan Kulit Ayam
Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diperoleh data sebagai berikut :
Sumber : Data Primer Sumber: Praktikum Ilmu Kesehatan http://alwitech.wordpress.com Ternak, 2014. Ilustrasi 14. Kondisi Kulit Ayam Broiler
Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan dapat diketahui pemerikaan permukaan kulit ayam yaitu permukaan kulit normal ditandai dengan kulit berwana putih atau kuning cerah, bersih, dan tidak terdapat perubahan atau gejala penyakit yang timbul pada permukaan kulit ayam. Hal ini sesuai dengan pendapat Yulistiani (2010) yang menyatakan bahwa hasil pemeriksaan organoleptik pada
53
ayam segar (sehat) dan ayam bangkai yang disebabkan sakit yaitu memiliki perbedaan warna, terutama pada ayam segar (sehat) memiliki warna kulit kuning terang, sedangkan pada ayam bangkai (sakit) memiliki warna kulit yaitu kuning pucat kemerahan. Huminto (2000) menambahkan bahwa pada ayam yang sakit biasanya terdapat kerusakan pada kulit dengan ditandai timbulnya benjolan pada kulit, seperti halnya penyakit marek dengan gejala klinisnya yaitu timbulnya benjolan pada kulit. 3.3.2. Pemeriksaan Kondisi Warna dan Jaringan dibawah Kulit
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: www.wikimedia.org Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 15. Kondisi Warna dan Jaringan dibawah Kulit
Berdasarkan hasil praktikum didapatkan bahwa pada jaringan subkutan dalam keadaan bersih, basah mengkilat dan cerah. Sedangkan pada jaringan daging terlihat bersih dan berwarna cerah. Hal ini menunjukkan jaringan dibawah kulit dalam kondisi baik. Hal ini sesuai dengan pendapat Afrianti et al (2013) yang menyatakan bahwa daging ayam sehat berwarna cerah putih kekuningan.
54
Jaringan subkutan juga berwarna bersih tidak terdapat bercak-bercak. Ini menandakan ayam sedang tidak terserang penyakit. Menurut Tarmudji (2005) bahwa salah satu ciri ayam terkena penyakit AI (Avian Influenza) yaitu terdapat ptekhiae subkutan pada kaki dan paha. Menurut Fadilah dan Agustin (2011) apabila terjadi peradangan bawah kulit (Cellulitis) maka akan terlihat tanda pada jaringan kulit penutup tampak kering dan tidak berwarna. Menurut Tabbu (2000) menambahkan bahwa pada ayam yang terkena penyakit dematitis ganggrenosa, jaringan subkutan dari kulit akan mengalami kerusakan biasanya berwarna kelabu atau kecokatan dan diantara bendel otot dapat ditemukan adanya gas. 3.3.3. Pemeriksaan Semua yang Nampak setelah Otot Dada dan Perut Dibuka
Berdasarkan hasil pratikum didapatkan hasil sebagai berikut :
Sumber: Data Primer Praktikum Sumber: Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. http://hasnahanifah.blogspot.com Ilustrasi 16. Semua yang Nampak setelah Otot Dada dan Perut Dibuka
55
Kondisi yang teramati bahwa isi rongga dadadan rongga perut dalam kondisi bersih, tidak ada banyak air yang menggenangi organ dalam dan tidak ada timbunan lemak, kantong udara bersih dan tidak keruh. Kondisi ayam seperti ini dpat dikatakan ayam dalam keadaan sehat. Hal ini sesuai dengan pendapat Salim et al., (2010) bahwa ciri-ciri ayam sakit yaitu organ hati, ginjal, jantung, dan limpa bengkak, warna merah kehitaman,dan terlihat jelas bintik-bintik hemoragi. Keadaan isi rongga dada dan perut tidak terdapat timbunan lemak, hal ini dipengaruhi oleh pakan atau ransum yang diberikan oleh ayam. Hal ini sesuai dengan pendapat Leclereq dan Whitehead (1998) bahwa pertumbuhan dan penimbunan lemak dipengaruhi oleh terutama energi dalam ransum dan perbandingan antara protein kasar dan energi ransum.
3.3.4. Pemeriksaan Saluran Pencernaan
Berdasarkan hasil pratikum didapatkan hasil sebagai berikut :
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: Kesehatan Ternak, 2014. http://dawi4purnama.blogspot.com Ilustrasi 17. Saluran Pencernaan
56
Berdasarkan hasil praktikum bahwa dinding saluran pencernaan terdapat kelainan, pada dinding usus halus terdapat bercak merah atau peradangan. Menurut Ardana (2011) hampir semua jenis penyakit pada ayam menunjukkan adanya peradangan pada usus baik ringan maupun berat. Bahkan pada ayam yang tidak mau makan atau ukuran pakan yang terlalu besar juga dapat menyebabkan peradangan di usus. Ciri spesifik ND adalah adanya peradangan pada peyer patches yang disertai peradangan pada proventrikulus. Terjadinya peradangan di usus memang agak relatif sulit dibedakan antara ND, AI ataupun dengan penyakit bakterial. Isi
saluran pencernaan tidak terdapat cacing. Tidak adanya cacing
dalam saluran pencernaan dapat dikatakan pemeliharaan ayam dilakukan dengan baik sehingga ayam sehat dan tidak cacingan. Hal ini sesuai dengan pendapat Ashenafi dan Eshetu (2004) bahwa penyebab ayam terserang cacingan yaitu manajemen pemeliharaan yang kurang baik atau buruk. Menurut Retnani et al (2009) ciri ayam yang terkena cacing yaitu mendadak lesu, diare, radang usus disertai diare jika terinfeksi berat. Pada pengamatan saluran percernaan bertujuan untuk memeriksa keadaan organ pencernaan apakah ayam terserang penyakit atau tidak. Hal in sesuai dengan pendapat Suprijatna et al., (2005) menambahkan bahwa penyakit pada ternak dapat dilihat dari keadaan organ pencernaannya.
57
3.3.5. Pemeriksaan Hati
Berdasarkan hasil pratikum didapatkan hasil sebagai berikut :
Sumber: Data Primer Praktikum Sumber: http://kumpulanIlmu Kesehatan Ternak, 2014. gizi.blogspot.com Ilustrasi 18. Hati
Kondisi yang teramati bahwa hati berukuran 6 cm atau normal, berwarna merah kecoklatan, konsistensi kenyal dan kanton empedu berukuran 2 cm dan berwarna hijau tua. Kondisiini dapat dikatakan hati dalam keadaan baik. Hal ini sesuai dengan pendapat Nickel et al., (1997) bahwa hati yang normal yaitu memiliki warna merah cerah, konsistensi normal dan ukuran yang pas sesuai umur dan jenis ayamnya. Menurut Mc Lelland (1990) bahwa hati yang normal berwarna coklat kemerahan atau coklat terang dan bila pakan yang diberikan berlemak tinggi maka warna dari hati akan menjadi kuning.
58
3.3.6. Pemeriksaan Jantung
Sumber: Data Primer Praktikum Sumber: Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. http://www.shutterstock.com Ilustrasi 19. Jantung
Hasil pengamatan pada pemeriksaan jantung unggas merupakan pusat sistem peredaran darah, karena jantung terdiri dari otot yang mampu memompa darah untuk dialirkan ke seluruh tubuh. Hal ini sesuai dengan pendapat Akoso (2000) yang menyatakan bahwa jantung terdiri atas sekumpulan otot berfungsi memompa darah kesemua bagian tubuh dan merupakan pusat sistem peredaran darah. Pada jantung ayam broiler yang diamati mempunyai ukuran 4 cm, warna merah, selaput jantung berwarna putih dan tipis, dan jantung kenyal dan tidak mudah hancur. Hal ini menandakan bahwa jantung paada unggas tersebut dalam keadaan sehat, karena tidak ada kelainan yang nampak. Kelainan pada jantung biasanya dapat dilihat dari warna, bentuk, serta ukuran. Hal ini sesuai dengan pendapat Hermana et al. (2005) yang menyatakan bahwa jantung merupakan organ vital yang berperan dalam sirkulasi darah, dan jantung yang terinfeksi penyakit maupun racun bisanya akan menglami perubahan pada ukuran jantung.
59
3.3.7. Pemeriksaan Ginjal
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Kesehatan Ternak, 2014.
Sumber: http://www.poultrydisease.ir
Ilustrasi 20. Ginjal
Hasil pengamatan pada pemeriksaan ginjal unggas merupakan salah satu organ yang mempunyai fungsi dalam pembentukan dan pengeluaran kencing. Hal ini sesuai dengan pendapat Akoso (2000) yang menyatakan bahwa ginjal bertanggung jawab terhadap produksi air seni yang dikeluarkan lewat salurannya menuju ureter, menampungnya dalam kandung kemih, dan mengeluarkannya melalui uretra. Selain itu ginjal juga berfungsi pada proses penyerapan dalam metabolisme dalam tubuh unggas. Ukuran ginjal unggas yang diamati yaitu 5,5 cm, dengan warna merah muda, pada ginjal tidak menampakkan kelainan. Hal ini menandakan bahwa ginjal dalam keadaan sehat. Hal ini sesuai dengan pendapat Sugita et al. (2006) yang menyatakan bahwa adanya kerusakan pada ginjal ni adanya sel yang mengalami nekrosa menyebabkan proses filtrasi dan
60
keseimbangan asam basa akan terganggu. Akibatnya metabolisme dalam tubuh menjadi menurun dan hal ini dapat menyebabkan terganggunya pertumbuhan.
3.3.8. Pemeriksaan Pancreas
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: Kesehatan Ternak, 2014. http://www.poultrydisease.ir Ilustrasi 21. Pancreas
Hasil pengamatan pada pemeriksaan pankreas unggas yaitu berwarna putih, ukuran 10 cm, ini menandakan bahwa pankreas pada unggas tersebut sehat. Karena tidak ada kelainan yang nampak pada pankreas ayam broiler yang diamati. Hal ini sesuai dengan Akoso (2000) yang menyatakan bahwa pankreas adalah jaringan kelenjar yang teletak di belakang lambung dan bagian yang besar terletak di bawah ginjal sebelah kanan. Pertumbuhan bobot badan yang meningkat merupakan salah satu faktor penyebab kerusakan pankreas pada ternak, karena semakin tinggi bobot badan maka kerja pankreas untuk mengubah glikogen menjadi energi dengan bantuan hormon insulin semakin besar, sehingga kerja pankreas
semakin
menjadi
lebih
berat
dan
menyebabkan
terjadinya
pembengkakan. Hal ini sesuai denga pendapat Wahyuwardhani et al (2000) yang
61
menyatakan bahwa kerusakan pada pankreas dan saluran pencernaan ayam memberikan indikasi terjadinya gangguan pada proses pencernaan ayam penderita sehingga terjadi gangguan pertumbuhan bobot badan ayam.
3.3.9. Pemeriksaan Trachea
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: Kesehatan Ternak, 2014. http://www.agriculture.gov.ie Ilustrasi 22. Trachea
Berdasarkan hasil praktikum pengamatan pemeriksaan kesehatan ternak unggas pada pemeriksaan trachea diketahui bahwa ayam broiler sehat. Hal ini ditandai dengan warna trachea putih bersih dan tidak memiliki isi pada percabangan trachea. Hal ini sesuai dengan pendapat Damayanti et al., (2012) yang menyatakan bahwa ternak unggas yang tidak sehat ditandai dengan selaput lendir trakea dan laring mengalami nekrosa, pendarahan, dan terdapat lendir serous sampai kaseus. Pendapat tersebut diperkuat oleh Rasyaf (2008) yang menyatakan bahwa salah satu ciri - ciri kelainan atau penyakit pada ternak unggas dapat dilihat dengan kesehatan dan kebersihan kantong udaranya.
62
3.3.10. Pemeriksaan Paru–paru
Sumber: Data Primer Praktikum Ilmu Sumber: Kesehatan Ternak, 2014. http://www.poultrydisease.ir Ilustrasi 23. Paru-paru
Berdasarkan hasil praktikum pengamatan pemeriksaan kesehatan ternak unggas pada pemeriksaan paru - paru ternak unggas ayam broiler diperoleh hasil warna merah, konsistensi normal, kenyal, tidak mudah hancur. Pada uji apung, paru - paru mengapung yang menunjukkan bahwa paru - paru tersebut masih terdapat oksigen dan memiliki kesehatan yang cukup baik. Hal ini sesuai dengan pendapat Damayanti et al., (2012) yang menyatakan bahwa paru – paru yang sehat tidak mengalami peradangan, kantung udara tidak menebal dan suram. Ditambahkan oleh Supartono et al., (2009) yang menyatakan bahwa Newcastle disease merupakan penyakit pada pada unggas yang di tandai dengan limpa membesar dan kongesti, pendarahan pada proventiculus dan usus halus, dan paru– paru meradang disertai kantung udara menebal.
63
3.3.12. Pemeriksaan Syaraf
Sumber: Data Primer Praktikum Sumber: https://sites.google.com Ilmu Kesehatan Ternak, 2014. Ilustrasi 24. Syaraf
Berdasarkan hasil praktikum pengamatan pemeriksaan kesehatan ternak unggas pada pemeriksaan syaraf diperoleh hasil warna syaraf putih, ukuran 5 cm, dan keadaan normal serta tidak terjadi pembengkakan. Hal ini menunjukkan bahwa ternak unggas tersebut tidak sehat. Hal ini sesuai dengan pendapat Akoso (2000) yang menyatakan bahwa dalam tubuh hewan terdapat tiga macam sistem syaraf yaitu sistem syaraf pusat, sistem syaraf tepi, dan sistem syaraf simpatetik. Salah satu penyakit yang disebabkan oleh kerusakan pada syaraf yaitu Marek. Kelainan pada Marek merupakan kerusakan syaraf dan tumor limfoid. Kerusakan syaraf pada Marek dapat terjadi pada susunan syaraf pusat maupun perifer (tepi). Ditambahkan oleh Hungerford yang disitasikan oleh Damayanti dan Wiyono (2003) menyatakan bahwa kerusakan pada otak, batang otak, dan syaraf perifer masing-masing ditandai dengan ensefalitis, myelitis, dan neuritis yang ketiganya bersifat non superatif.
64
BAB IV
SIMPULAN DAN SARAN
4.1. Simpulan
Dari hasil nekropsi menunjukkan secara umum kondisi ayam broiler dalam kondisi baik karena tidak ditemukanya parasit seperti cacing pada pencernaan ayam. Namun ditemukan bintik-bintik merah pada usus ayam yang menunjukkan usus ayam mengalami indikasi peradangan. Namun belum diketahui pasti penyakit apa yang diderita ayam. Hal ini karena peradangan di usus agak relatif sulit dibedakan antara ND, AI ataupun dengan penyakit bakterial lainya. 4.2. Saran
Praktikum nekropsi sebaiknya menggunakan lebih dari 1 ayam, hal ini berguna sebagai pembanding.
65
DAFTAR PUSTAKA
Afrianti, M., Bambang D. dan Bhakti E. S. 2013. Perubahan Warna, Profil Protein, dan Mutu Organoleptik Daging Ayam Broiler Setelah Direndam Dengan Ekstrak Daun Senduduk. Jurnal Aplikasi Teknologi Pangan 2 (3) : 116 – 120 Akoso, B.T. 2000. Kesehatan Sapi. Kanisius, Yogyakarta. Ardana, I. B. K. 2011. Strategi Pencegahan Penyakit Inefeksius pada Peternakan Broiler Berbasis Laboratorium. Buletin Veteriner Udayana. 3 (1) : 51-59 Ashenafi H ,Eshetu Y. 2004. Study On Gastro Intestinal Helminths Of Local Chickens In Central Ethiopia. Revue Med Vet 155(10): 504-507. Damayanti, R., dan A. Wibowo.2003. Gambaran Histopatologi kasus Marek pada ayam pedaging di Kabupaten Tasikmalaya dan Ciamis.8 (4) : 247-255. Damayanti, Y., I. Bagus., dan M. Djoko. 2012. Evaluasi Penyakit Virus Pada Kadaver Broiler Berdasarkan Pengamatan Patologi Anatomi di Rumah Pemotongan Unggas. Fakultas kedokteran. Universitas Udayana. Indonesia Medicus 2012 1 (3) : 417-4127. ISSN : 2301-7848. Ernawati, R., A. P. Raharjo, N. Sianita, J. Rahmahani, F. A. Rantam dan Suwarno. 2008. Petunjuk Praktikum Pemeriksaan Virologik dan Serologik. Laboratorimum Virologi dan Imunologi. Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Airlangga, Surabaya. Fadilah, R., dan Agustin P. 2004. Aneka Penyakit pada Ayam dan Cara Mengatasinya. Agromedia, Jakarta. Fadilah, R., dan Agustin P. 2011. Mengatasi 71 Penyakit pada Ayam. Agromedia, Jakarta. Hermana, W., D.I. Puspitasari,.K.G. Wiryawan., dan S. Suharti. 2005. Pemberian tepung daun salam (Syzgium polyanthum (weight) walp.) dalam ransum sebagai bahan antibakteri Eschericia coli terhadap organ dalam ayam broiler. Media Peternakan.31.(1): 63-70. Huminto, H., B. P. Priosoeryanto, I. W. T. Wibawan, D. R. Agungpriyono, E. Harlina, dan S. Fatimah. 2000. Kasus Diagnostik Penyakit Marek pada Ayam. Seminar Nasional Peternakan dan Veteriner. Hal : 543-546. Krista, B., dan Bagus B. 2010. Buku Pintar Beternak dan Bisnis Ayam Kapung.Agromedia, Jakarta. Leclercq, B and C. C. Whitehead. 1998. Leannes in Domestuc Birds. Butterworth dan Co. Ltd-INRA.
66
Mc lelland, J. 1990. A. Colour Atlas of Avian Anatomy. Walfe Publishing Ltd., London, England. Nickel, R. A., A. Schummer, E. Seiferie, W. G. Siller and R. A. L. Wight. 1997. Anatomy of The Domestic Birds. Verlap Paul Parey, Berlin. Rasyaf, M. 2008. Panduan Beternak Ayam Pedaging. Penebar Swadaya, Jakarta. Retnani, E. B., Fadjar S., Upik K. H., dan Singgih H. S. 2009. Analisis factorfaktor resiko infeksi cacing pita pada ayam ras petelur komersial di Bogor. Jurnal Veteriner 10 (3) : 165 - 172. Salim, M. N. dan Dian M. 2010. Pengaruh Sulfaqu Inoxalin Pada Ayam Broiler : Gejala Klinis Dan Patologi Anatomi. Jurnal Kedokteran Hewan 4 (2) : 65 68 Satyaningtijas, A. S., S. D. Widhyari, dan R. Delima Natalia. 2010. Jumlah Eritrosit, Nilai Hematokrit, dan Kadar Hemoglobin Ayam Pedaging Umur 6 Minggu dengan Pakan Tambahan. Jurnal Kedokteran Hewan. Vol. 4 (2): 69 - 73. Sianita, N., Z. Hasan, dan Kusriningrum R. 2011. Respon Antiodi dan Protektivitas pada Ayam Pasca Vaksinasi Menggunakan Vaksin ND Aktif Lv12. Veterinaria Medika. Vol. 4 (2) : 129-134. Sugito., W. Manalu., D.A. Astuti., E. Handhrayani., dan Chairul. 2006. Hitopatologi hati dan ginjal pada ayam broiler yang di papar cekaman panas dan diberi ekstrak kulit Batang Jaloh (Salix tetrasperma roxb). Seminar Nasional. Teknologi Peternakan dan Veteriner Bogor: 728-734. Supartono, W., S. Raharjo dan S. Iskandar. 2009. Evaluasi Karkas dan Rumah Potong Ayam Lokal Di Beberapa Kabupaten Di Daerah Istimewa Yogyakarta dan Jawa Tengah. Fakultas Teknologi Pertanian. Universitas Gajah Mada. Yogyakarta. Suprijatna, E., U. Atmomarsono dan R. Kartasudjana. 2005. Ilmu Dasar Ternak Unggas. Penebar Swadaya, Jakarta. Tabbu, C. R. 2000. Penyakit Ayam dan Penanggulanganya. Kanisius, Yogyakarta. Tarmudji. 2005. Penyakit Pernafasan Pada Ayam, Ditinjau Dari Aspek Klinik Dan Patologik Serta Kejadiannya Di Indonesia. Jurnal Wartozoa 15 (2) : 72 – 82. Wahyuwardhani, S., Y.Sani., L. Parede., dan M. Poeloengan.2000. Sindroma kekerdilan pada ayam pedaging dan gambaran patologinya. 5(2):125-131. Yulistiani, R. Studi Daging Ayam Bangkai: Perubahan Organoleptik dan Pola Pertumbuhan Bakteri. Jurnal Teknologi Pertanian. Vol. 11 (1) : 27-36.