MONOGRAFIA MODIFICADA

"AÑO OFICIAL DE BUEN SERVICIO AL CIUDADANO" UNIVERSIDAD NACIONAL DE BARRANCA

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD ESCUELA PROFESIONAL DE OBSTETRICIA DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE CIENCIA DE LA SALUD ALEXANDRA ALUMNAS: RAMIREZ ARISPE, ALEXANDRA URBANO COTRINA, RAQUEL

TEMA: EXÁMENES DE LABORATORIO ESPECÍFICOS DE IMPORTANCIA OBSTÉTRICA ASIGNATURA: PATOLOGÍA Y LABORATORIO CLÍNICO CICLO: V DOCENTE: DR. EDUARDO, PAREDES AYALA BARRANCA-2017

UNIVERSIDAD NACIONAL DE BARRANCA

DEDICATORIA Este

presente

trabajo

va

dedicado a Nuestros

padres,

que

apoyan

nos

incondicionalmente y a nuestro docente que nos ayuda y brinda conocimientos, aprendizaje para nuestra formación universitaria. universitaria.

PATOLOGÍA Y LABORATORIO CLÍNICO V

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CARATULA


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INDICE


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INTRODUCCIÓN Existen una gran variedad de pruebas clínicas de laboratorio relacionadas con el embarazo, desde el momento que una mujer busca embarazarse hasta que nace el bebé. Muchas de estas pruebas se realizan en la mayoría de las mujeres, en determinadas etapas del embarazo, otras se piden cuando se necesita detectar problemas o complicaciones que presentan durante el embarazo. Hay pruebas que son necesarias cuando hay un riesgo debido a su estilo de vida, mientras que otras pruebas más selectivas se realizan a la pareja por algunos padecimientos que se han presentado en su familia. Duranteel embarazo, como parte de la rutina, las embarazadas debieran tomarse exámenes de sangre y orina para evaluar su condición materna y chequear o corregir eventuales anormalidades. Una vez confirmada la gestación, se solicitan por primera vez. Las pruebas de laboratorio examinan muestras de sangre, orina o tejidos corporales. Un técnico o el médico analizan las muestras para determinar si los resultados están dentro de los límites normales. Los análisis usan un rango de valores porque lo que se considera normal varía de una persona a otra. Muchos factores afectan los resultados de los análisis. Hoy en día, el examen que descarta anomalías de origen genético es la evaluación ecográfica del feto, que se realiza entre la semana 11 y 14 de gestación. En este examen, se buscan algunos signos anatómicos de alarma que pudiesen sugerir una alteración de origen genético.


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LÍQUIDO AMNIÓTICO Fisiología y composición El líquido amniótico es un líquido que rodea y protege al feto a través de su gestación dentro del saco amniótico. Cumple funciones de amortiguación, intercambio de sustancias bioquímicas y controla y regula la temperatura del feto. Está compuesto por constituyentes celulares y numerosos componentes bioquímicos, tales como electrolitos, compuestos nitrogenados, proteínas, enzimas, lípidos y hormonas. Su volumen aumenta progresivamente durante el embarazo, llegando a un nivel máximo de 1 litro aproximadamente durante el tercer trimestre y luego disminuye gradualmente previo al parto. El análisis del líquido amniótico es de utilidad en la evaluación del “distress fetal” y maduración del feto. Toma de muestra (amniocentesis) El líquido

amniótico se recolecta por punción aspirativa a través de la pared abdominal. Alternativamente puede hacerse a través de la vagina con la ayuda de una ecografía continua. Se prefiere la amniocentesis trans-abdominal, debido a que la vaginal puede contaminar el líquido con células vaginales y bacterias. La recolección es realizada por un profesional competente y con técnica aséptica adecuada. Se extrae aproximadamente 10 a 20 mL de líquido con jeringa, generalmente 2 ó 3 tubos, dependiendo del tipo de exámenes a realizar (al menos uno sin anticoagulante para estudio físico-químico y uno con EDTA para estudio citológico). Conservación y transporte Inmediatamente de obtenido el líquido amniótico debe ser transferido a tubos o contenedores plásticos estériles, protegidos de la luz, para ser transportados al laboratorio. Se recomienda el uso de contenedores de color ámbar o protegerlos con papel de aluminio para prevenir la foto oxidación de la bilirrubina. El líquido se debe procesar con las medidas de bioseguridad establecidas por el laboratorio. El transporte al laboratorio debe efectuarse tan pronto como sea posible. Las muestras para estudios de fosfolípidos deben transportarse refrigerados. La conservación a temperatura ambiente y sin centrifugar puede provocar una pérdida importante de fosfolípidos (lecitina y esfingomielina) debido al metabolismo Departamento celular, por tanto todos los líquidos para análisis químicos deben ser centrifugados en forma inmediata. Si se almacenan por más de 24 horas, es necesario congelarlos. La velocidad de centrifugación del líquido amniótico es dependiente del tipo de exámenes a efectuarse. Para la recuperación celular aproximadamente de 140 g, 500 g para fosfolípidos, mientras que para electroforesis de proteínas se deben centrifugar a 1500 g por 5 minutos. Diferenciación de orina Puede ser necesario diferenciar si una pérdida de líquido corresponde a líquido amniótico u orina, como ocurre en la sospecha de ruptura prematura de membrana o en caso de una punción accidental de la vejiga. La orina contiene alta concentración de creatinina y urea y esencialmente no contiene proteínas y glucosa. En contraste, el líquido amniótico contiene proteínas (aproximadamente 2 a 8 g/L) y glucosa. El líquido amniótico tiene concentración de creatinina similar a la del plasma, se incrementa de 2 a 3 vecesaproximadamente a partir de la semana 37 de gestación. No obstante lo anterior, si la creatinina del líquido amniótico es mayor de 4 mg/dL, el líquido recolectado puede ser orina o líquido amniótico contaminado con orina. De la misma forma si una determinación con tira reactiva para orina es positiva para glucosa y proteína, el líquido es amniótico. En esta última situación, los resultados deben confirmarse con una medición de creatinina o urea dado que la diabetes y enfermedades renales pueden provocar la presencia de proteínas y glucosa en orina.


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ANÁLISIS DE LÍQUIDO AMNIÓTICO A. Examen macroscópico Aspecto El examen físico del líquido amniótico debe efectuarse inmediatamente de recibirse en el laboratorio, por inspección visual del color y turbidez. El líquido amniótico normal es incoloro o amarillo pálido. Una coloración amarilla o ámbar se asocia con la presencia de bilirrubina, mientras que un color verde indica la presencia de meconio, proveniente del feto, al término de gestación. La responsable de este color verde es la biliverdina. La contaminación con sangre generará un color rosado a rojo del líquido amniótico. Se recomienda eneste caso, centrifugar lo antes posible para remover glóbulos rojos intactos que puedan ocasionar hemólisis y evitar interferencias de la oxihemoglobina. Se debe tener en cuenta que todos los líquidos amnióticos tienen un grado de turbidez, dependiendo del estado de gestación. La centrifugación o filtración puede ayudar a remover el material particulado presente.

B. Examen microscópico Células anaranjadas El líquido amniótico contiene diversos tipos de células fetales, provenientes principalmente del epitelio descamativo. El contenido de células en el líquido amniótico se incrementan con la edad gestacional del feto y ha sido utilizado para predecir la madurez fetal, aprovechando la capacidad de tinción de los lípidos intracelulares con diferentes colorantes, como por ejemplo el sulfato de azul de Nilo. Las células con grasas neutras se tiñen de un color anaranjado en presencia de azul de Nilo, en un porcentaje de alrededor de un 1% cercano a la semana 34, hasta un 10% entre la semana 34 y 38 de gestación, 10% a 50% en la semana 38 a 40 y sobre un 50 % a la semana 40. En la actualidad estas técnicas de tinción son poco comunes y han sido reemplazadas por otros tipos de exámenes para evaluar la madurez pulmonar fetal.

C. Exámenes químicos Fosfolípidos La evaluación de la madurez fetal es importante es determinadas circunstancias obstétricas, cuando es necesario interrumpir el embarazo. Lo que se pretende investigar y conocer es si el feto ha alcanzado la aptitud funcional de sus órganos para la vida extrauterina, sin necesidad de cuidados especiales. La plena madurez fetal se alcanza durante el tercer trimestre gestacional. Las diversas pruebas disponibles para evaluar la madurez fetal investigan la madurez fetal de órganos tales como pulmón, hígado,riñones y sangre. Un pulmón maduro presenta un surfactante pulmonar que impide el colapso de los alvéolos durante el ciclo de inhalación y exhalación. Este agente tensioactivo es una mezcla compleja de lípidos y proteínas, siendo los principales la lecitina y esfingiomelina. La cuantificación de lecitina y esfingomielina puede realizarse mediante cromatografía en capa fina. PATOLOGÍA Y LABORATORIO CLÍNICO V

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Una razón de L/E inferior a 2 se asocia con inmadurez pulmonar fetal, mientras que una igual o superior a 2 es indicativa de madurez pulmonar fetal. Dado que este procedimiento presenta elevado coeficiente de variación se han desarrollado métodos alternativos mas sensibles y específicos en base a inmunoensayos de fosfatidilglicerol.

Glucosa Es importante la determinación de glucosa en líquido amniótico, con métodos analíticos automatizados, suficientemente sensibles, especialmente en niveles bajos, dado que niveles menores de 16 mg/dL son indicativos de infección.

Bilirrubina La bilirrubina en el líquido amniótico, es de interés para determinar el grado de hemólisis y la intensidad de la anemia del feto producida por una enfermedad hemolítica cuando existe incompatibilidad materno-fetal. Normalmente la concentración de bilirrubina en el líquido amniótico es de aproximadamente 10 a 30 µg/dL. La bilirrubina no conjugada producida por la destrucción normal de los glóbulos rojos fetales se remueve rápidamente por la placenta; sin embargo, debido a la inmadurez del hígado fetal, cuando se presenta una enfermedad hemolítica, se incrementa la destrucción de los eritrocitos fetales aumentando los niveles de bilirrubina no conjugada a nivel del líquido amniótico. Su nivel de concentración se correlaciona directamente a la severidad de la hemólisis.

D. Otros exámenes Para evaluar madurez fetal, alternativamente se han utilizado algunos métodos físicos tales como la prueba de Clements y el recuento de cuerpos lamelares descritos a continuación. Prueba de Clements Este método fue descrito por Clements en 1972 como una forma rápida de determinar la madurez pulmonar fetal. Se basa en la propiedad biofísica de que una cantidad suficiente de surfactante pulmonar presente en el líquido amniótico genera una capa de burbujas estables en la interface aíre-líquido, cuando se agita en presencia de etanol. Se mezclan partes iguales de líquido amniótico con etanol al 95% y se agita por 15 segundos. Si el anillo de burbujas permanece más de 15 minutos, indica que existe suficiente cantidad de fosfolípidos presentes para reducir la tensión superficial. Se trata de una técnica semicuantitativa, fácil, rápida y de bajo costo que permite evaluar la capacidad del surfactante de la lecitina en presencia de etanol. Esta prueba muestra buena correlación con la relación lecitina-esfingomielina; sin embargo no es útil con líquido amniótico contaminado porque la sangre y el meconio también tienen el mismo efecto de reducir la tensión superficial. Cuerpos lamelares En la actualidad es posible realizar el análisis de los cuerpos lamelares que son partículas de material surfactante citoplasmáticas producidas por los neumocitos tipo 2. Se encuentran en el líquido amniótico a partir de la semana 26 gestacional. Su incremento es proporcional al aumento de los fosfolípidos y de la relación lecitina-esfingomielina. Dado que presentan un diámetro similar al de las plaquetas, se cuantifican en forma similar al recuento plaquetario, en contadores hematológicos automatizados. Por este motivo la muestra no debe tener contaminación de sangre ni de meconio. La muestra es estable varios días a temperatura ambiente y más de 1 mes refrigerada. PATOLOGÍA Y LABORATORIO CLÍNICO V

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Diferentes autores han establecidos niveles de corte del recuento de cuerpos lamelares, con el uso de contadores hematológicos, para establecer madurez pulmonar fetal, por sobre 30.000 partículas/µL; sin embargo, estos recuentos están influenciados por la velocidad de centrifugación previa del líquido, al igual que por el tipo de contador hematológico utilizado, por lo que se recomienda una estandarización previa.

TÉCNICA DE LA TOMA DE CITOLOGÍA O PAPANICOLAOU El médico general o la enfermera están capacitados para enviar muestras del exocérvix y del endocérvix extendidas en forma horizontal en una sola laminilla ya sea con espátula de madera (Ayre) o con hisopo en caso de pacientes post menopáusicas sin terapia de reemplazo hormonal.

Factores que afectan la calidad de la muestra: Menstruación Inflamación o infección vaginal Relaciones sexuales dentro de las 24hs previa No colocarse óvulos Duchas vaginales

  

 

El procedimiento para lo toma consta de los siguientes pasos:     

Visualizar el cérvix Toma de muestra del exocérvix Toma de muestra del endocérvix Extendido de la muestra sobre la laminilla Fijación de la muestra

El Ministerio de Salud Pública y Asistencia Social recomienda la fijación con alcohol del 96° en menos de 5 segundos para el extendido de la muestra previo a introducirla la muestra en el frasco de boca ancha. La fijación de la muestra debe ser por un mínimo de 30 minutos, antes de sacarla y dejarla secar a temperatura ambiente, envolverla en papel Kraft o en la hoja de solicitud de citología. Si se usa bandeja de transporte, puede enviarse al laboratorio aun sumergidas en el alcohol.

TIPIFICACION VIRAL El ADN del HPV se ha podido detectar prácticamente en la mayoría de los cánceres cervicales invasores como así también en las lesiones intraepiteliales. Como mencionamos anteriormente, se detectó DNA - HPV en el 99,7% de los cánceres de cuello uterino, de los cuales los tipos 16, 18, 31 y 45 estaban implicados en el mayor porcentaje de ellos. Debido a esta alta asociación, se ha sugerido que la detección de HPV de alto riesgo podría ser utilizada como una herramienta para identificar mujeres con riesgo elevado de desarrollar cáncer cervical. Por lo tanto, un importante camino para mejorar la eficiencia del tamizaje del cáncer de cuello uterino, sería detectar en forma precoz a las mujeres que estén infectadas por HPV de alto riesgo9


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FLUJO VAGINAL Vaginosis bacteriana Características: 

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Síndrome polimicrobiano producido por el desbalance entre lactobacillus productores de peróxido de hidrógeno y gardnerella vaginalis, mycoplasma hominis y anaerobios (mobilluncus, prevotella, etc.) Leucorrea grisácea homogénea, olor a pescado. Criterio Clínico de Amsel y de Nuget

Tratamiento:   

Metronidazol gel 0.75%, 5 g/día por 5 días Clindamicina 2% crema, 5g por 7 días Metronidazol 500 mg c/12 horas v.o. x 7 días

Tricomoniasis vaginal Características:  

Producido por el protozoo flagelado Tricomona vaginalis. Leucorrea amarillo-verdosa, mal olor, ardor, petequias vaginales

Tratamiento:  

Metronidazol 2gr x 1 vez, ó Tinidazol 2 g x 1 vez

Candidiasis vaginal Características:  

Producida por la Candida Albicans. Produce edema vulvar, fisuras, excoriaciones y flujo genital blanquecino espeso.

Tratamiento:     

Butoconazol 2% crema 5 g iv por 3 días Clotrimazol 1% crema 5 g iv por 7-14 días Miconazole 100 mg óvulos, 1 óvulo por 7 días Nistatina 100.000 U por 14 días Fluconazol 150 mg vo por 1 vez

DIAGNÓSTICO INMUNOLÓGICO


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Se basa en la detección, en plasma u orina, de la fracció n β de la hormona gonadotropina coriónica humana (hCG). La fracción α no sirve por su similitud con las hormonas luteninizante (LH), foliculoestimulante (FSH) y tirotropina (TSH). La gonadotropina coriónica humana fue descubierta por Collip en 1930, pero no es hasta la década de los 80´ cuando se comienza a utilizar como prueba de rutina en el diagnóstico precoz de embarazo. La βhCG es sintetizada desde el mismo día de la implan tación y se duplica cada 1.5- 2 días. El pico máximo se alcanza hacia los días 60 – 70, a partir de los cuales desciende

para mantenerse en cifras constantes hasta los 120 días aproximadamente. Su función principal es el mantenimiento del cuerpo lúteo que, a su vez, secreta progesterona que prepara al endometrio para el normal desarrollo embrionario, tras la implantación.Es posible detectarla en sangre hacia el 8º-9º día postovulación y en orina desde que alcanza las 500mUI/ml, que suele corresponder con el 4º -5ºdia de retraso menstrual. Se pueden encontrar niveles alterados por exceso en gestaciones múltiples, mola hidatidiforme, isoinmunización o coriocarcinoma. Así mismo, pueden encontrarse alteraciones por defecto en embarazos ectópicos, abortos, gestaciones de dudosa viabilidad o muerte fetal intraútero. Las pruebas cualitativas son tan sensibles que es posible tener una prueba positiva antes de la fecha esperada de menstruación y luego no haber un embarazo clínico. Esto se debe a que no todos los embriones que se implantan progresan a un embarazo, por lo que la paciente puede tener una regla normal o un poco retrasada. A esto se le denomina “embarazo bioquímico”, es decir, prueba positiva sin signos clínicos de embarazo. Por ello una prueba positiva en la etapa premenstrual no necesariamente significa que la paciente tendrá un embarazo que se pueda detectar en los estudios clínicos, por lo que es mejor espera hasta la semana 5 para confirmar que se trata de un “embarazo clínico”. Con las pruebas cuantitativas, además del diagnostico de embarazo, se puede evaluar el bienestar embrionario así como establecer el diagnóstico de huevo anembrionario, embarazoectópico, enfermedad trofoblástica gestacional, etc. En el embarazo normal y antes de la semana 12, los valores de hCG se duplican cada 1,5 a 2 días. Las pacientes con un embarazo ectópico y los huevos anembrionados tienen un tiempo de duplicación significativamente mayor y nunca alcanzan los valores de embarazos normales. En mujeres con sangrado del primer trimestre, la determinación seriada de hCG permite distinguir aquellos embarazos viables de aquellos que terminarán en aborto porque el tiempo de duplicación de los valores en sangre es de gran valor pronóstico. En el embarazo molar, las concentraciones de hCG alcanzan valores del orden del millos de mUI/cc, mientras que los casos de coriocarcinoma, aunque con valores superiores a los del embarazo normal, nunca alcanzan estos valores.


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Factores que pueden modificar los resultados en orina: Pueden obtenerse resultados falsos negativos si se realizan las pruebas demasiado temprano en el embarazo, antes de que existan unos niveles significativos de HCG. La hematuria y la proteinuria pueden causar resultados positivos en las pruebas de orina La hemolisis pueden interferir con los resultados de la prueba Los resultados de las pruebas de embarazo que se realizan en orina pueden variar según la dilución de la orina. Algunos niveles de HCG pueden no ser detectables en orina diluida, pero pueden resultarlo en una orina más concentrada. Entre los fármacos que pueden dar resultados falsos negativos en orina se encuentran los diuréticos En los fármacos que pueden causar resultados falsos positivos se encuentran los

PERFIL HORMONAL ESPECIFICO: ESTRADIOL El estradiol es el estrógeno más importante. Es producido principalmente por el ovario de la mujer, aunque también se produce en la corteza suprarrenal y la placenta.

Funciones del Estradiol En mujeres es el responsable del desarrollo y funcionamiento de los órganos sexuales femeninos. También es el responsable de la distribución y acumulación de grasas en determinadas zonas, características del cuerpo de la mujer. Antes de la ovulación se sintetiza estradiol, para estimular la secreción de moco uterino, que facilita la llegada de espermatozoides al ovulo. Además produce el ensanchamiento de la pared del endometrio. En hombres los niveles de estradiol son mucho menores y es producido por los testículos y las glándulas adrenales.

El Estradiol en el desarrollo Cuando la mujer acerca a la pubertad, el aumento de los niveles de FSH y Estimulan al ovario a producir estradiol. Este aumento progresivo en los niveles de estradiol provoca el desarrollo de los senos, la maduración de los órganos sexuales femeninos y cambios en la distribución de la grasa corporal.

Por qué se pide la prueba Se suele pedir junto con la medición de otras hormonas femeninas, tales como FSH,LH y Prolactina, para tener una idea del estado de madurez sexual de la mujer y estudiar problemas de fertilidad o retirada de la menstruación (menopausia). Durante la menopausia los niveles de estradiol disminuyen, por lo que el reemplazo de esta hormona alivia sus síntomas, tales como sofocos y osteoporosis. También se pide si una mujer está entrando en la pubertad antes o después de lo esperado.

Valores normales de Estradiol Hombres :11 - 44 Mujeres: PATOLOGÍA Y LABORATORIO CLÍNICO V

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Fase Folicular: 21 - 250 Pico ovulatorio :38 - 650 Fase lútea :21 - 310 Menopausia sin THS <28 Menopausia con THS <144 THS= Terapia Hormonal Sustitutoria

Estradiol alto Si los niveles son muy altos pueden significar tumor ovárico

Estradiol bajo Una FSH alta junto a un bajo nivel de estradiol indica un fallo ovárico primario. Si tanto la FSH como la LH como el estradiol están bajos puede tratarse de un hipogonadismo hipogonadotropo. También podría significar síndrome de Turner.

HORMONA FOLICULO ESTIMULANTE (FSH): Esta hormona es liberada por la hipófisis en mujeres y se encarga de estimular el crecimiento y maduración de los folículos ováricos y la liberación de Estradiol durante la primera mitad del periodo menstrual en mujeres, y en hombres de la producción de espermatozoides (espermatogénesis).

Valores normales FSH Hombres: 1.40 - 13.60 mUI/ml Mujeres Fase folicular: 3.35 - 21.60 mUI/ml Pico ovulatorio: 4.97 - 20.80 mUI/ml Fase luteínica: 1.11 - 14.0 mUI/ml Post-menopaúsica: 2.58 – 150 mUI/ml

Para que se solicita la medición de FSH Hombres  

Alteraciones en la hipófisis. Estudio de la fertilidad.

Mujeres Se solicita junto con otras hormonas (LH, Estradiol, Progesterona) para el estudio de la fertilidad.  También ayuda a determinar las causas de irregularidades en el ciclo menstrual o sangrados.  Estudio de quistes ováricos.  Menopausia.  Alteraciones en el periodo menstrual. 


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Alteraciones de la FSH FSH alta Envejecimiento ovárico. A medida que la mujer avanza en edad, la reserva ovárica disminuye, haciendo más dificultosa la ovulación, con lo que los niveles de esta hormona aumentan. Esto puede ocurrir por el proceso natural de envejecimiento o por un envejecimiento prematuro.  Menopausia.  Alteraciones en la hipófisis. 

FSH baja 



Por un defecto congénito o adquirido. , donde la ausencia de producción de FSH –hormona estimulante del folículo- hace que no se produzca ovulación. En hombres: Unos niveles de FSH por debajo de lo normal pueden llevar a un conteo espermático inferior a los valores normales.

HORMONA LUTEINIZANTE ( LH) La LH es una hormona producida por la hipófisis encargada de inducir la ovulación, gracias a un aumento de sus niveles plasmáticos a mitad del ciclo menstrual. En hombres, junto con la FSH, inducen la producción de testosterona, que es la responsable de los caracteres masculinos y la producción de esperma.

Para que se pide la LH Se suele pedir cuando hay problemas de fertilidad, periodos menstruales irregulares o cualquiera de los síntomas asociados a trastornos en los niveles de LH. En el hombre unos niveles de LH por debajo de lo normal producen un conteo bajo de espermatozoides.

Valores normales de LH Hombres 1.80 - 8.20 Mujeres: Fase folicular 2.90 - 21.70 Pico ovulatorio 18.10 - 90.20 Fase luteínica 0.80 - 16.20 Post-menopausica 1.80 - 92.10

Niveles elevados de LH (LH alta) En niños pubertad prematura.   Hipogonadismo. Menopausia.  Insuficiencia ovárica.   Ovarios poliquísticos.


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  

Síndrome de Klinefelter. Síndrome de Swyer. Síndrome de Turner.

Niveles bajos de LH (LH baja)  Hipopituitarismo.  Síndrome de Kallmann  Hiperprolactinemia.  deficiencia de gonadotropina  Terapias de supresión gonadal PROLACTINA La prolactina es una hormona segregada por la hipófisis. Su función principal en mujeres es la estimulación de las glándulas mamarias para la producción de leche tras el parto. También estimula la síntesis de progesterona en el cuerpo lúteo. En hombres no se ha descubierto ninguna función.

Valores normales de la prolactina: Normalmente esta hormona está en pequeñas cantidades en hombres y mujeres no embarazadas. En embarazadas va aumentando durante el embarazo y alcanza el valor máximo tras el parto, cuando empieza el periodo de lactancia.

Valores de la Prolactina Varones :2.60- 18.1 ng/mL Mujeres no embarazadas :1.20- 30.0 ng/mL Embarazadas Primer trimestre: 22.5-150.7ng/mL Embarazadas Segundo trimestre: 52.3-211.5 ng/mL Embarazadas Tercer trimestre: 98.7-558.4 ng/mL Tras el parto: 191.8-621.5 ng/mL

Cuando se solicita la prueba La prolactina se solicita tras la aparición de varios síntomas: 

∑ Galactorrea. Cuando las glándulas mamarias producen leche sin estar en el

periodo de lactancia. 

∑ Menstruaciones irregulares o ausentes. Cuando aumenta la prolactina

aumenta también la dopamina para regularla, que influye en la producción de GnRH por el hipotálamo, que a su vez provoca una alteración del ciclo menstr ual. 

∑ Sospecha de tumor hipofisiario. Hace que las células de la hipófisis produzcan

prolactina sin control. 

∑ Infertilidad e impotencia en hombres.  ∑ Infertilidad y disminución del deseo sexual en mujeres


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Causas de prolactina alta (Hiperprolactinemia) La prolactina puede verse aumentada en casos de: Tumores hipofisiario. Hipotiroidismo  Enfermedades renales  Déficit dopaminergico. La dopamina inhibe la síntesis de prolactina, con lo que  un problema en la liberación o producción de dopamina aumentaría los niveles plasmáticos de prolactina. Ciertos medicamentos también producen una elevación de los niveles, como los  estrógenos, algunos antidepresivos o metildopa. 


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ANEXOS


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CONCLUSIONES


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BIBLIOGRAFÍA http://www.creaticax.com/llontop/boletin01.pdf DIAGNÓSTICO CLÍNICO DE EMBARAZO. DIAGNÓSTICO BIOLÓGICO, INMUNOLÓGICO Y ECOGRÁFICO GUÍA DE PRUEBAS DIAGNÓSTICAS Y DE LABORATORIO GUÍA DE PRÁCTICA CLÍNICA Gin. Screening de cáncer de cuello uterino- 2008 LABORATORIO DE DESTREZAS CLÍNICAS- EXAMEN GINECOLÓGICO Y TOMA DE PAP TEST. http://www.creaticax.com/llontop/boletin01.pdf


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MONOGRAFIA MODIFICADA

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