Mora, M y Zelada, W.
INFORME ANÁLISIS DE LA MICROFLORA, MICROFAUNA, FLORA Y FAUNA DE LA “FORTALEZA DE KUELAP” Los seres vivos durante su desarrollo realizan una serie de acciones, relacionándolos con todo lo que le rodea. En tal sentido, pueden modificar imperceptiblemente, en parte o intensamente el ambiente donde viven. Las acciones que permiten dicha modificación son provocadas por el uso del ambiente como sustrato o refugio por plantas o animales respectivamente. Por tanto, la acción causa modificación cuando el sustrato o ambiente es de naturaleza débil o frágil. Sin embargo, muchas de las veces, la colonización de los sustratos por parte de la microflora y por ende de la microfauna, permite cierta protección de las inclemencias ambientales, ya que estas son en algunos de los casos, muy fuertes provocando modificaciones irreversibles, no así la acción de la flora y la fauna, que a excepción de las algas, líquenes, musgos y helechos, pueden provocar una imperceptible modificación a un largo plazo.
I. BIOTA DE LA FORTALEZA DE KUELAP Y AMBIENTES ALEDAÑOS: El análisis de los muros, bloques y estructuras de piedra de la Fortaleza de Kuelap, así como de sus ambientes internos como extramuros, da a conocer 173 especies ( flora flora y fauna). Ademàs se ha realizado un un cultivo microbiològico de los raspados de las piedras de los muros del del Tintero, del vestìbulo hacia el torreòn, de la casa reconstruida, de la tercera entrada , del sector norte de la fortaleza, de la muralla este del pueblo alto y de la parte porterior a la segunda entrada, reportando la presencia de de 3 especies de hongos hongos , bacterias gram positivas , gram negativas. 1. FLORA: El análisis da a conocer un total de 111 especies, con 05 líquenes, 03 briófitas, 07 pteridófitos, y 96 angiospermas. Lichens Cyanophilales Chrisothrichaceae Chrysothrix nolitangere + Chrysothrix sp.
Rocellales Rocellaceae Rocella peruensis
Lecanarales Usneaceae Usnea andina
Corales Coraceae
Cora sp.
+
1 NOTA: - Formas de Uso: 1: Alimenticio, 2: Medicinal, 3: Tintóreo-Taninos, 4: Maderable, 5: Combustible. - (+) Indica su presencia en las paredes o construcciones de piedra de la Fortaleza. - (*) Vistos cerca al poblado de María.
Mora, M y Zelada, W.
Briophyta Bryales Bryaceae Bryum
sp. “musgo”
+
Dicranaceaea Campylopus sp. “musgo”
+
Polytrichum sp. “musgo”
+
Polytrichales Polytrichaceae
Pterydophyta Polypodiales Polypodiaceae
+
Adiantum sp. “helecho” Asplenium peruvianum “helecho” + Asplenium trifilum + Asplenium monanthes Elaphoglossum sp. 1 Campyloneurum sp. 2 Campyloneurum sp.
Angiospermae Juglandales Juglandaceae Juglands neotropica
“nogal” 1,2,3,4 *
Fagales Betulaceae Alnus acuminata
“aliso” 2,3,4,5 *
Urticales Urticaceae Moraceae
Urtica andicola Brosimum sp.
4
Proteales Proteaceae Oreocallis grandiflora “saltaperico”
2
Polygonales Polygonaceae Muehlenbeckia tamnifolia
2
Centrospermales Amaranthaceae Amaranthus gracilis Amaranthus sp. Alternanthera porrigens
“moradilla”
Magnoliales Lauraceae Aniba sp. “ishpingo”
Ranunculales 2
Mora, M y Zelada, W.
Briophyta Bryales Bryaceae Bryum
sp. “musgo”
+
Dicranaceaea Campylopus sp. “musgo”
+
Polytrichum sp. “musgo”
+
Polytrichales Polytrichaceae
Pterydophyta Polypodiales Polypodiaceae
+
Adiantum sp. “helecho” Asplenium peruvianum “helecho” + Asplenium trifilum + Asplenium monanthes Elaphoglossum sp. 1 Campyloneurum sp. 2 Campyloneurum sp.
Angiospermae Juglandales Juglandaceae Juglands neotropica
“nogal” 1,2,3,4 *
Fagales Betulaceae Alnus acuminata
“aliso” 2,3,4,5 *
Urticales Urticaceae Moraceae
Urtica andicola Brosimum sp.
4
Proteales Proteaceae Oreocallis grandiflora “saltaperico”
2
Polygonales Polygonaceae Muehlenbeckia tamnifolia
2
Centrospermales Amaranthaceae Amaranthus gracilis Amaranthus sp. Alternanthera porrigens
“moradilla”
Magnoliales Lauraceae Aniba sp. “ishpingo”
Ranunculales 2
Mora, M y Zelada, W. Ranunculaceae Ranunculus praemorsus praemorsus Clematis sp.
“centella”
2
Piperales Chloranthacae Hedyosmun angustifolium
Piperaceae
“aytacupi”
2
Piper sp. “matico” 2 Peperomia verticillata 2 Peperomia galioides
Rosales Rosaceae
2
Hesperomeles cuneata “huanga” 1 Rubus roseus “zarzamora” Fragaria chiloensis “fresa silvestre”
Fabaceae Desmodium scorpium “pié de perro” 2 Psoralea glandulosa “culén” Lupinus sp. 1 Lupinus sp. 2
Krameriaceae Krameria lappacea
2
“ratania” 2,3
Geraniales Geraniaceae Geranium sessiflorum Geranium limae.
Oxalidaceae Oxalis megalorrhiza “chulco”.
Daphniphyllaceae Daphnopsis sp.
Sapindales Anacardiaceae Mauria heterophylla
“gian”, “titil”
2,4
Violales Passifloraceae Pasiflora mollisima “poro-poro”
1
Loasaceae Loasa sp.
Cucurbitales Cucurbitaceae Cucurbita sp.
Myrtiflorae Myrtaceae Myrcianthes lymbata Myrcianthes sp. “lanche”
Onagraceae Fuchsia ayavacensis Oenothera campylocalyx
Melastomataceae 3
Mora, M y Zelada, W. Miconia sp. Brachyotum quinquenerve quinquenerve
“zarcilleja”
Umbelliflorae Apiaceae Foeniculum vulgare
2
“hinojo”
Gentianales Loganiaceae Buddleja incana
“quishuar” 4
Gentianaceae Gentianella bicolor “corpus–huay”
2
Tubiflorae Polemoniaceae Cantua quercifolia “pepiso”
Boraginaceae Cordia macroceph m acrocephala ala .
Lamiaceae
2
Melissa officinalis “toronjil” 2 Rosmarinus officinalis “romero” Mynthostachys tomentosa “chancua” 2 Salvia tubiflora “salvia” 2 Salvia punctata “chachacoma amarilla” 2 Salvia sp. 2 Satureja sp.
Solanaceae Solanum inmite Solanum sp . “tomatillo” 2 Cestrum auriculatum “hierba santa” Nicotiana sp.
Scrophulariaceae Bartsia bartsioides Calceolaria sp. 1 Calceolaria sp. 2
Plantaginales Plantaginaceae Plantago sp. “llantén”
2
Dipsacales Caprifoliaceae Viburnum sp . Sambucus peruviana
“saúco” 2,3
Dipsacaceae Dipsacus fullonum
“cardón”
Valerianaceae Valeriana sp. “valeriana”
Campanulales Asteraceae
2
2
Baccharis glutinosa “chilca” 2 Baccharis salicifolia “chilco” 2 Baccharis genistelloides “carqueja” Bidens andicola Bidens squarrosa
4
Mora, M y Zelada, W. Cronquistianthus sp. 2 Tagetes pusilla 2 Senecio sp. 2 Ageratum conyzioides Coreopsis peruviana . 2 Silybum marianum “cardo” 2 Sonchus oleraceus “cerraja” Lepidophyllum quadrangulare Barnadesia dombeyana Ophryosporus peruvianus
Liliflorae
“tola”
5,6
Liliaceae Stenomesson sp. Bomarea aurantiaca
Bromeliales Bromeliaceae
Tillandsia sp. “achupalla” Puya sp.
Poales Poaceae Pennisetum clandestinum “kikuyo” Cenchrus sp . Paspalum sp. Panicum sp. Stipa sp. Cortaderia sp. “cortadera” Bromus catharticus “grama” Leptochloa uninervia “grama” Cynodon dactylon “grama dulce”
Microspermae Orchidaceae Especie 1 Especie 2 Especie 3 Especie 4 Especie 5
2. FAUNA El análisis da a conocer un total de 62 especies, con 06 arácnidos, 16 insectos, 01 anfibio, 01 reptil, 33 aves y 05 mamíferos. 2.1. Arthropoda Arachnida Especie 1 + Especie 2 + Especie 3 Especie 4 Especie 5 Especie 6 5
Mora, M y Zelada, W. Insecta Homoptera Cicadellidae Especie 1 Orthoptera Proscopidae Especie 1 “insecto palo de antenas cortas” Acriidae Especie 1 “langosta” Coleoptera Scarabeidae Especie 1 “escarabajo de un cuerno” Odonata Libelullidae Libelulla sp.
“libélula”
Lepidoptera Nymphalidae Especie 1 Especie 2 Especie 3 Especie 4 Especie 5 Hymenoptera Apidae Apis mellifera “abeja”
………. Sp. 1 “avispa” Sp. 2 “avispa” Diptera Tipulidae Tipula sp
Culicidae Aedes
sp.
Lampyridae Especie 1
2.2. Amphibia Anura 2.2. Reptiles Squamata Tropiduridae
Sp. 1 **
Stenocercus sp.”lagartija”
6 NOTA: - (*) Registrado externamente a la fortaleza. - (**) Registrado por canto - (***) Registrado por comunicación personal - (****) Registrado por olores, huellas u indicios. - (+) Indica su presencia en las paredes o construcciones de piedra de la Fortaleza.
Mora, M y Zelada, W.
2.3. Aves Tinamiformes Tinamidae Nothoprocta sp.
“perdíz” (**)
Galliformes Cracidae Penelope ortoni
“sachahuashpa”, “pava de monte” *
Columbiformes Columbidae Columba fasciata albilinea “torcaza” Leptotila sp.
Ciconiformes Cathartidae Cathartes aura “gallinazo cabeza roja” Coragyps atratus “shuca”, “gallinazo cabeza negra”
Falconiformes Accipitridae Buteo albicaudatus
”gavilán” *
Falconidae Falco sparverius
“cernícalo” *
Strigiformes Strigidae Glaucidium brasilianum “talacua”
**
Caprimulgiformes Caprimulgidae Chordeiles sp.
Micropodiformes Trochilidae Colibri coruscans Aglaeactis cupripennis Chlorostilbon sp. Amazilia versicolor Thaluramia sp. Chalybura sp.
Psittaciformes Psittacidae Aratinga wagleri
*
Piciformes Picidae Piculus sp.
Passeriformes Tyrannidae Contopus virens Myarchis tuberculifer Todyrostrum cinereum
Hirundinidae
Notiochelidon cyanoleuca
“golondrina”
+
7
Mora, M y Zelada, W. Turdidae Turdus fuscater Turdus sp.
Troglodytidae Troglodytes aedon
Icteridae Cacicus leucorhamphus
*
Vireonidae Vireo olivaceus
Fringillidae
1
Dendroica sp. 2 Dendroica sp. Vermivora sp“reinita” Pheucticus chrysopeplus
Emberizidae
Zonotrichia capensis
“gorrión peruano”
Certhiidae Donacobius atricapillus
2.4. Mammalia Lagomorpha Leporidae Sylvilagus brasiliensis “conejo” ***
Rodentia Muridae Sp.1 “ratón silvestre” Chinchillidae Lagidium peruanum
“vizcacha” ***
Carnivora Mustelidae Conepatus sp. ****
Artiodactyla Camelidae Lama glama
“llama”
3. FLORA MICROSCÓPICA 3.1. Fungi Moniliales Moniliaceae Aspergillus sp. Penicillium sp.
Dematiaceae Helminthosporium
3.2. Bacteriophyta Bacterias Gram (- ) y Gram ( + ) por identificar 8
Mora, M y Zelada, W.
II. PROPUESTA DE MÉTODOS Y TÉCNICAS PARA ENRIQUECER EL REGISTRO BIOLÓGICO Y MICROBIOLÓGICO QUE DESARROLLA EL PROYECTO: PROPUESTA TÉCNICA Las características de la zona como unidad sistémica, alberga importantes poblaciones de fauna, como mamíferos, aves, reptiles, anfibios e invertebrados (arácnidos, insectos, etc.); y de flora, en todas sus categorías taxonómicas, las cuales encuentran un ambiente propicio para su desarrollo, alimentación, reproducción y refugio. Sobre la base de una labor de monitoreo en las comunidades biológicas del área, se requiere definir parámetros sensibles a cambios ambientales, que además tengan la propiedad de ser fácilmente replicados y comparados en el tiempo. La presente propuesta propone caracterizar el área, además de realizar un inventario de la fauna de vertebrados y de invertebrados que dependen en gran medida de esta comunidad (Bosques nublados achaparrados y de montaña). Esta evaluación que relacionará los conceptos de Análisis Comunitario (diversidad), permitirá definir los parámetros adecuados para actividades de supervisión y monitoreo (sostenibilidad) en el área de estudio (Fortaleza de Kuelap y sus bosques aledaños).
2.1. Análisis de Comunidad : Los estudios relacionados con la diversidad, tienen como elementos comunes: la variación (o número de especies) y la abundancia relativa de especies, que implica que la diversidad puede medirse registrando el número de especies, calculando su abundancia relativa o usando una medida que combine los dos primeros componentes. En tal sentido, se propone realizar la estimación de la riqueza de especies, la abundancia relativa de las especies y su distribución horizontal en el área de estudio de la fauna residente y temporal, empleando los índices de diversidad de Simpson y de ShannonWeaver, y su densidad poblacional respectiva. El trabajo comprenderá un muestreo sistemático a lo largo del área de estudio, mediante el Índice Kilométrico de Abundancia (IKA) y el Índice Puntual de Abundancia (IPA), durante 14 días, en cada sesión de monitoreo; registrando datos desde el amanecer (05.30 a.m.) hasta las primeras horas de la noche (10.00 p.m.) registrando la hora de contacto, hábitat, especie y número de individuos por especie, y actividad. El muestreo se realizará empleando tres personas, uno de ellos anotará los datos, mientras que el otro observará, directamente o empleando binoculares. La tercera persona de campo, ayudará a colocar las trampas para captura, además registrará las tomas fotográficas y grabaciones de canto o filmaciones en caso de ser necesario.
2.2. METODOLOGÍA PARA EL MONITOREO DE LA FAUNA Se realizaran monitoreos rápidos, utilizando para ello caminos, senderos, trochas, nuevas rutas y parcelas como puntos fijos de monitoreo permanente. Empleando para cada grupo de vertebrados y de invertebrados, la metodología más adecuada de acuerdo a las características de la zona, y al tipo de fauna, lo cual describimos a continuación:
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Mora, M y Zelada, W.
2.2.1. MAMÍFEROS: Los registros se realizaran mediante el recorrido de un transecto; la que se realizará principalmente en horas de la mañana y de la tarde por picas lentamente (aproximadamente 1km/h), con frecuentes y cortas paradas, tratando de detectar e identificar visualmente (ayudados por binoculares) o por oído, los animales presentes, acumulando así observaciones por varios kilómetros. Se anotaran a todos los individuos observados (Solos o en grupo) y la distancia recorrida, así como las posibles huellas (huellas dactilares y plantares) o se recolectaran indicios (Heces, restos de alimentos y otros) que indiquen la presencia de un mamífero. Asimismo, se colocarán trampas para mamíferos pequeños, como roedores, en puntos considerados como los más concurridos por ellos. 2.2.2. AVES: El Registro se llevara a cabo durante el día (especialmente en las primeras horas de la mañana y las últimas horas de la tarde) y la noche (primeras horas de la noche). Se empleara el IKA e IPA, en el primero se observaran o detectaran mediante su presencia, canto, o indicios (nidos, dormideros, plumas, restos de las aves, heces, etc.) recorriendo una transecta en línea, lo cual acumulara varios kilómetros. En el segundo, se realizaran paradas en puntos fijos, y se observara y detectara en un radio de acuerdo a las condiciones de visibilidad del área (generalmente 25 metros o menos diámetro), por espacio de 10 minutos. En ambos casos la detección e identificación visual de las aves, se realizara con ayuda de binoculares o por oído (canto). También se colocarán las llamadas redes de neblina para capturar algunas de las especies y confirmar su nombre. HERPETOFAUNA: Los registros se realizaran mediante el recorrido de un transecto en banda, dependiendo de la visibilidad dentro del área de trabajo; la que se realizara principalmente en horas de la mañana y de la tarde (reptiles), por picas lentamente (aproximadamente 1km/h), con frecuentes y cortas paradas, tratando de detectar e identificar visualmente o por oído, de los animales presentes, acumulando así observaciones por varios kilómetros. Se anotaran a todos los individuos observados y la distancia recorrida, así como las posibles huellas o indicios (ecdisis, oquedades, rastros zigzagueantes, huellas digitales, palmares y caudales—para reptiles) que indiquen su presencia. Para el caso de anfibios, se registrará a través del muestreo de búsqueda por encuentro visual (VES), sobretodo entre las 6.00 a 10.00 p.m.; metodología que permite obtener un inventario más completo y datos sobre abundancia relativa. INSECTOS: Los registros se obtendrán mediante dos formas. La primera mediante una red de golpeo, se capturarán realizando golpeos recorriendo las áreas o caminos llenos de vegetación, para luego, una vez capturados, ser colocados en un frasco matador, en donde serán sacrificados y posteriormente trasvasados a depósitos para ser llevados a gabinete para su análisis taxonómico correspondiente. La segunda forma, será mediante trampas de luz, las cuales se colocarán en las noches, de donde al final del período nocturno se recolectarán de la trampa todos los insectos que hayan sido atrapados, en frascos para su traslado al gabinete para su análisis correspondiente. ARÁCNIDOS Y OTROS INVERTEBRADOS : La captura de arañas, escorpiones, ciempiés, milpiés, entre otros, se llevará a cabo con pinzas. Luego serán colocados en frascos, para ser trasladados a gabinete para ser analizados.
10
Mora, M y Zelada, W. Además, se registraran los animales muertos o sacrificados por acciones antrópicas y naturales, en el área de trabajo y anexas. En caso de captura de ejemplares de cualquier grupo taxonómico se pesaran, se determinara el sexo, se determinara su etapa etárea, se realizaran medidas corporales, y una descripción topográfica, y luego serán devueltos a su ambiente. En caso que los ejemplares colectados no puedan ser identificados en campo se fotografiarán, fijarán y preservarán para su identificación.
TRAMPAS: Mamíferos: Las trampas a emplear para roedores serán las de guillotina en número de 50 (25 pequeñas y 25 grandes), y de ser necesario las trampas VICTOR para roedores pequeños, y las Tomahauwk para el caso de mamíferos medianos (vizacachas). Aves: Para el caso de aves se emplearán las redes de neblina en número de tres a cuatro, la que permitirá capturarlas y obtener información más detallada de las especies. Insectos: En insectos emplearemos las trampas de luz y trampas de caída. METODOLOGÍA PARA EL MONITOREO DE LA FLORA Se realizaran monitoreos rápidos, utilizando para ello los caminos ya establecidos, senderos, trochas, nuevas rutas y parcelas como puntos fijos de monitoreo permanente. Se realizarán recorridos, colectando ejemplares de cada biotipo florístico; la recolección comprenderá la obtención de una muestra florística, la cual deberá ser obtenida con una tijera podadora. Dicha muestra debe tener como mínimo tallos, hojas y flores, o fruto, en caso de no haber flores, o ambos, si presentan los dos. Asimismo, de algunas de ellas se necesitarán las raíces en caso de ser tuberosas. Dichas muestras serán llevadas a prensas botánicas, para su traslado a gabinete, donde luego serán herborizadas, no sin antes haber sido secadas y fijadas. En gabinete se analizarán taxonómicamente. METODOLOGÍA PARA EL MONITOREO DE LA MICROFLORA Y MICROFAUNA: Para realizar el análisis microbiológico se procederá en dos fases: 1º Toma de Muestra : Consiste en obtener una porción, fragmento o raspado de las áreas o estructuras o suelos donde haya formaciones macrobióticas en desarrollo o donde exista la probabilidad de que se este iniciando el desarrollo de microorganismos. Dicha muestra se obtiene con un Asa de Khol o de una microespátula. Luego, la muestra es depositada en un recipiente previamente esterilizado, el cual es cerrado posteriormente herméticamente para su traslado a laboratorio para su análisis respectivo. 2º Trabajo de Laboratorio : Comprende la siembra de la muestras en medios de cultivos específicos, para posteriormente observar la existencia de algunos microorganismos como bacterias, hongos y algas microscópicas.
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Mora, M y Zelada, W.
III. PROPUESTA DE LA METODOLOGÍA Y TÉCNICAS DE INTERVENCIÓN TANTO EN TRABAJO DE CAMPO COMO EN GABINETE INHERENTES AL TRABAJO DE CONSERVACIÓN DEL MONUMENTO : Limpieza del monumento periódico (trimestral), manualmente, extrayendo los organismos vivos de las paredes o muros (enteras o partes, secas o verdes), especialmente si hay raíces, tratar de extraerlas, sobretodo de helechos ya que forman rizomas; o en el caso de gramíneas (especialmente Pennisetum calndestinum) extraerlas las raíces por que forman estolones, teniendo una propagación muy rápida y eficaz, abarcando todo tipo de terreno o estructuras. Con respecto a los musgos, coincidimos con la opinión del Conservador Ricardo Morales, que su presencia no perjudica al monumento, sino que sirve de soporte y protección, por lo que sugerimos su permanencia. En el caso de la presencia de lìquenes y hongos, proponemos una limpieza con àcido bórico (H3BO3) al 50 / 1000, con una esponja suave, colocando los residuos de esta acción en un pozo diseñado para este fin. Monitoreo biológico del monumento y áreas aledañas intervenidas trimestralmente, para visualizar que especies tienden a permanecer y resistir el tratamiento que se esta aplicando, y replantear alguna modificación en el tratamiento. Una vez restaurada la estructura de El Tintero, se debe hacer un mantenimiento trimestral, lo mismo que se sugiere para toda la fortaleza. Toda acción debe ser coordinada con los especialistas a su debido tiempo.
IV. PROPUESTA DEL USO DE EQUIPOS, MATERIALES Y HERRAMIENTAS PARA USO EN EL REGISTRO MICROBIOLÓGICO Y BIOLÓGICO Y LA INTERVENCIÓN DEL MONUMENTO . - Binoculares - Redes de neblina - Trampas Thomawauk - Trampas Victor - Cebos - Elásticas de jebe - Frascos de vidrio y de plástico - Redes de golpeo - Trampas de luz - Linternas - G.P.S. - Higrómetro - Termómetros ambientales - Ph-metro - Placas Petri. - Tijeras podadoras - Tijeras podadoras telescópicas - Juego de arneses. - Prensas botánicas - Estufa - Cámara fotográfica digital con Zoom - Cámara Filmadora digital - PC Pentium IV 12
Mora, M y Zelada, W. -
Scanner Impresora Bolsas de dormir Carpa de campaña Botas de jebe Winchas de 10, 20 y 50 m
V. PROPUESTA DE CRONOGRAMA, ETAPAS Y PRESUPUESTO PARA LA INTERVENCIÓN DEL EDIFICIO “EL TINTERO”. Limpieza y Mantenimiento trimestral (15 días) Supervisión calificada (1) S/. 1500 Mano de obra no calificada (10) S/. 2300 Materiales S/. 300 _________________________________ Subtotal S/. 4100 Monitoreo Biológico trimestral (15 días) Especialistas (2) S/. 5000 Materiales S/. 2500 Viáticos S/. 2500 __________________________________ Subtotal S/. 10000 __________________________________ TOTAL S/.14100
ANEXOS FOTOGRAFÍAS DE LAS ÁREAS ESTUDIADAS, DE LA FLORA QUE AFECTA A LA VISUALIZACIÓN DEL MONUMENTO, DE LA FLORA Y FAUNA DE LA FORTALEZA Y ÁREAS ALEDAÑAS.
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Mora, M y Zelada, W.
Recolección de las muestras de la microflora y microfauna, en la pared de la tercera entrada
Mora, M y Zelada, W.
Fragmento de la pared del Tintero mostrando líquenes u hongos
Fragmento de la pared del Tintero mostrando líquenes u hongos
Mora, M y Zelada, W.
Fragmento de la pared del Tintero mostrando entre las piedras una fanerógama.
Fragmento de la pared del Tintero mostrando en las ranuras helechos
Mora, M y Zelada, W.
Fragmento de la pared del Tintero mostrando las ranuras llenas de raíces de fanerógamas y helechos.
Fragmento de pared del muro de la tercera entrada mostrando a Geranium sp., entre las ranuras de las piedras.
Mora, M y Zelada, W.
Pared de la tercera entrada con “líquenes”.
Pared de la tercera entrada con líquenes, musgos y algunas gramíneas.
Mora, M y Zelada, W.
Fragmento de pared del muro de la tercera entrada mostrando a Asplenium trifilum, entre las ranuras de las piedras.
Muro del lado Este de la fortaleza contigua a la tercera entrada, con las ranuras llenas de gramíneas: Pennisetum clandestinum “kikuyo “
Mora, M y Zelada, W.
Asplenium trifilum
desarrollándose entre las ranuras de las paredes de la casa reconstruida
Asplenium trifilum y Adiantum sp. desarrollándose entre las ranuras de las
la casa reconstruida
paredes de
Mora, M y Zelada, W.
Arácnido desplazándose sobre las piedras de la pared del Tintero
Apis mellifera sobre una Asteraceae
Mora, M y Zelada, W.
Ejemplar de Proscopidae “insecto palito de antenas cortas”
Mantidae “insecto mantis” entre los líquenes
Mora, M y Zelada, W.
Lepidoptera
Lepidoptera
Mora, M y Zelada, W.
Lepidoptera
Lepidoptera
Mora, M y Zelada, W.
Lepidoptera
Saurio del género Stenocercus
Mora, M y Zelada, W.
Chlorostilbon sp.
Thaluramia sp.
Mora, M y Zelada, W.
Amazilia sp. “picaflor”
Turdus fuscater
Mora, M y Zelada, W.
Zonotrichia capensis
“gorrión peruano”
Ejemplares de Lama glama cerca de la primera entrada de la Fortaleza
Mora, M y Zelada, W.
Oreocallis grandiflora “saltaperico”
Orchidaceae “orquídea”
Mora, M y Zelada, W.
Orchidaceae
Flor de Lepidophyllum quadrangulare “tola”
Mora, M y Zelada, W.
Flor de Fucsia ayavacensis
Barnadesia dombeyana .
Mora, M y Zelada, W.
Lupinus sp.
Calceolaria sp.
Mora, M y Zelada, W.
Stenomeson sp.
Flor de Passiflora mollisima “pur-pur”
Mora, M y Zelada, W.
Formación boscosa dentro de la Fortaleza de Kuelap mostrando Usnea andina.
Solanum sp.
Mora, M y Zelada, W.
Rubus glaucus
“zarzamora”
Rubus glaucus
“zarzamora”
Mora, M y Zelada, W.
Piper sp. “matico”
Puya sp.
Mora, M y Zelada, W.
Salvia sp. “salvia”
Tillandsia sp.
Mora, M y Zelada, W.
Plantago sp. “llantén”
Muro Sur-Oeste de la Fortaleza cerca de la segunda entrada.
Mora, M y Zelada, W.
Bosque aledaño a la fortaleza, del lado Este con fragmentos con roza
Aspergillus sp. (400x) Hongo encontrado en raspado de paredes
de El Tintero.
