Propagacion en Plantas de Maiz

SELECCIÓN DEL MATERIAL DE SIEMBRA Y PROPAGACIÓN PROPAGACIÓN DE MANGO CRIOLLO Jairo García Lozano I.A. M.Sc. Jorge A. Bernal E. I.A. M.Sc. Cipriano A. Díaz D. I.A. José Arboney Guzmán A.T Guzmán A.T..

Boletín Divulgativo

Centro de Investigación Nataima Espinal - Tolima 2009

García L., Jairo; Bernal E., Jorge A.; Díaz D., Cipriano A.; Arboney G., José / Selección del material de siembra y propagación de mango criollo. Colombia. Corpoica. 2010. 24 p. Palabras clave: MANGO; PROPAGACIÓN VEGETATIVA; INJERTO.

Publicación de la Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria, CORPOICA, financiada por ASOHOFRUCOL, el Fondo Nacional de Fomento Fomento Hortifrutícola, FNFH FNF H y el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, MADR.

© Corporación Colombiana Colombiana de Investigación Agropecuaria Agropecuaria –CORPOICA– Centro de Investigación Nataima Línea de atención al cliente: 01800012151 018000121515 5 [email protected] www.corpoica.org.co ISBN 978-958-740-022-9 CA: PR06100142 CUI: 1114 Tiraje: 1.000 ejemplares ejemplares Primera edición: abril de 2010 Producción editorial

Teléfono Teléfono 422 7356 7356 Bogotá, Bogotá, DC, Colombia www.produmedios.org www.produmedios.org Diseño y diagramación: markita/jalexa Impreso en Colombia Printed in Colombia

os autores agradecen el financiamiento otorgado por el Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural (MADR) y los recursos asignados por el Fondo Nacional de Fomento Hortifrutícola (FNFH), administrados por la Asociación Hortifrutícola de Colombia (ASOHOFRUCOL) para el desarrollo de esta investigación en el marco del proyecto “Evaluación, caracterización y selección de cultivares de mango criollo presentes en las regiones occidente, norte y centro del país para mejorar la competitividad del cultivo de mango en Colombia”.

Para mayor información contactar en Corpoica a: Jairo García Lozano [email protected] C.I. Nataima Jorge Alonso Bernal [email protected] C.I. La Selva

Selección del material de siembra y propagación de mango criollo

Presentación ............................................................................................................................................................................................................................... 5 Selección de plantas madre .................................................................................................................................................................................7 Propagación sexual .......................................................................................................................................................................................................... 9 Propagación asexual o vegetativa ........................................................................................................................................................... 11 ACODO AÉREO ..................................................................................................................................................................................11

PROPAGACIÓN IN VITRO ....................................................................................................................................................... 12 Embriogénesis somática ....................................................................................................................................... 12 PROPAGACIÓN POR INJERTO .............................................................................................................................................13 Elección del patrón o porta injertos ..........................................................................................................13 Selección, extracción y preparación de la semilla ................................................................... 14 Siembra directa en bolsas ...................................................................................................................................16

Germinación .........................................................................................................................................................................16 Preparación del sustrato .......................................................................................................................................16 Desinfección física ........................................................................................................................................................17 Desinfección química.................................................................................................................................................17

Vivero ............................................................................................................................................................................................17 Selección, extracción y preparación de las yemas ..................................................................18 TIPOS DE INJERTO........................................................................................................................................................................19 Injerto de yema terminal en púa....................................................................................................................19 Injerto de yema terminal en bisel ................................................................................................................19 Injerto de yema lateral ............................................................................................................................................20 Injerto de enchape lateral ...................................................................................................................................20 Variantes y adaptaciones a la injertación de costado.......................................................... 21

Referencias consultadas ..................................................................................................................................................................................... 22 Glosario ............................................................................................................................................................................................................................................23

l Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural –MADR–, el Fondo Nacional de Fomento Hortifrutícola –FNFH– y la Asociación Hortifrutícola de Colombia –ASOHOFRUCOL–, en respuesta a la necesidad de fortalecer acciones encaminadas a definir el potencial productivo del mango para la agroindustria en Colombia, asignó mediante convocatoria pública los recursos necesarios para adelantar el proyecto Evaluación, caracterización y selección de cultivares de mango criollo presentes en las regiones occidente, norte y centro del país para mejorar la competitividad del cultivo de mango en Colombia. Este proyecto se enfocó hacia la identificación y

caracterización de las variedades colombianas de mango criollo, con la finalidad de conocer sus características morfoagronómicas y atributos fisicoquímicos del fruto, para el mercado en fresco y principalmente el procesado. Para divulgar a la comunidad técnica y productores los resultados obtenidos en el proyecto, se elaboraron cuatro documentos: Descripción de las variedades colombianas de mango criollo, Atributos de calidad del mango criollo para la agroindustria, Selección del material de siembra y Propagación de mango criollo, y un sistema de información georreferenciado de los árboles de mango que cumplen los requisitos mínimos para la agroindustria. La Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria –CORPOICA–, ejecutora de este proyecto, pone a disposición de la comunidad en esta oportunidad y por solicitud expresa de ASOHOFRUCOL, las recomendaciones sobre métodos de propagación que se pueden utilizar en mango criollo. Se hace de manera ilustrada y sencilla con la ayuda de imágenes, con el fin de guiar a los usuarios paso a paso.

LORENZO PELÁEZ SUÁREZ

Director del C.I. Nataima

a siembra de plantas de buena calidad es quizás el principal interés para el productor de mango. En el caso del mango criollo, los trabajos adelantados por Corpoica ratifican el hecho de que un mismo material genético se comporta de manera diferente en diversos ambientes, presentando una alta variabilidad fenotípica y en sus caracteres fisicoquímicos, es decir, una misma variedad naturalizada o criolla puede variar sus características de forma, tamaño y sabor dependiendo del ambiente donde se cultive. Los caracteres deseados para la agroindustria como son los grados brix (sólidos solubles) y rendimiento en planta (peso de la pulpa y semilla), junto al tamaño del fruto presentan rangos muy variables. Por esta razón, lo aconsejable es identificar en cada microrregión aquellos árboles que presenten características sobresalientes de calidad (García, Floriano et al ., 2008). La identificación de atributos deseables y sobresalientes en un árbol de mango criollo para ser usado como planta madre o productora de yemas, en programas de propagación masiva de árboles con destino al establecimiento de cultivos comerciales de mango para la agroindustria, se puede realizar mediante sencillos análisis físicos y químicos del fruto y la pulpa:  Firmeza: frutos

que no se maltraten y ablanden fácilmente con la manipulación durante la cosecha, el almacenamiento y el trasporte.



Peso total del fruto: aunque normalmente los frutos de mango criollo para agroin-

dustria son de tamaño pequeño, es recomendable ser más exigentes y buscar frutos con pesos promedio mayores a 200 g.

 Rendimiento

en planta: es un parámetro de calidad por parte de la industria, se

refiere al porcentaje del fruto que queda una vez se elimina la cáscara. Incluye el peso de la pulpa y la semilla y se espera que este porcentaje sea mayor al 75%. Es decir, deben ser frutos con cáscaras delgadas y semillas pequeñas. Los árboles ideales pueden alcanzar a tener el 75% en sólo pulpa.



Contenido de sólidos solubles: este parámetro es de mucha importancia para la

agroindustria, se refiere al nivel de dulce o azúcares que pueda tener la pulpa. Se mide en grados brix mediante el uso de un equipo llamado refractómetro. El parámetro mínimo es de 14 ºBrix pero los mangos seleccionados como élite pueden superar los 18 ºBrix.

Mayor información sobre las propiedades de los frutos de los mangos criollos colombianos se puede encontrar en el documento Atributos de calidad de los mangos criollos para la agroindustria (García, Sandoval et al ., 2008). Paralelo a estos parámetros de calidad exigidos al fruto, son atributos deseables, y no de menor importancia, las siguientes características relacionadas con el manejo: 

Estructura del árbol: se refiere a árboles que preferiblemente no presenten copas

muy desarrolladas ya que producen ambientes sombreados y muy húmedos que


facilitan la presencia de insectos como la mosca de las frutas y enfermedades como antracnosis; además dificultan la cosecha por la excesiva altura.  Facilidad

en la floración: si bien el mango criollo se caracteriza por florecer con

facilidad, los árboles ideales deben presentar floraciones muy abundantes y homogéneas que cubran muy bien la copa y que sean recurrentes en cada ciclo productivo.

 Tolerancia

a plagas y enfermedades: aunque difícil de conseguir mas no im-

posible, la planta adecuada para propagarse además de poseer atributos de calidad y manejo, en lo posible debe tener condiciones tolerantes al ataque de insectos y enfermedades.

Las yemas procedentes de estos árboles reúnen las características adecuadas para ser propagadas masivamente, mediante diversos métodos que buscan que estos materiales conserven esos atributos sobresalientes. En el mango por su condición de polinización cruzada, es muy alto el riesgo de que en la población se presente mucha variabilidad en las características y atributos del fruto cuando es propagado por semilla. Por esta razón, la propagación vegetativa es el método mundialmente más utili zado. El mango criollo para agroindustria se puede propagar por semilla (sexual) o por medio de estacas, acodos, injertos o técnicas in vitro (asexual). La reproducción por semilla no es muy utilizada, su aplicación es principalmente como porta injerto o patronaje en viveros y para el establecimiento de jardines clonales con materiales locales de interés. En términos generales, se aconseja que para lograr homogeneidad en plantaciones comerciales, se utilice la clonación vegetativa efectuada por injerto sobre plantas provenientes de semilla (Reyes, 2004).

Figura 1. Características de una semilla poliembriónica germinada

l mango criollo, común, hilaza, hilacha o “Magdalena River”, por ser de tipo poliembriónico (varios embriones en una misma semilla) se puede propagar por semilla ( figura 1 ). Esta característica se identifica porque cada semilla contiene un embrión sexual producto del cruzamiento o polinización entre el padre y la madre, este embrión generalmente es el de mayor tamaño y no debe ser utilizado. Paralelamente al desarrollo del embrión de origen sexual, se forman varios embriones no sexuales provenientes del tejido materno o nucelar. De cada uno de ellos puede crecer un árbol adulto pero en el caso de los embriones de origen materno el árbol resultante es similar al árbol madre. Actualmente todas las poblaciones criollas o naturalizadas que existen son propagadas de manera espontánea por semilla.

La propagación del mango por semilla no es recomendable, porque se presenta un alto riesgo de sembrar plántulas provenientes del cruzamiento sexual, ocasionando alta variabilidad en las características de la planta resultante. En todos los casos, ya sean embriones sexuales o de tipo materno, la duración del periodo vegetativo antes llegar a la etapa reproductiva es mucho mayor. El árbol comienza su producción aproximadamente después de los siete años. En el trópico, estos árboles suelen desarrollar gran altura, lo que dificulta la cosecha, el control de plagas y enfermedades; además de afectar negativamente la producción debido al entrecruzamiento de los árboles y auto sombreamiento en las partes más bajas (Alvin, 1978; Campbell, 1988). Aunque actualmente las podas de control de altura y renovación, así como el uso de madurantes de brotes o de retardantes del crecimiento que pueden facilitar la inducción floral, serían parte de la solución a este problema; ello demandaría un nivel tecnológico mayor en las plantaciones. Por estas razones algunos expertos consideran que ésta puede ser una condición favorable para los pequeños productores (Davenport, 2001). Los autores de este documento dejan a consideración de los productores la posibilidad de utilizar esta práctica, bajo circunstancias en las cuales no sea posible conseguir viveros comerciales que certifiquen la calidad del material propagado o cuando el productor desee propagar en sus fincas los materiales más adecuados a la condición agroclimática de su predio. En este caso se sugiere la asesoría de personal especializado en el SENA, CORPOICA, CPGA y unidades certificadas de asistencia técnica. Se hace claridad que los mangos monoembriónicos (un solo embrión por semilla) no deben ser propagados por este método.


Como se verá más adelante, la propagación del mango por semilla sexual se utiliza principalmente para la obtención de patrones o porta injertos, que posteriormente servirán para ser injertados con yemas provenientes de árboles de mango criollo sobresalientes, seleccionados como élite y que cumplan las características anteriormente enumeradas o para injertar yemas de mangos mejorados. El mango criollo o común, es el más utilizado por su rusticidad y adaptación a diferentes condiciones climáticas y de suelo.

on el propósito de obtener árboles de porte más bajo, con características más homogéneas en toda la población iguales a la planta madre, precoces y de mejor calidad, es necesario recurrir a la propagación asexual o vegetativa, empleando para ello estacas, injertos, acodos o cultivo de tejidos in vitro.

ACODO AÉREO Figura 2. Ilustración del corte en forma de anillo y la aplicación de la hormona de enraizamiento

Este método no es muy común y prácticamente no es una manera de propagación comercial. Es un método de propagación vegetativa que consiste en seleccionar ramas en crecimiento, vigorosas, sanas y bien formadas, con una longitud de 15 a 25 cm y un diámetro de 1 a 2 cm, a la cuales se les hace un anillo de 2 cm desprendiendo la corteza, a una distancia de 15 a 20 cm por debajo del primer flujo de crecimiento o de la ramificación (si la tiene) ( figura 2 ). Aunque no es del todo necesario, para asegurar una más rápida y mejor emisión de raíces, se recomienda aplicar ácido naftalenacético sobre el anillo.

Este anillo se cubre con musgo y/o tierra negra húmeda, si la tierra utilizada está muy suelta se forra con plástico transparente y se amarra en los extremos formando una especie de cilindro ( figura 3 ). Posteriormente, se cubre con una lámina de papel aluminio hasta la emisión de raíces ( figura 4 ). Se debe tener la seguridad de observar periódicamente que el medio se mantenga húmedo sin llegar saturarlo. Tres semanas después de haber hecho el anillo se remueve la lámina de aluminio y se revisa con cuidado la emisión de raíces; si esto ha ocurrido se cortan la ramas y se siembran en bolsas, con un peso de 1 a 2 kg. En Colombia, en la Universidad Nacional sede Medellín, se realizó un trabajo de investigación sobre la propagación del mango Tommy por acodo aéreo. Los arbolitos estuvieron listos para sembrar en sitio definitivo a los seis meses de separados del árbol, con una etapa de dos meses de endurecimiento en vivero. Estos árboles iniciaron producción a los dos años de plantados, aunque se ha visto que su sistema radicular es pobre (Reyes, 2004).

Selección del material de siembra y propagación de mango criollo Figuras 3 y 4. Ilustración de la aplicación de la tierra sobre el anillado y de la cubierta de papel aluminio y plástico transparente para evitar la pérdida de humedad y sobrecalentamiento del acodo

3

4

Esta es una buena práctica para el establecimiento de huertos de plantas madre o productoras de yemas de árboles con características sobresalientes en la finca.

PROPAGACIÓN IN VITRO Este sistema consiste en propagar plantas vegetativamente utilizando diferentes partes de ellas -bien sea tejido, órgano o célula- para cultivarlas en un medio nutritivo bajo condiciones controladas de laboratorio, con el fin de obtener gran cantidad de plantas idénticas. La aplicación de la biotecnología tiene un alto potencial para proveer alternativas de solución a problemas que afectan directamente a los productores de mango. Por esto, es prioritario el refinamiento de los sistemas de regeneración in vitro para la propagación clonal y la conservación de germoplasma para la transformación genética de los diferentes cultivares de mango de importancia comercial en el mundo (Rivera, 1996). Esta es una práctica de propagación muy avanzada, pero que en nuestro medio es de muy poca o prácticamente nula aplicación, se adelanta en condiciones controladas en laboratorios especializados. El CIAT y CORPOICA tienen experiencias muy positivas con la participación de pequeños productores en especies como plátano y mora (entre otras) que pueden ser extrapolables a este cultivo en un futuro. Se describe a manera de información, puesto que la propagación masiva de materiales adecuados a las di versas condiciones agroecológicas para las nuevas áreas de siembra, propuestas en el Plan Nacional Frutícola de Colombia, requerirá de grandes esfuerzos.

Embriogénesis somática Dentro de las técnicas de cultivos de tejidos, la embriogénesis somática a partir de tejido nucelar obtenido de embriones de semillas jóvenes, es un método que experimentalmente ha permitido obtener embriogénesis directa, por lo que representa una vía eficiente para la regeneración y la propagación de plántulas de mango. La formación de embriones a partir de tejidos maternos de la semilla sin que exista fecundación o recombinación de informaron genética entre padre y madre, como se planteó anteriormente, es una propiedad de ciertos genotipos de mango. Por esta razón, el establecimiento de este tipo de cultivos es favorecido por la característica de poliembrionia de los mangos naturalizados o criollos. Las variedades de mango difieren en su respuesta de las condiciones de maduración y el tiempo requerido para la diferenciación de los

Propagación asexual o vegetativa

embriones, por lo que cada fase de su formación debe ser determinada empíricamente para cada variedad. En estudios adelantados en México, en la aplicación de estas técnicas biotecnológicas, se obtuvo la germinación y regeneración de plantas de mango directamente de embriones formados a partir de tejido materno. Se utilizó fracciones de tejido nucelar de frutos inmaduros de 3 a 4 cm de longitud. Embriones somáticos de la variedad Ataulfo se obtuvieron mediante embriogénesis directa (son embriones que se formaron sin cruzamiento sexual a partir del cultivo de las células del tejido nucelar sembrado en un medio de cultivo). Se requiere de aproximadamente 3,6 meses para llevar un embrión del estado globular (masa de células indiferenciadas) a plántulas y 5 meses para obtener plántulas listas para trasplante a través de este método (Rivera, 1966; Rivera et al ., 2004). Si bien este método, la obtención de un arbolito o vitroplántula para trasplante dura un periodo similar al tradicional vía injertación; la ventaja radica en que por este método no se depende de la disponibilidad de semilla para patronaje según los ciclos fenológicos y/o de la compra de grandes cantidades de frutos. A partir de muy pocas semillas y mediante la propagación continua se obtienen grandes cantidades de tejido y células aptas para embriogénesis en cualquier momento del año.

PROPAGACIÓN POR INJERTO Este método es el más recomendado y utilizado mundialmente. Consiste en tomar una yema de la variedad o clon seleccionado por su calidad y rendimiento (ver características deseables en la página 7) e introducirla sobre una variedad criolla o regional a la que se le denomina patrón o porta injerto. Este porta injerto debe igualmente tener atributos deseables como por ejemplo resistir a una condición adversa como sequía, salinidad, enfermedad o suelos pesados, entre otras. El propósito es obtener árboles de buena calidad y garantía de homogeneidad varietal, tanto en variedades monoembriónicas como poliembriónicas. Otra ventaja adicional de este método es la reducción de la fase juvenil, facilitando una precoz entrada en producción, comparándose con plántulas provenientes directamente de semilla. Es necesario resaltar que, al momento de realizar el injerto, el patrón debe estar en crecimiento activo, con buena fertilización y libre de enfermedades. Además, todos los instrumentos a utilizar deben estar completamente desinfectados para evitar la transmisión de enfermedades. Las plantas están listas para ser injertadas a los seis meses luego de la siembra de la semilla. Es aconsejable realizar el injerto de 25 a 30 cm de altura, aproximadamente, cuando el patrón alcanza un grosor aproximado a 0,8 cm (grosor de un lápiz) y esté en activo crecimiento. Las yemas se pueden obtener en cualquier época del año, siempre y cuando se encuentren en buen estado sanitario y nutricional. Si la operación se lleva a cabo correctamente, en tres o cuatro semanas la yema comienza a crecer para que en un año la planta esté lista para ser transplantada al sitio definitivo (Salazar, 1991).

Elección del patrón o porta injertos Se deben considerar aspectos como facilidad en la consecución de la semilla, adaptación, buen desarrollo radicular, fácil injertación, compatibilidad con la variedad a


injertar, resistencia o tolerancia a factores bióticos y abióticos limitantes, entre otros. En general, el uso de patrones es una práctica mundial, pero poco se ha investigado en aspectos importantes para el desarrollo de este cultivo en el trópico, como la inducción de copas más pequeñas con tasas de crecimiento más bajas. Casi la totalidad de las plantaciones comerciales de mango están establecidas sobre patrones poliembriónicos que garantizan la homogeneidad de los mismos y dan a la copa mayor vigor y productividad. En diferentes partes del mundo se han realizado ensayos para determinar la influencia del patrón sobre el injerto, encontrando resultados positivos con relación al rendimiento, a la calidad y al crecimiento (Reyes, 2004). En Colombia la mayoría de los patrones provienen de mangos criollos de tipo poliembriónico, los que dan origen a plantas muy vigorosas y de muy buena compatibilidad con las variedades mejoradas comerciales. Los materiales más usados son el conocido como mango hilaza, hilacha o de puerco, el chancleto y recientemente se le atribuye al clon Arauca un papel enanizante (Reyes, 2004). El mango hilacha posee buenas características como patrón por ser poliembriónico (garantiza pureza genética del patronaje), poseer un sistema radicular muy desarrollado y por su resistencia a condiciones adversas de drenaje; induce altos rendimientos y buena compatibilidad con las variedades a injertar. Investigaciones en India indican la potencialidad de materiales enanizantes que pueden permitir una mayor densidad de población y facilitar la cosecha (Reyes, 2004). Sin lugar a dudas, se requiere con urgencia abordar la investigación de patrones que induzcan copas menos vigorosas, con crecimiento lento, que faciliten el manejo de las plantaciones en el trópico (Aubert, 1976), donde es evidente el excesivo crecimiento de los árboles debido a la ausencia de periodos prolongados de descanso, a causa de la alta temperatura y humedad, que favorecen el crecimiento vegetativo del árbol y como consecuencia la disminución paulatina de la productividad (Avilán et al ., 1988; Cedeño et al ., 1989; Pérez et al., 1987; Pérez et al ., 1988; Reuther, 1977). En definitiva, para las condiciones del trópico se requieren patrones que manifiesten poco vigor y desarrollo, que puedan transmitir estos atributos a la copa (Singh, 1978). La obtención de árboles de porte bajo constituye la base para los cambios tecnológicos de impacto en los cultivos frutícolas en el trópico; sin embargo, los trabajos al respecto son casi inexistentes, aun cuando la necesidad es mayor (Cedeño et al ., 1989). La mayoría de las plantaciones comerciales de mango están establecidas sobre patronaje poliembriónico que asegura la deseable homogeneidad de los mismos. Sin embargo, se requiere cambiar la visión sobre lo que es deseable en una plantación con relación a las características de calidad del fruto y sobre todo de las condiciones para el manejo de la plantación y cosecha.

Selección, extracción y preparación de la semilla Las semillas que van a ser usadas como patrones o porta injertos se debe seleccionar de árboles adultos, que hayan tenido al menos dos cosechas, bien formados, que estén bien adaptados a las condiciones edafoclimáticas en las cuales se desea establecer el cultivo y que sean productivos. Los frutos de donde se extrae la semilla no se deben dejar sobre madurar en el árbol para evitar que las semillas estén pregerminadas o deterioradas por problemas fitosanitarios; deben estar sanos, libres de plagas y enfermedades. Los frutos se recogen en el segundo tercio del tiempo después de


iniciada la cosecha y del tercio medio de la copa del árbol; deben tener el tamaño, forma, color y peso uniforme, característicos de la variedad. El poder germinativo de las semillas del mango se pierde muy pronto, por lo que es conveniente plantarlas lo más rápidamente posible, preferiblemente al día siguiente después de eli minar la pulpa (Padoch y De Jong, 1991). Las semillas que se siembran dentro de su testa pueden germinar; sin embargo, presentan atrofia de raíces cuando éstas logran sobrepasar la testa, además, el porcentaje de germinación y el tiempo de la emergencia son muy bajos y la mortalidad muy alta. De acuerdo con la Federación Nacional de Cafeteros de Colombia (1985) quitar el caparazón exterior de la semilla favorece la germinación y se puede llegar a obtener hasta un 80% de plántulas con buen sistema radicular. La semilla se extrae de la siguiente manera: 

Se retira la cáscara y la pulpa del fruto ( figura 5 ).



Las semillas extraídas con su testa se colocan a la sombra, en un lugar aireado, de un día para otro y máximo por cinco días.



Una vez las semillas estén secas, se les retira la testa dura o endocarpo leñoso. Se cortan los bordes de la cápsula con una tijera de podar, cuidando de no dañar los cotiledones.



Se deben descartar las semillas que evidencien algún tipo de daño.



Una vez esté libre la almendra, se debe sembrar rápidamente colocando el lomo de la semilla hacia arriba y cubriéndola con una capa delgada del sustrato del semillero ( figura 6 ). Figura 5. Semilla de mango a la que se le retiró la pulpa

Figura 6. Semilla de mango a la que se le retiró la testa, lista para sembrar

5

6

Semilleros Las semillas de mango que se utilizan como patrón, pueden sembrarse en cajones de enraizamiento, camas de germinación de 1 m de ancho y 15 a 25 cm de altura ( figura 7 ) o directamente en bolsas de almácigo. En las camas se recomiendan trazar surcos trans versales separados 25 a 30 cm, con una profundidad de 4 a 7 cm; las semillas se colocan con una separación de 3 a 5 cm entre sí (Reyes, 2004; Cartagena y Vega, 1992).

Selección del material de siembra y propagación de mango criollo Figura 7. Cama de germinación

Siembra directa en bolsas Para la siembra directa en bolsas, la semilla se deposita en bolsas de polietileno negro, calibre 4, de 30 a 40 cm de profundidad (largo) por 18 a 20 cm de diámetro (boca), perforadas hasta la base ( figura 8 ).

Germinación

Figura 8. Semillero en bolsa

Figura 9. Semillero germinado y raleado para evitar la proliferación de enfermedades y facilitar el manejo

La semilla germina de dos a cinco semanas después de la siembra, emerge la radícula robusta de la punta de la semilla y los pecíolos cotiledonarios -anchos y carnosos- se alargan permitiendo que el vástago emerja ( figura 9 ). Los cotiledones permanecen sobre o bajo el suelo. En algunas variedades poliembriónicas se producen de dos a ocho brotes por semilla; éstos deberán ser entresacados en el vivero poco después de la germinación con el objeto de permitir el desarrollo apropiado de uno solo. La plántula produce una robusta raíz primaria, moderadamente larga y que disminuye gradualmente en grosor. Esta raíz primaria da lugar a numerosas raíces laterales de grosor medio distribuidas regularmente (FAO, 1982; USDA, 1960).

Preparación del sustrato Para el germinador, se hace una mezcla de dos partes de suelo preferiblemente de textura franca y una parte de arena de río gruesa y lavada. Para el vivero, se prepara una mezcla de cuatro partes de tierra (similar a la anterior), dos partes de arena de río o en su defecto cascarilla de arroz quemada y una parte de materia orgánica (gallinaza compostada o humus). Esta mezcla se desinfecta empleando medios físicos como la solarización, mecánicos como el vapor y agua caliente o químicos uti-


lizando desinfectantes; la mezcla se deposita sobre una superficie plana, formando una cama suave y mullida.

Desinfección física Se puede utilizar la solarización, que ha demostrado ser económica, limpia y sencilla para la desinfección del suelo. Es un proceso hidrotérmico que utiliza la energía que proviene del sol. Figura 10. La técnica conProceso de solarización de eras o camas de germinación para mango siste en tapar herméticamente el sustrato completamente húmedo, con un plástico o polietileno calibre 6, preferiblemente transparente, para capturar la energía solar y así incrementar la temperatura en los primeros centímetros del suelo. La altura de la cama para la solarización no debe ser mayor de 20 cm, con el fin de garantizar la eficiencia del proceso ( figura 10 ). Los períodos de solarización oscilan entre 30 y 45 días, dependiendo de la zona y de las condiciones climáticas que se presenten. El proceso de solarización bien realizado garantiza la muerte de patógenos presentes en el sustrato, así como de plantas no deseadas dentro del sustrato.

Desinfección química En la desinfección con productos químicos, se utilizan productos especiales como el Basamid (Dazomet) o el formol al 40%, teniendo cuidado en la cantidad utilizada del producto seleccionado, el tiempo de desinfección y la realización de una adecuada aireación, antes de proceder a la siembra del material de propagación. El Basamid es un producto químico granulado de acción nematicida, fungicida y herbicida, de excelentes resultados en la desinfección del suelo.

Vivero Cuando las plántulas alcanzan 15 cm de altura se seleccionan las más desarrolladas del germinador y se trasladan al vivero donde se plantarán en bolsas y se les darán los cuidados necesarios hasta que alcancen el tamaño adecuado para ser injertadas. Los arbolitos deben colocarse bajo un cobertizo al que entre poco sol (50% a 60% de sombra) con buena humedad ambiental (alrededor del 70%). De dos a seis meses después de transplantados los arbolitos, dependiendo de las condiciones microclimáticas y de la densidad del vivero, éstos estarán listos para la injertación. Deben tener un diámetro de 1 cm o como mínimo el grosor de un lápiz, aproximadamente ( figura 11 ).

Selección del material de siembra y propagación de mango criollo Figura 11. Desarrollo adecuado de una planta de mango para ser injertada

El crecimiento inicial de la plántula es rápido. Bajo condiciones subtropicales en el norte de la India, las plántulas alcanzan de 20 a 30 cm de alto poco después de la germinación, de 30 a 45 cm en 4 meses, de 75 a 150 cm en 16 meses y de 1,5 a 2,7 m en 28 meses después de la siembra (USDA, 1960).

Selección, extracción y preparación de las yemas Una vez seleccionada(s) la(s) variedad(es) a propagar, se procede a tomar las yemas de los árboles madres, quienes deben reunir varias condiciones: alto rendimiento (se debe llevar un registro con información de producción de los árboles en el huerto madre), buena calidad de fruta (color, grados brix, fibra, etc.) y que estén libres de plagas y enfermedades limitantes (ver selección de plantas madre, página 7). En Colombia se ha presentado el problema de la pudrición peduncular, causada por patógenos endófitos como la Botriodiplodia sp., que pueden transmitirse por las yemas. Es conveniente tratar las yemas antes de la injertación. La yema más utilizada para el injerto es la del brote terminal de las ramas ( figura 12 ), pero no deben ser de un flujo reciente de crecimiento o brotes tiernos. El brote debe estar bien desarrollado y maduro, justo en el momento en que su yema apical esté próxima a iniciar la brotación vegetativa ( figura 13 ). Las yemas deben usarse Rama y yema en condiciones adecuadas para ser injertadas en corto tiempo para evitar su deshidratación. Deben estar bien guardadas en bolsas de polietileno y refrigeradas, pueden almacenarse hasta por dos semanas sin pérdida 12 13 importante de su capacidad de prendimiento; incluso, sin refrigerar y enceradas pueden durar de una a dos semanas. Es importante que la yema para injertar y el patrón sean iguales o similares en tamaño y madurez de la madera. De acuerdo con la Federación Nacional de Cafeteros de Colombia (1985) los mejores resultados se obtienen con las varetas en las cuales la yema terminal está empezando a hincharse. Si no están en este estado se pueden Figuras 12 y 13.


cortar las hojas de la vareta dejando adheridos unos 6 mm del pecíolo y hoja, con el fin de que la yema terminal acelere su maduración para ser injertada.

TIPOS DE INJERTO El mango se propaga por lo común de manera vegetativa mediante varios métodos de injerto (Mukherjee, 1972). A diferencia de otros frutales, hay varios tipos de injerto que se pueden utilizar con éxito, dependiendo de la habilidad del injertador (Cartagena y Vega, 1992).

Injerto de yema terminal en púa Figuras 14 a 19. Ilustración de la realización de un injerto tipo púa terminal

14

15

16

Consiste en cortar el patrón a una altura de 15 a 20 cm ( figura 14 ), realizando un corte transversal y después se hace una hendidura longitudinal por la mitad del tallo ( figura 15 ). La yema se corta en doble bisel para que quede como una púa ( figura 16 ), la que posteriormente se introduce en la hendidura del patrón, se amarra fuertemente ( figura 17 ) y se cubre con una bolsa plástica perforada ( figura 18 ) y luego con una de papel parafinado ( figura 19 ).

En este método es conveniente que la yema tenga un grosor semejante al patrón. Los árboles recién injertados deben colocarse en un lugar protegido de la incidencia directa de los rayos solares, para evitar deshidratación del injerto y mortalidad por golpe de sol. 17

18

19

Injerto de yema terminal en bisel Consiste en cortar el patrón de 15 a 20 cm de altura y hacer el corte del patrón en bisel o corte oblicuo (figura 20). La yema también se corta en bisel de tal manera que coincida con la superficie del patrón (figura 21). Posteriormente, se procede a colocar la yema en contacto con el patrón (figura 22), se amarra fuertemente (figura 23) y se cubre con una bolsa plástica perforada y/o con una bolsa de papel parafinado, para evitar la deshidratación del injerto.

Selección del material de siembra y propagación de mango criollo Figuras 20 a 23. Ilustración de la realización del injerto tipo bisel

20

21

22

23

En este caso es necesario que el corte de la yema sea semejante al corte del patrón para que coincidan los tejidos de las cortezas e igualmente el grosor tanto de la yema como el del patrón debe ser similar para asegurar un mayor prendimiento. Posterior a la injertación se siguen las mismas recomendaciones descritas para el injerto de púa terminal.

Injerto de yema lateral

Figura 24. Ilustración de la realización de un injerto de tipo lateral

A una altura de 15 a 20 cm se realiza un corte tangencial en un solo movimiento hacia abajo y a través de la madera levantando la corteza ( figura 24 ). Luego, a la yema se le hace un corte en doble bisel o púa. La yema se introduce por dentro de la corteza del patrón y se amarra fuertemente. Este método tiene la ventaja de usar yemas de cualquier diámetro, injertando ramas gruesas en el caso de cambio de copas y es posible realizar nuevos injertos sobre el patrón en caso de fallas (Reyes, 2004).

Injerto de enchape lateral

Figuras 25 y 26. Ilustración de la realización del injerto tipo enchape lateral

25

26

Es una variante muy similar al anterior tipo de injerto. Consiste en realizar un corte en el patrón en forma de parche rectangular de 5 a 8 cm de largo y a 20 cm del nivel del suelo ( figura 25 ). A la yema se le hace un corte en bisel tratando de buscar la misma forma y tamaño de la ventana creada en el patrón. A conti-

Propagación asexual o vegetativa Figura 27. Desarrollo del injerto hasta el estado adecuado para trasplante en campo

Figura 28. Desarrollo de variantes al injerto terminal para evitar pérdidas de material en vivero

Figura 29. Desarrollo de variantes al injerto terminal para evitar pérdidas de material en campo, realizado por productores de Cundinamarca

nuación, se coloca la yema de tal forma que se realice el contacto entre las zonas del cambium ( figura 26 ), luego se amarra con tela o plástico de abajo hacia arriba (Cartagena y Vega, 1992). Una vez la yema prende, se corta la parte terminal del porta in jerto. Para los tipos de injerto arriba mencionados, los brotes nuevos de las yemas injertadas se observan entre 20 y 30 días después de realizado. Aproximadamente a los cuatro o cinco meses después de realizados los injertos o cuando los árboles tengan una altura de 45 a 60 cm y diámetros basales de 1,2 a 1,5 cm ( figura 27 ) pueden ser llevados a campo (FAO, 1982; Talpada et al ., 1981; USDA, 1960).

Variantes y adaptaciones a la injertación de costado

En las figuras 28 y 29 se aprecian dos variantes a partir de la técnica de injertación lateral, resultado de la experiencia de los injertadores y los recursos con que cuentan. En muchos casos estas variantes obedecen, en parte, a estrategias para no perder material de vivero o cuando existen pérdidas de material trasplantado en campo. Todas parten de los principios vistos anteriormente.

AUBERT, B. 1976. Possibilities productions de mangues greffes a la reunion. Fruits 30(7-8): 447-479. AVILÁN R., L. 1988. El ciclo de vida productivo de los frutales de tipo arbóreo en medio tropical y sus consecuencias agroeconómicas. Fruits 43(9) 517-529. AVILÁN, L.; RODRÍGUEZ, M.; RUÍZ, J. y MARÍN, C. 1998. Comportamiento de los brotes de mango en plantas tratadas con diferentes intensidades de poda, paclobutrazol, nitrato de potasio. En: Resúmenes. XLIV Reunión Anual de la Sociedad Interamericana de Horticultura Tropical. Septiembre 28 al 2 de octubre. Barquisimeto, Venezuela. ISTH, UCLA, CONICIT, UCV. 76 p. CAMPBELL, C. 1988. Progress in mango. Proceeding Society Horticultural Science Tropical Region 32: 8-19. CARTAGENA, R. y VEGA, D. 1992. El mango. Fruticultura colombiana. Manual de Asistencia Técnica No. 43. ICABancoldex. Editorial Produmedios. Santafé de Bogotá. 124 p. CEDEÑO M., A.; PÉREZ, A. y REYES S., I. 1989. Effect of dwarfing rootstocks on tree size and yield of selected mango varieties. The Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico 72(1): 1-8. DAVENPORT, T. 2001. Mango cultivation short course. Hillside agricultural program. Usaid. FEDERACIÓN NACIONAL DE CAFETEROS DE COLOMBIA. 1985. El cultivo del mango. Editorial Litografía Cafetera Ltda., Manizales, 22 p. FOOD AND AGRICULTURE ORGANIZATION (FAO). 1982. Fruit-bearing forest trees: technical notes. FAO Forestry Pap. 34. Rome: Food and Agriculture Organization of the United Nations. 177 p. GARCÍA L., J.; FLORIANO J., A.; CORREDOR J., P. et al . 2008. Descripción de las variedades de mango criollo colombiano. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, Fondo de Fomento Hortofrutícola y Corpoica C.I. Nataima. Editorial Produmedios. Noviembre de 2008 (en imprenta). GARCÍA L., J.; SANDOVAL A., P.; FORERO, F. et al . 2008. Calidad del mango criollo para la agroindustria. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, Fondo de Fomento Hortofrutícola y Corpoica C.I. Nataima. Editorial Produmedios. Noviembre de 2008 (en imprenta). GARCÍA–MUÑOZ, M. C. 2008. Manual de manejo cosecha y poscosecha de tomate de árbol. Corpoica, 100 p. ICONTEC. 2004. Frutas frescas. Mangos criollos. Especificaciones de empaque. Norma Técnica Colombiana NTC 5140. Bogotá. 11 p. MUKHERJEE, S. K. 1972. Origin of mango ( Mangifera indica ). Economic Botany. 26(3): 260-264. PADOCH, C. y DE JONG, W. 1991. The house gardens of Santa Rosa: diversity and variability in an amazonian agricultural system. Economic Botany. 45(2): 166-175. PÉREZ A., A.; CEDEÑO M., J.; REYES S., I. y LOPES, J. 1987. Growth and yield of mango trees at three stages of development influenced by rootstock. The Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico. 71(4): 341-349. PÉREZ A., A.; CEDEÑO M., J.; REYES S., I. y LOPES, J. 1988. Dwarfing effect of intersystems on growth and yield component of mango. The Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico. 72(4): 501-508. REUTHER, W. 1977. Citrus. In Ecophysiology of tropical crops. Eds. P. Alvin e I. Rozlowski. New York. Academy Press. 502 p. REYES, C. 2004. Manejo agronómico del mango ( Mangifera indica L.). En Memorias curso nacional sobre producción de frutas de clima cálido. CIAT-Palmira, Colombia. Noviembre 22-26. 21 p. RIVERA D., M. 1996. Embriogénesis somática, transformación y regeneración del mango ( Mangifera indica L.) cv. Ataulfo y Hindi. Centro de Investigación y de Estudios Avanzados del Instituto Politécnico Nacional (Unidad Irapuato). Departamento de Ingeniería Genética de Plantas. Investigación de doctorado. California, USA. RIVERA D., M.; MANZANILLA R., A.; ROBLES G., M. y GÓMEZ L., M. A. 2004. Induction of somatic embryogenesis and plant regeneration of Ataulfo mango ( Mangifera indica L.). Plant Cell Tissue and Organ Culture. 79:101. ROJAS, J. M. et al . 2004. Caracterización de los productos hortofrutícolas colombianos y establecimiento de las normas técnicas de calidad. Convenio Cenicafé-Sena. Ferivesa S. A. Cali. 212 p. SALAZAR C., R. 1991. El cultivo del mango. En Producción de frutales en el Valle del Cauca . Buga: ASIAVA. SINGH, R. 1978. Mango New Delhi. Council of Agricultural Research. 99 p. UNITED STATES DEPARTMENT OF AGRICULTURE (USDA). 1960. Index of plant diseases in the United States. Agric. Handb. 165. Washington, DC. 531 p. ZAMBRANO, J.; MATERANO, W. y BRICEÑO, S. 2000. Influencia del periodo de almacenamiento en las características poscosecha de cinco variedades de mango Mangifera indica L. Rev. Fac. Agron. (LUZ) 17: 164-172.

Acodo: método de propagación vegetativa que consiste en doblar una rama o tallo, cubrirlo con

tierra o sustrato en el suelo, sin separarlo de la planta, a fin de que arraigue y pueda separarse posteriormente de la planta madre para formar una nueva planta similar a la donadora. Acodo aéreo: método de propagación vegetativa, variante del acodo, que consiste en cubrir una rama o un tallo aéreo con sustrato humedecido, sin cortarlo y sin curvarlo a nivel del suelo, a fin de promover su enraizamiento. Célula somática: célula procedente de células madre originadas durante el desarrollo embrionario y que, a partir de ellas, mediante un proceso de proliferación celular se puede presentar el crecimiento de tejidos y órganos vegetales. Cigoto o huevo: se denomina a la célula resultante de la unión de células sexuales (gametos) masculinas con las femeninas en la reproducción sexual de los organismos. Clon: conjunto de células o de organismos genéticamente idénticos a su predecesor, originado por reproducción asexual a partir de una única célula o de un tejido, se puede presentar naturalmente o mediante técnicas artificiales manipuladas por el hombre. Desinfección de sustrato: acción de dejar un sustrato para germinadores, eras de trasplante o para llenar bolsas de vivero, libre de semillas de malezas, bulbos o rizomas de pastos y otras hierbas competidoras del cultivo, larvas de insectos, caracoles o babosas, cuerpos fructíferos de hongos patógenos o nematodos fitopatógenos. Desinfección con productos químicos: esta técnica está basada en el empleo de los distintos productos químicos para lograr la desinfección del suelo, mediante los efectos de los mismos. Desinfección física de sustratos: técnica basada en la utilización del calor como esterilizante, en sus diferentes formas de aplicación, como el uso zarandas o mallas de alambre para retener partículas grandes de vegetales, insectos y otros organismos, la desinfección con agua caliente y la solarización por exposición a la acción de los rayos directos del sol. Embriogénesis: relacionada con embrión + génesis; es el complejo conjunto de procesos fisiológicos de transformación de una sola célula llamada cigoto en un individuo multicelular más complejo, contenido en la semilla madura. Embriogénesis somática (asexual o adventicia): consiste en el desarrollo de embriones a partir de células que no fueron el resultado de la unión de células sexuales femeninas y masculinas, en otras palabras, es un proceso por el cual se produce un embrión sin la existencia de un cruzamiento sexual. Embriogénesis somática in vitro directa e indirecta: la forma directa implica la existencia previa de células somáticas predeterminadas a seguir la vía embriogénica y a partir de estas células se desarrollan los embriones (ejemplo: nucela de cítricos). La forma indirecta implica la formación del embrión a partir de la proliferación de una masa de células indiferenciadas que una vez se inducen por medios artificiales, pasan a la vía embriogénica. Se forman embriones sin cruzamiento sexual previo. Esqueje: fragmento de planta que se introduce en el suelo o en un sustrato para que arraigue en él y forme una nueva planta. Puede ser herbáceo, semileñoso o leñoso, en este último caso se llama también estaca. Germinación: conjunto de fenómenos por los que el embrión contenido en una semilla recobra su actividad vital para dar lugar a una plántula. Injerto: método de propagación vegetativa que consiste en unir dos o más partes de plantas distintas -una parte arraigada o porta injerto y una o más partes de tallo o yema- mediante diversas técnicas, de manera que crezcan y se desarrollen como si fuesen una sola planta. Material vegetal: semilla, parte de planta o planta viva destinadas a ser plantadas.

Selección del material de siembra y propagación de mango criollo Patrón o porta injerto: planta enraizada y establecida en un suelo o sustrato, sobre la cual se

realiza un injerto. Planta madre: planta crecida de semilla, la cual presenta características sobresalientes o deseables de calidad superior, a partir de la cual se obtienen esquejes de tipo vegetativo para producir plantas hijas con las mismas características y obtener generaciones de plantas similares de calidad superior (clones). Plántula: etapa del desarrollo del embrión de una semilla que comienza cuando ésta germina y termina cuando desarrolla sus primeras hojas verdaderas. Como paso siguiente en su desarrollo se conformará la planta. Propagación asexual o vegetativa artificial: consiste en que de una planta se desprende una sola célula o trozos ya desarrollados, que por procesos de división celular son capaces de formar un individuo completo genéticamente idéntico a él. Se lleva a cabo con un solo progenitor y sin la intervención de las células sexuales. Es realizada por el hombre por medio de técnicas diversas a partir de segmentos o trozos de tejido vegetal de una planta como los injertos, estacas, esqueje o gajos, cultivo de tejidos in vitro. Propagación asexual o vegetativa natural: se presenta en ciertas plantas que tienen estructuras especiales para ello como los bulbos (tallos subterráneos formados por hojas carnosas concéntricas que con el tiempo se dividen en varios bulbillos, de los que saldrán nuevas plantas), estolones o tallos rastreros (tallos aéreos horizontales que cuando son muy largos y tocan el suelo, generan raíces y tallos verticales) y rizomas (tallos subterráneos horizontales que cada cierta distancia emiten tallos verticales). Desventajas: se produce una descendencia sin variabilidad genética (clones) al ser todos genotípicamente equivalentes a su parental. Ventajas: rapidez y sencillez para multiplicar grandes cantidades de plantas, facilitándose el establecimiento de grandes áreas cuando las condiciones ambientales sean favorables al individuo. Propagación: multiplicación de una planta, realizada por el hombre. Propagación in vitro: cultivo de segmentos de tejidos vegetales o de células, realizado en condiciones artificiales controladas, generalmente en un laboratorio, en un medio libre de microorganismos y utilizando soluciones nutritivas y hormonas vegetales que provocan el crecimiento de raíces, tallos y hojas hasta obtener una planta similar a la que originó el tejido cultivado. Reproducción sexual o gámica: constituye el procedimiento reproductivo natural de las plantas. Tiene la ventaja biológica de promover la variación genética entre los miembros de una especie, ya que la descendencia es el producto de los genes aportados por cada uno de los progenitores, en vez de ser una copia genética. Semilla: cada uno de los cuerpos que forman parte del fruto que da origen a una nueva planta, es la estructura mediante la que realizan la propagación las plantas. La semilla se produce por la maduración de un óvulo. Una semilla contiene un embrión del que puede desarrollarse una nueva planta bajo condiciones apropiadas, pero también contiene una fuente de alimento almacenado y está envuelto en una cubierta protectora. Semilleros: área de terreno preparado y acondicionado que sirve como sustrato especialmente arreglado para colocar las semillas con la finalidad de producir su germinación uniforme bajo las menores condiciones y cuidados, con el objeto de que pueda crecer sin dificultad hasta que la plántula esté lista para el trasplante. Sustrato o substrato: medio sólido que tiene una doble función: la primera, anclar y aferrar las raíces protegiéndolas de la luz y permitiéndoles la respiración, y la segunda, contener el agua y los nutrientes que las plantas necesitan. Los materiales que se han experimentado para uso de laboratorio y para cultivos comerciales son muchos y difieren desde el doble punto de vista técnico y económico. Vivero: conjunto de instalaciones agronómicas en el cual se plantan, germinan, maduran y endurecen todo tipo de plantas. Yema vegetativa: punto de crecimiento que realiza una función vital no reproductiva, ubicado habitualmente en las axilas de las hojas y en el extremo final de un tallo o rama lateral, protegido por una serie de pequeñas brácteas u hojas simples rudimentarias que parecen escamas.

Propagacion en Plantas de Maiz

Recommend Documents